Bệnh héo Verticillium trên cây ô liu ở Thổ Nhĩ Kỳ: một khảo sát về tầm quan trọng của bệnh, sự đa dạng của tác nhân gây bệnh và độ nhạy cảm của các giống ô liu liên quan

Sibel Dervis1, Jesús Mercado-Blanco2, Latife Erten3, Antonio Valverde-Corredor2, Encarnación Pérez-Artés2
1Department of Plant Protection, Faculty of Agriculture, University of Mustafa Kemal, Antakya, Turkey
2Department of Crop Protection, Instituto de Agricultura Sostenible, CSIC, Córdoba, Spain
3Olive Research Institute, Turkish Ministry of Agriculture and Rural Affairs, Izmir, Turkey

Tóm tắt

Một khảo sát toàn diện về sự phổ biến và số lượng mắc bệnh héo Verticillium trên cây ô liu ở Thổ Nhĩ Kỳ đã được thực hiện trong 6 năm (2003-2008). Đánh giá nhóm tương thích sinh dưỡng (VCG) và phân tích gen dựa trên PCR đã được sử dụng để đánh giá sự phân bố của các kiểu hình gây rụng lá (D) và không gây rụng lá (ND) của Verticillium dahliae trong các khu vực được khảo sát. Tỷ lệ tác nhân gây bệnh đạt 35% trong tổng số vườn ô liu được kiểm tra và tỷ lệ mắc bệnh đạt 3,1%. VCG1A là nhóm chiếm ưu thế (29,3%) và đã gây nhiễm tất cả các giống chính được trồng tại Thổ Nhĩ Kỳ. Hai nhóm VCG còn lại được phát hiện (2A và 4B) có ý nghĩa thấp hơn (4,9% và 0,9%, tương ứng). Tỷ lệ mắc bệnh do nhiễm VCG1A cao hơn (dao động từ 1,1% đến 6,9%) so với tỷ lệ do VCG2A và VCG4B gây ra tại 10 tỉnh (Manisa, Aydin, Kahramanmaras, Izmir, Mugla, Kilis, Denizli, Gaziantep, Mardin và Balikesir). Tuy nhiên, VCG2A và 4B lại phổ biến hơn (và chịu trách nhiệm cho tỷ lệ mắc bệnh cao hơn) so với VCG1A tại ba tỉnh (Hatay, Osmaniye và Bursa). Cuối cùng, các chủng VCG1A được tìm thấy ở tất cả các tỉnh ngoại trừ Canakkale, và sự hiện diện đồng thời của ba VCG chỉ được xác thực tại tỉnh Hatay. Một thử nghiệm nhiễm nhân tạo (bao gồm 19 chủng V. dahliae đại diện) cho thấy rằng các chủng VCG1A (13) trong nhóm là hung hăng hơn và gây rụng lá, trong khi các chủng VCG2A (5) và VCG4B (1) gây ra triệu chứng nhẹ hơn. Trong một nhóm VCG, độc lực khác nhau giữa các chủng nhiễm cùng một giống ô liu và độc lực này cũng liên quan đến độ nhạy cảm khác nhau của các giống được thử nghiệm (‘Manzanilla’, ‘Ayvalik’ và ‘Gemlik’). Phân loại hình thái phân tử cho phép xác định các kiểu hình D (VCG1A) và ND (VCG2A/4B), điều này tương quan với kết quả từ các thử nghiệm về độc lực. Đáng chú ý, quần thể kiểu hình V. dahliae VCG1A/D gây nhiễm ô liu ở Thổ Nhĩ Kỳ có sự khác biệt về mặt phân tử so với quần thể đã được xác định trước đó ở Tây Ban Nha.

Từ khóa

#bệnh héo Verticillium #Verticillium dahliae #cây ô liu #nhóm tương thích sinh dưỡng #độc lực #sự nhạy cảm của giống cây trồng

Tài liệu tham khảo

Bejarano-Alcázar, J., Blanco-López, M. A., Melero-Vara, J. M., & Jiménez-Díaz, R. M. (1995). Influence of inoculum density of defoliating and nondefoliating patothypes of Verticillium dahliae in epidemics of Verticillium wilt of cotton in southern Spain. Phytopathology, 85, 1474–1481. Carder, J. H., Morton, A., Tabrett, A. M., & Barbara, D. J. (1994). Detection and differentiation by PCR of subspecific groups within two Verticillium species causing vascular wilts in herbaceous hosts. In A. Schots, F. M. Dewey, & R. Oliver (Eds.), Modern assays for plant pathogenic fungi (pp. 91–97). Oxford: CAB International. Cherrab, M., Bennani, A., Charest, P. M., & Serrhini, M. N. (2002). Pathogenicity and vegetative compatibility of Verticillium dahliae isolates from olive in Morocco. Journal of Phytopathology, 84, 703–709. Colella, C., Miacola, C., Amenduni, M., D’Amico, M., Bubici, G., & Cirulli, M. (2008). Sources of Verticillium wilt resistance in wild olive germplasm from the Mediterranean region. Plant Pathology, 57, 533–539. Collado-Romero, M., Mercado-Blanco, J., Olivares-García, C., Valverde-Corredor, A., & Jiménez-Díaz, R. M. (2006). Molecular variability within and among Verticillium dahliae vegetative compatibility groups determined by fluorescent amplified fragment length polymorphism and polymerase chain reaction markers. Phytopathology, 96, 485–495. Correll, J. C., Klittich, C. J. R., & Leslie, J. F. (1987). Nitrate nonutilizing mutants of Fusarium oxysporum and their use in vegetative compatibility tests. Phytopathology, 77, 1640–1646. Dervis, S., & Bicici, M. (2005). Vegetative compatibility groups in Verticillium dahliae isolates from cotton in Turkey. Phytoparasitica, 33, 157–168. Dervis, S., Erten, L., Soylu, S., Tok, F. M., Kurt, S., Yildiz, M., et al. (2007). Vegetative compatibility groups in Verticillium dahliae isolates from olive in Western Turkey. European Journal of Plant Pathology, 119, 437–447. Dervis, S., Kurt, S., Soylu, S., Erten, L., Soylu, E. M., Yildiz, M., et al. (2008). Vegetative compatibility groups of Verticillium dahliae from cotton in the Southeastern Anatolia region of Turkey. Phytoparasitica, 36, 74–83. Erten, L. (2004). Determination of susceptibility of some olive and rootstocks against Verticillium wilt (Verticillium dahliae Kleb.). Ph.D. Thesis, Aegean University, Turkey. Göre, E. (2007). Vegetative compatibility and pathogenicity of Verticillium dahliae isolates from the Aegean Region of Turkey. Phytoparasitica, 35, 222–231. Jiménez-Díaz, R. M., Tjamos, E. C., & Cirulli, M. (1998). Verticillium wilts of major tree hosts. In J. Hiemstra & D. Harris (Eds.), Compendium of Verticillium wilt in tree species (pp. 55–57). Wageningen: Ponsen and Looijen. Joaquim, T. R., & Rowe, R. C. (1990). Reassessment of vegetative compatibility relationships among strains of Verticillium dahliae using nitrate-nonutilizing mutants. Phytopathology, 80, 1160. Katan, T. (2000). Vegetative compatibility in populations of Verticillium—an overview. In E. C. Tjamos, R. C. Rowe, J. B. Heale, & D. R. Fravel (Eds.), Advances in Verticillium research and disease management (pp. 69–86). St. Paul: APS. Korolev, N., & Katan, T. (1997). Improved medium for selecting nitrate nonutilizing (nit) mutants of Verticillium dahliae. Phytopathology, 87, 1067–1070. Korolev, N., Katan, J., & Katan, T. (2000). Vegetative compatibility groups of Verticillium dahliae in Israel: their distribution and association with pathogenicity. Phytopathology, 90, 529–566. Korolev, N., Pérez-Artés, E., Bejarano-Alcázar, J., Rodríguez-Jurado, D., Katan, J., Katan, T., et al. (2001). Comparative study of genetic diversity and pathogenicity among populations of Verticillium dahliae from cotton in Spain and Israel. European Journal of Plant Pathology, 107, 443–456. Korolev, N., Pérez-Artés, E., Mercado-Blanco, J., Bejarano-Alcázar, J., Rodríguez-Jurado, D., Jiménez-Díaz, R. M., et al. (2008). Vegetative compatibility of cotton defoliating Verticillium dahliae in Israel and its pathogenicity to various hosts. European Journal of Plant Pathology, 122, 603–617. López-Escudero, F. J., & Blanco-López, M. A. (2001). Effect of a single or double soil solarization to control Verticillium wilt in established olive orchards in Spain. Plant Disease, 85, 489–496. López-Escudero, F. J., del Río, C., Caballero, J. M., & Blanco-López, M. A. (2004). Evaluation of olive cultivars for resistance to Verticillium dahliae. European Journal of Plant Pathology, 110, 79–85. Mercado-Blanco, J., Rodríguez-Jurado, D., Pérez-Artés, E., & Jiménez-Díaz, R. M. (2001). Detection of the nondefoliating pathotype of Verticillium dahliae in infected olive plants by nested PCR. Plant Pathology, 50, 609–619. Mercado-Blanco, J., Rodríguez-Jurado, D., Pérez-Artés, E., & Jiménez-Díaz, R. M. (2002). Detection of the defoliating pathotype of Verticillium dahliae in infected olive plants by nested-PCR. European Journal of Plant Pathology, 108, 1–13. Mercado-Blanco, J., Rodríguez-Jurado, D., Parrilla-Araujo, S., & Jiménez-Díaz, R. M. (2003). Simultaneous detection of the defoliating and nondefoliating Verticillium dahliae pathotypes in infected olive plants by duplex, nested polymerase chain reaction. Plant Disease, 87, 1487–1494. Navas Cortés, J. A., Landa, B. B., Mercado-Blanco, J., Trapero-Casas, J. L., Rodríguez-Jurado, D., & Jiménez-Díaz, R. M. (2008). Spatiotemporal analysis of spread of infections by Verticillium dahliae pathotypes within a high tree density olive orchard in Southern Spain. Phytopathology, 98, 167–180. Owen, C. A., Bita, E. C., Banilas, G., Hajjar, S. E., Sellianakis, V., Aksoy, U., et al. (2005). AFLP reveals structural details of genetic diversity within cultivated olive germplasm from the Eastern Mediterranean. Theoretical and Applied Genetics, 110, 1169–1176. Pérez-Artés, E., García-Pedrajas, M. D., Bejarano-Alcázar, J., & Jiménez-Díaz, R. M. (2000). Differentiation of cotton-defoliating and nondefoliating pathotypes of Verticillium dahliae by RAPD and specific PCR analyses. European Journal of Plant Pathology, 106, 507–517. Rodríguez, E., García, P. A., García-Garrido, J. M., García, P. A., & Campos, M. (2008). Agricultural factors affecting Verticillium wilt in olive orchards in Spain. European Journal of Plant Pathology, 122, 287–295. Rodríguez-Jurado, D. (1993). Interacciones huésped-parásito en la Verticilosis del olivo (Olea europaea L.) inducida por Verticillium dahliae Kleb. PhD Thesis, University of Córdoba, Spain. Rowe, R. C. (1995). Recent progress in understanding relationships between Verticillium species and subspecific groups. Phytoparasitica, 23, 31–38. Saydam, C., & Copcu, M. (1972). Verticillium wilt of olives in Turkey. Journal of Turkish Phytopathology, 9, 235–252. Tjamos, E. C. (1993). Prospects and strategies in controlling Verticillium wilt of olives. Bulletin OEPP/EPPO Bulletin, 23, 505–512. Truett, G. E., Heeger, P., Mynatt, R. L., Truett, A. A., Walker, J. A., & Warman, M. L. (2000). Preparation of PCR-quality mouse genomic DNA with hot sodium hydroxide and Tris (HotSHOT). BioTechniques, 29, 52–54. Tsror, L., & Levin, A. G. (2003). Vegetative compatibility and pathogenicity of Verticillium dahliae Kleb. isolates from olive in Israel. Journal of Phytopathology, 151, 451–455. ZAE. (2008). Olive Research Institute Statistical Database, http://www.zae.gov.tr/.