Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Một nghiên cứu dựa trên bốn phương pháp miễn dịch: Kháng thể virus viêm gan C chống lại các kháng nguyên khác nhau có thể có sự đóng góp không đồng đều trong việc phát hiện
Tóm tắt
Tất cả các xét nghiệm kháng thể virus viêm gan C thương mại (anti-HCV) đều sử dụng sự kết hợp của các kháng nguyên tái tổ hợp để phát hiện phản ứng kháng thể. Phản ứng kháng thể đối với các vùng kháng nguyên riêng lẻ (core, NS3/4 và NS5) được sử dụng trong các xét nghiệm chưa được nghiên cứu đầy đủ. Trong nghiên cứu này, chúng tôi đã định lượng tải virus HCV, thử nghiệm anti-HCV với bốn phương pháp thương mại (Ortho-ELISA, Murex-ELISA, Architect-CMIA và Elecsys-ECLIA) trên 682 mẫu huyết tương. Trong nền tảng ELISA cho vùng kháng nguyên, các giếng viền đã được phủ ba kháng nguyên: core (c22-3), NS3/4 (c200) và NS5 một cách riêng lẻ. Giá trị tín hiệu so với ngưỡng (S/Co) của các xét nghiệm khác nhau và phản ứng kháng thể đối với các kháng nguyên riêng lẻ đã được so sánh. Các mẫu được chia thành nhóm HCV RNA dương tính, nhóm anti-HCV nhất quán và nhóm anti-HCV không nhất quán. Các kháng thể anti-core và anti-NS3/4 được phát hiện đồng thời trong 99,2% các mẫu HCV RNA dương tính và cho thấy tính nhất quán lớn với tổng tín hiệu anti-HCV. Phản ứng đối với vùng core mạnh mẽ hơn so với vùng NS3/4 trong nhóm anti-HCV nhất quán (p < 0.001). Anti-NS5 chỉ xảy ra kèm theo phản ứng đối với các kháng nguyên core và NS3/4 và không ảnh hưởng đến tín hiệu dương tính cuối cùng của anti-HCV. Trong nhóm anti-HCV không nhất quán, 39,0% các tín hiệu dương tính không thể được truy vết về bất kỳ vùng kháng nguyên đơn lẻ nào. Phản ứng kháng thể đối với kháng nguyên core và NS3/4 mạnh hơn, trong khi phản ứng đối với kháng nguyên NS5 là yếu nhất, cho thấy rằng các vùng kháng nguyên riêng lẻ có vai trò khác nhau trong tổng tín hiệu anti-HCV. Nghiên cứu này cung cấp động lực để tối ưu hóa các xét nghiệm anti-HCV thương mại.
Từ khóa
#Viêm gan C #kháng thể #kháng nguyên #xét nghiệm thương mại #phản ứng kháng thểTài liệu tham khảo
World Health Organization. Global hepatitis report 2017. World Health Organization, Geneva; 2017a. https://apps.who.int/iris/bitstream/10665/255016/1/9789241565455-eng.pdf?ua=1.
World Health Organization. Progress report on access to hepatitis C treatment: focus on overcoming barriers in low- and middle-income countries. World Health Organization, Geneva; 2018. https://apps.who.int/iris/bitstream/handle/10665/260445/WHO-CDS-HIV-18.4-eng.pdf;jsessionid 56D03CC062A7C51DF284D1B4B4FEF7AF?sequence=1.
Roth GA, Abate D, Abate KH, Abay SM, Abbafati C, Abbasi N, Abbastabar H, Abd-Allah F, Abdela J, Abdelalim A, Abdollahpour I. Global, regional, and national age-sex-specific mortality for 282 causes of death in 195 countries and territories, 1980–2017: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2017. Lancet. 2018;392:1736–88.
World Health Organization. Combating hepatitis B and C to reach elimination by 2030; 2016. https://apps.who.int/iris/bitstream/handle/10665/206453/WHO_HIV_2016.04_eng.pdf;jsessionid=B64A27826DD4DA7EB019AFE6B9180DF0?sequence=1.
Li M, Zhuang H, Wei L. How would China achieve WHO’s target of eliminating HCV by 2030? Expert Rev Anti Infect Ther. 2019;17:763–73.
Gretch DR, dela Rosa C, Carithers RL Jr, Willson RA, Williams B, Corey L. Assessment of hepatitis C viremia using molecular amplification technologies: correlations and clinical implications. Ann Intern Med. 1995;123:321–9.
Richter SS. Laboratory assays for diagnosis and management of hepatitis C virus infection. J Clin Microbiol. 2002;40:4407–12.
Wang L, Lv H, Zhang G. Hepatitis C virus core antigen assay: an alternative method for hepatitis C diagnosis. Ann Clin Biochem. 2017;54:279–85.
Kuo G, Choo QL, Alter HJ, Gitnick GL, Redeker AG, Purcell RH, Miyamura T, Dienstag JL, Alter MJ, Stevens CE, et al. An assay for circulating antibodies to a major etiologic virus of human non-A, non-B hepatitis. Science. 1989;244:362–4.
Gretch DR. Diagnostic tests for hepatitis C. Hepatology. 1997;26:43S-47S.
Gupta E, Bajpai M, Choudhary A. Hepatitis C virus: screening, diagnosis, and interpretation of laboratory assays. Asian J Transfus Sci. 2014;8:19–25.
Abdel-Hamid M, El-Daly M, El-Kafrawy S, Mikhail N, Strickland G, Fix A. Comparison of second- and third-generation enzyme immunoassays for detecting antibodies to hepatitis C virus. J Clin Microbiol. 2002;40:1656–9.
Ghuman H. Detection of hepatitis C virus by third generation enzyme immunoassay. Indian J Gastroenterol Off J Indian Soc Gastroenterol. 1995;14:154.
Kim S, Kim JH, Yoon S, Park YH, Kim HS. Clinical performance evaluation of four automated chemiluminescence immunoassays for hepatitis C virus antibody detection. J Clin Microbiol. 2008;46:3919–23.
Dufour DR, Talastas M, Fernandez MD, Harris B. Chemiluminescence assay improves specificity of hepatitis C antibody detection. Clin Chem. 2003;49:940–4.
Prevention Centers for Disease C. Testing for HCV infection: an update of guidance for clinicians and laboratorians. MMWR Morb Mortal Wkly Rep. 2013;62:362–5.
Ghany MG, Morgan TR. Hepatitis C Guidance 2019 Update: American Association for the Study of Liver Diseases-Infectious Diseases Society of America recommendations for testing, managing, and treating hepatitis C virus infection. Hepatology. 2020;71:686–721.
Kodani M, Martin M, de Castro VL, Drobeniuc J, Kamili S. An automated immunoblot method for detection of IgG antibodies to hepatitis C virus: a potential supplemental antibody confirmatory assay. J Clin Microbiol. 2019;57:e01567-18.
Vermeersch P, Van Ranst M, Lagrou K. Validation of a strategy for HCV antibody testing with two enzyme immunoassays in a routine clinical laboratory. J Clin Virol. 2008;42:394–8.
Chang L, Zhao J, Guo F, Ji H, Zhang L, Jiang X, Wang L. Demographic characteristics of transfusion-transmitted infections among blood donors in China. BMC Infect Dis. 2019;19:514.
Couroucé A, Janot C. Development of screening and confirmation tests for antibodies to hepatitis C virus. Curr Stud Hematol Blood Transfus. 1994;62:36–48.
Warkad SD, Song KS, Pal D, Nimse SB. Developments in the HCV screening technologies based on the detection of antigens and antibodies. Sensors. 2019;19:4257.
Vallari DS, Jett BW, Alter HJ, Mimms LT, Holzman R, Shih JW. Serological markers of posttransfusion hepatitis C viral infection. J Clin Microbiol. 1992;30:552–6.
Mondelli MU, Cerino A, Boender P, Oudshoorn P, Middeldorp J, Fipaldini C, La Monica N, Habets W. Significance of the immune response to a major, conformational B-cell epitope on the hepatitis C virus NS3 region defined by a human monoclonal antibody. J Virol. 1994;68:4829–36.
Rafik M, Bakr S, Soliman D, Mohammed N, Ragab D, ElHady WA, Samir N. Characterization of differential antibody production against hepatitis C virus in different HCV infection status. Virol J. 2016;13:116.
Beld M, Penning M, van Putten M, Lukashov V, van den Hoek A, McMorrow M, Goudsmit J. Quantitative antibody responses to structural (Core) and nonstructural (NS3, NS4, and NS5) hepatitis C virus proteins among seroconverting injecting drug users: impact of epitope variation and relationship to detection of HCV RNA in blood. Hepatology. 1999;29:1288–98.
Couroucé AM, Barin F, Botté C, Lunel Fabiani F, Maisonneuve P, Maniez M, Trepo C. A comparative evaluation of the sensitivity of seven anti-hepatitis C virus screening tests. Vox Sang. 1995;69:213–6.
Chien DY, Choo QL, Tabrizi A, Kuo C, McFarland J, Berger K, Lee C, Shuster JR, Nguyen T, Moyer DL. Diagnosis of hepatitis C virus (HCV) infection using an immunodominant chimeric polyprotein to capture circulating antibodies: reevaluation of the role of HCV in liver disease. Proc Natl Acad Sci USA. 1992;89:10011–5.
Amanna IJ, Slifka MK. Mechanisms that determine plasma cell lifespan and the duration of humoral immunity. Immunol Rev. 2010;236:125–38.
Andraud M, Lejeune O, Musoro JZ, Ogunjimi B, Beutels P, Hens N. Living on three time scales: the dynamics of plasma cell and antibody populations illustrated for hepatitis a virus. PLoS Comput Biol. 2012;8:e1002418.