Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Mô hình mèo cho các nghiên cứu thực nghiệm về phù não quanh khối u
Tóm tắt
Một mô hình in vivo cho nghiên cứu hình ảnh tương quan của khối u mô thần kinh nội sọ và phù não quanh khối u đã được phát triển. Những con mèo đực và cái trưởng thành được cấy ghép 1 × 10^6 hoặc 5 × 10^5 tế bào glioma 9L có khối u thái dương có đường kính 4 mm hoặc lớn hơn và cho thấy dấu hiệu tăng áp lực nội sọ sau 13.7±1.9 ngày hoặc 19.2±1.3 ngày kể từ khi cấy ghép. Không cần suy giảm miễn dịch và tỷ lệ thành công trong việc phát triển khối u sau khi cấy ghép là 88%. Về mặt mô học, khối u giống một u nguyên bào thần kinh ác tính. Khối u này chứa hàm lượng nước cao nhất (85.94%); chất trắng quanh khối u có mức độ phù nề cao hơn (73.01%) so với chất trắng ở bán cầu đối diện (69.04%), phẫu thuật giả (69.41%) và não kiểm soát (68.76%). Không có sự tương quan giữa kích thước khối u và hàm lượng nước trong khối u hoặc chất trắng. Sự gia tăng albumin mô trong chất trắng quanh khối u cho thấy sự rối loạn chức năng hàng rào máu-não trong khối u và xác nhận nguồn gốc mạch máu của phù nề. Hình ảnh cộng hưởng từ hạt proton cung cấp độ phân giải không gian và độ tương phản tốt với cường độ tín hiệu tăng lên trong chất trắng phù nề, giảm dần theo khoảng cách từ khối u. Bộ não lớn của mô hình động vật này cho phép sử dụng hình ảnh liên tục và đo lường sinh hóa khu vực tương quan trong một động vật đơn lẻ. Những ưu điểm khác của mô hình này là khả năng dự đoán và thời gian ngắn cần thiết để tạo ra khối u với phù nề quanh khối u rõ rệt.
Từ khóa
#mô hình mèo #khối u thần kinh #phù não #hình ảnh cộng hưởng từ #nội sọ #chức năng hàng rào máu-nãoTài liệu tham khảo
Hossmann KA, Weschler W, Wilmes F: Experimental peritumorous edema. Acta Neuropathol (Berl) 45:195–203, 1979
Laemmli UK: Cleavage of structural proteins during the assembly of the head bacteriophage T4. Nature 227:680–685, 1970
Groothuis Dr, Mikhael MA, Fischer JM, Pasternak JF, Fouts T, Bigner DD, Vick NA: Computerized tomography of virally induced canine brain tumors: A preliminary report. J Comput Assist Tomogr 5:538–543, 1981
Janisch W, Horn KH, Scholtze P, Schreiber D: Experimental induction of brain tumors by intracerebral inoculation of Rous sarcoma virus into newborn Rhesus monkeys. Exp Pathol (Jena) 2:226–235, 1968
Kumanishi T, Ikuta F, Nishida K, Veki K, Yamamoto T: Brain tumors induced in adult monkeys by Schmidt-Ruppin strain of Rous sarcoma virus. Gann 64:641–643, 1973
London WT, Houff SA, Madden DL, Fucillo DA, Gravell M, Wallen WC, Palmer AE, Sever JL, Padgett BL, Walker DL, Zu Rheim GM: Brain tumors in owl monkeys inoculated with human polyomavirus (JC virus). Science 201:1246–1249, 1978
Rieth KG, Di Chiro G, London WT, Sever JL, Hoff SA, Kornblith PL, McKeever PE, Buonomo C, Padgett BL, Walker DL: Experimental glioma in primates: a computerized tomography model. J Comput Assist Tomogr 4:285–290, 1980
Tabuchi K, Nishimoto A, Matsumoto K, Satoh T, Nakasone S, Fujiwara T, Ogura H: Establishment of a brain-tumor model in adult monkeys. J Neurosurg 63:912–916, 1985
Bigner DD, Kvedar JP, Schaffer TC, Vick NA, Engel WK, Day ED: Factors influencing the cell type of brain tumors induced in dogs by Schmidt-Ruppin Rous Sarcoma Virus. J Neuropathol Exp Neurol 31:583–595, 1972
Cochran ST, Higashido RT, Holburt E, Winter J, Iwamoto K, Norman A: Development of rabbit brain tumor model for radiologic research. Invest Radiol 20:928–932, 1985
Ridley A, Cavanagh JB: Cellular reactions to heterologous, homologous, and autologous skin implanted into brain. J Path (99):193–203, 1969
Scheinberg LC, Edelman FL, Levy WA: Is the Brain ‘An Immunologically Privileged Site?’ 1. Studies based on Intracerebral Tumor Homotransplantation and Isotransplantation to Sensitized Hosts. Arch Neurol 11:248–264, 1964
Takeuchi J, Barnard RO: Perivascular lymphocytic cuffing in astrocytomas. Acta Neuropathol (35):265–271, 1976
Brooks WH, Markesbery WR, Gupta GD, Roszman TL: Relationship of lympocytic invasion and survival of brain tumor patients. Ann Neurol 4:219–224, 1978
Ridley A, Cavanagh JB: Lymphocytic infiltration in gliomas: evidence of possible host resistance. Brain (94):117–124, 1971
Wilkstrand CJ, Bigner SH, Bigner DD: Demonstration of complex heterogeneity in human glioma cell line and eight derived clones by specific monoclonal antibodies. Cancer Res 43:3327–3334, 1983
Fontana A, Hengartner H, Tribolet N, Weber E: Glioblastoma cells release interleukin 1 and factors inhibiting interleukin 2-mediated effects. J Immunol 132:1837–1844, 1984
Levin VA, Freeman-Dove MA, Landahl HD: Permeability characteristics of brain adjacent to tumors in rats. Arch Neurol 32:785–791, 1975
Groothuis DR, Fischer JM, Vick NA, Bigner DD: Comparative permeability of different glioma models to horseradish peroxidase. Cancer Treatment Reports 65(Suppl 2):13–18, 1981
Vick N, Khandekar JD, Bigner DD: Chemotherapy of brain tumors — The blood brain barrier is not a factor. Arch Neurol 34:523–524, 1977
Neuwelt EA: Therapeutic potential for blood-brain barrier modification in malignant brain tumor. In: Rosenblum ML and Wilson CB (eds) Progress in Experimental Tumor Research. v28. S. Kargel, Basel, 1984, pp 28–35
Benjamen RS, Wiernik PH, Bachar NR: Adriamycin chemotherapy-efficacy, safety and pharmacological basis of intermittent single high dose schedule. Cancer 33:19–27, 1974