Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Một loại keo fibrin mới như một ứng viên giàn giáo ba chiều dành cho tế bào gốc trung mô
Tóm tắt
Việc tối ưu hóa một giàn giáo hữu cơ cho các loại ứng dụng và tế bào cụ thể là rất quan trọng đối với sự thành công của kỹ thuật mô. Trong nghiên cứu này, chúng tôi đã khảo sát ảnh hưởng của một loại keo fibrin mới được chiết xuất từ nọc rắn như một giàn giáo cho tế bào gốc trung mô, nhằm chứng minh khả năng của tế bào trong việc tác động và phát hiện môi trường vi sinh học. Việc phân tích biểu hiện CD34, CD44 và CD90 trên tế bào gốc trung mô được thực hiện thông qua phương pháp phân tích dòng tế bào. Tăng trưởng và khả năng sống của tế bào in vitro đã được đánh giá thông qua kính hiển vi quang học và điện tử. Việc phân chia thành các dòng tế bào xương, mỡ và sụn đã được kích thích. Keo fibrin không ảnh hưởng đến sự bám dính, tăng sinh hay phân hóa của tế bào và cho phép sự bám dính và tăng trưởng của tế bào gốc trung mô trên bề mặt của nó. Sự nhuộm bằng Hoechst 33342 và iodid propidium cho thấy khả năng sống sót của tế bào gốc trung mô khi tiếp xúc với keo fibrin và khả năng của vật liệu sinh học trong việc duy trì sự sống của tế bào. Keo fibrin mới là một ứng viên giàn giáo ba chiều có khả năng duy trì sự sống của tế bào mà không làm ảnh hưởng đến sự phân hóa, và cũng có thể hữu ích trong việc phát thuốc. Keo fibrin có chi phí sản xuất thấp, không truyền các bệnh truyền nhiễm từ máu người và có những đặc tính phù hợp với giàn giáo cho tế bào gốc vì nó cho phép chuẩn bị các giàn giáo đã phân hóa phù hợp với mọi nhu cầu.
Từ khóa
#keo fibrin #tế bào gốc trung mô #giàn giáo ba chiều #kỹ thuật mô #môi trường sinh họcTài liệu tham khảo
Ahmed TAE, Giulivi A, Griffith M, Hincke M: Fibrin glues in combination with mesenchymal stem cells to develop a tissue-engineered cartilage substitute. Tissue Eng. 2011, 17: 323-
Ahmed TA, Griffith M, Hincke M: Characterization and inhibition of fibrin hydrogel degrading enzymes during development of tissue engineering scaffolds. Tissue Eng. 2007, 13: 1469-
Ahmed TA, Dare EV, Hincke M: Fibrin: a versatile scaffold for tissue engineering applications. Tissue Eng. 2008, 14: 199-
Dare EV, Griffith M, Poitras P, Kaupp JA, Waldman SD, Carlsson DJ, Dervin G, Mayoux C, Hincke MT: Genipin cross-linked fibrin hydrogels for in vitro human articular cartilage tissue-engineered regeneration. Cells Tissues Organs. 2009, 190: 313-
Caplan AI: Principles of Regenerative Medicine. 2011, Burlington, MA: Elsevier, 2
Kulterer B, Friedl G, Jandrositz A, Sanchez-Cabo F, Prokesch A, Paar C: Gene expression profiling of human mesenchymal stem cells derived from bone marrow during expansion and osteoblast differentiation. BMC Genomics. 2007, 8: 70-
Park KS, Lee YS, Kang KS: In vitro neuronal and osteogenic differentiation of mesenchymal stem cells from human umbilical cord blood. J Vet Sci. 2006, 7: 343-348.
Maumus M, Guérit D, Toupet K, Jorgensen C, Noël D: Mesenchymal stem cell-based therapies in regenerative medicine: applications in rheumatology. Stem Cell Res Ther. 2011, 2: 14-
Hashimoto J, Kariya Y, Miyazaki K: Regulation of proliferation and chondrogenic differentiation of human mesenchymal stem cells by laminin-5 (laminin-332). Stem Cells. 2006, 24: 2346-2354.
De Gemmis P, Lapucci C, Bertelli M, Tognetto A, Fanin E, Vettor R: A real-time PCR approach to evaluate adipogenic potential of amniotic fluid-derived human mesenchymal stem cells. Stem Cells Dev. 2006, 15: 719-728.
Amado LC, Saliaris AP, Schuleri KH, St John M, Xie JS, Cattaneo S: Cardiac repair with intramyocardial injection of allogeneic mesenchymal stem cells after myocardial infarction. Proc Natl Acad Sci U S A. 2005, 102: 11474-11479.
Hassan W, Dong Y, Wang W: Encapsulation and 3D culture of human adipose-derived stem cells in an in-situ crosslinked hybrid hydrogel composed of PEG-based hyperbranched copolymer and hyaluronic acid. Stem Cell Res Ther. 2013, 4: 32-
Rosso F, Marino G, Giordano A, Barbarisi M, Parmeggiani D, Barbarisi A: Smart materials as scaffolds for tissue engineering [review]. J Cell Physiol. 2005, 203: 465-
Catelas I, Sese N, Wu BM, Dunn JCY, Helgerson S, Tawil B: Human mesenchymal stem cell proliferation and osteogenic differentiation in fibrin gels in vitro. Tissue Eng. 2006, 12: 2385-
Thomazini-Santos IA, Barraviera SRCS, Mendes-Giannini MJS, Barraviera B: Surgical adhesives. J Venom Anim Toxins. 2001, 7: 159-
Barros LC, Ferreira RS, Barraviera SRCS, Stolf HO, Thomazini-Santos IA, Mendes-Giannini MJS, Toscano E, Barraviera B: A new fibrin sealant from Crotalus durissus terrificus venom: applications in medicine. J Toxicol Env Health B. 2009, 12: 553-571.
Barros LC, Soares AM, Costa FL, Rodrigues VM, Fuly AL, Giglio JR, Gallacci M, Thomazini-Santos IA, Barraviera SRCS, Barraviera B, Ferreira RS: Biochemical and biological evaluation of gyroxin isolated from Crotalus durissus terrificus venom. J Venom Anim Toxins. 2011, 17: 23-
Buchta C, Dettke M, Funovics PT, Hocker P, Knobl P, Macher M, Quehenberger P, Treitl C, Worel N: Fibrin sealants produced by the CryoSeal® FS system: product chemistry, material properties and possible preparation in the autologous preoperative setting. Vox Sang. 2004, 86: 257-
Carless PA, Anthony DM, Henry DA: Systematic review of the use of fibrin sealant to minimize perioperative allogeneic blood transfusion. Br J Surg. 2002, 89: 695-
Bensaid W, Triffitt JT, Blanchat C, Oudina K, Sedel L, Petite H: A biodegradable fibrin scaffold for mesenchymal stem cell transplantation. Biomaterials. 2003, 24: 2497-
Stolf HO: The use of fibrin adhesive derived from snake venom and the evaluation of skin grafting using skin from the patient’s nasolabial fold. J Venom Anim Toxins. 1999, 5: 227-
Lima-Neto JF, Fernandes CB, Alvarenga MA, Golim MA, Landim-Alvarenga FC: Viability and cell cycle analysis of equine fibroblasts cultured in vitro. Cell Tissue Bank. 2010, 11: 261-
Lima SAF, Wodewotzky TI, Lima-Neto JF, Beltrão-Braga PCB, Landim-Alvarenga FC: Diferenciação in vitro de células-tronco mesenquimais da medula óssea de cães em precursores osteogênicos [In vitro differentiation of mesenchymal stem cells of dogs into osteogenic precursors]. Pesquisa Vet Brasil. 2012, 32: 463-
Bydlowski SP, Debes AA, Maselli LMF, Janz FL: Biological characteristics of mesenchymal stem cells. Rev Bras Hematol Hemoter. 2009, 31: 25-35.
Fu L, Zhu L, Huang Y, Lee TD, Forman SJ, Shih CC: Derivation of neural stem cells from mesenchymal stem cells: evidence for a bipotential stem cell population. Stem Cells Dev. 2008, 17: 1109-1122.
Mehlhorn AT, Niemeyer P, Kaiser S, Finkenzeller G, Stark GB, Sudkamp NP, Schmal H: Differential expression pattern of extracellular matrix molecules during chondrogenesis of mesenchymal stem cells from bone marrow and adipose tissue. Tissue Eng. 2006, 12: 2853-
Gardin C, Vindigni V, Bressan E, Ferroni L, Nalesso E, Puppa AD, D’Avella D, Lops D, Pinton P, Zavan B: Hyaluronan and fibrin biomaterial as scaffolds for neuronal differentiation of adult stem cells derived from adipose tissue and skin. Int J Mol Sci. 2011, 12: 6749-6764.
Trubiani O, Orsini G, Zini N, Di Iorio D, Piccirilli M, Piattelli A: Regenerative potential of human periodontal ligament derived stem cells on three-dimensional biomaterials: a morphological report. J Biomed Mater Res. 2008, 87: 986-993.
Yamada Y, Boo JS, Ozawa R, Nagasaka T, Okazaki Y, Hata K, Ueda M: Bone regeneration following injection of mesenchymal stem cells and fibrin glue with a biodegradable scaffold. J Cranio Maxill Surg. 2003, 31: 27-33.
Ferreira ASBS, Barraviera B, Barraviera SRCS, Abbade LPF, Caramori CA, Ferreira RS: A success in toxinology translational research in Brazil: bridging the gap. Toxicon. 2013, 69: 50-54.
Barbizan R, Castro MV, Rodrigues AC, Barraviera B, Ferreira RS, Oliveira ALR: Motor recovery and synaptic preservation after ventral root avulsion and repair with a fibrin sealant derived from snake venom. Plos One. 2013, 8: 63260-