Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Xác thực phương pháp HPLC-DAD để xác định phenolic thực vật
Tóm tắt
Một phương pháp HPLC-DAD đảo ngược chọn lọc, nhạy và chính xác đã được phát triển và xác thực để xác định đồng thời sáu axit phenolic trong chiết xuất nước và các dạng thủy phân của chúng được chuẩn bị từ Solanum elaeagnifolium Cav., họ Cà, Ampelocissus acapulcensis (Kunth) Planch., họ Nho, hoặc Brosimum alicastrum Sw., họ Dâu. Phương pháp mới cho thấy độ tuyến tính tốt (r > 0.999) trong phạm vi nồng độ tương đối rộng (0,5–100 mg/l). Giới hạn phát hiện và định lượng cho các hợp chất nằm trong khoảng 0,097–0,467 mg/l và 0,097–0,496 mg/l, tương ứng. Tỷ lệ phục hồi của các hợp chất được tính toán ở ba nồng độ khác nhau trong khoảng 88,07–109,17% và hiệu ứng ma trận nhỏ hơn 5% cho tất cả các axit phenolic. Cuối cùng, phương pháp HPLC mà chúng tôi phát triển là đơn giản, đáng tin cậy và đã được áp dụng thành công để xác định và định lượng các axit phenolic trong các chiết xuất nước phức tạp từ các loài thuốc, có thể hữu ích cho việc phân tích các loại trà mà người dân tiêu thụ trong y học dân gian.
Từ khóa
#HPLC #axit phenolic #Solanum elaeagnifolium #Ampelocissus acapulcensis #Brosimum alicastrum #chiết xuất nướcTài liệu tham khảo
Abad-García, B., Berrueta, LA., López-Márquez, D.M., Crespo-Ferrer, I., Gallo, B., Vicente, F., 2007. Optimization and validation of a methodology based on solvent extraction and liquid chromatography forthe simultaneous determination of several polyphenolic families in fruitjuices. J. Chromatogr. A 1154, 87–96.
Arranz, S., Saura-Calixto, F., 2010. Analysis of polyphenols in cereals may be improved performing acidic hydrolysis: a study in wheat flour and wheat bran and cereals of thediet. J. Cereal Sci. 51, 313–318.
Cappiello, A., Famiglini, G., Palma, P., Trufelli, H., 2010. Matrix effects in liquid chromatography-massspectrometry. J. Liq. Chromatogr. Relat. Technol. 33, 1067–1081.
Commission Decision 2002/657/EC of August 2002. Off J Eur Commun. L221:8-36.
De Souza, T.P., Holzschuh, M.H., Lionço, M.I., GonzálezOrtega, G., Petrovick, P.R., 2002. Validation of a LC method forthe analysis of phenolic compounds from aqueous extract of Phyllanthus niruri aerialparts. J. Pharm. Biomed. Anal. 30, 351–356.
Farzaei, M.H., Khanavi, M., Moghaddam, G., Dolatshahi, F., Rahimi, R., Shams-Ardekani, M.R., Gholamreza, A., Hajimahmoodi, M., 2014. Standardization of Tragopogon graminifolius DC. Extract based on phenolic compounds and antioxidantactivity. J. Chem., 1–6.
Gómez-Ramos, M., del, M., Rajski, Ł., Lozano, A., Fernández-Alba, A.R., 2016. The evaluation of matrix effects in pesticide multi-residue methods via matrix fingerprinting using liquid chromatography electrospray high-resolution mass spectrometry. Anal. Methods 8, 4664–4673.
Houda, M., Derbré, S., Jedy, A., Tlili, N., Legault, J., Richomme, P., Limam, F., Saidani-Tounsi, M., 2014. Combined anti-ages and antioxidant activities of different solvent extracts of Solanum elaeagnifolium Cav(Solanacea) fruits during ripening and related to their phytochemical compositions. EXCLIJ. 13, 1029–1042.
Ibrahim, R.M., El-Halawany, A.M., Saleh, D.O., Naggar, E.M.B.E., El-Shabrawy, A.E.R.O., El-Hawary, S.S., 2015. HPLC-DAD-MS/MS profiling of phenolics from Securigera securidaca flowers and its anti-hyperglycemic and anti-hyperlipidemic activities. Rev. Bras. Farmacogn. 25, 134–141.
ICH, 1996/2005. International Conference on Harmonization of Technical Requirements for Registration of Pharmaceuticals for Human Use. Validation of Analytical Procedures: Text and Methodology. ICH, Geneva.
Lin, D., Xiao, M., Zhao, J., Li, Z., Xing, B., Li, X., Kong, M., Li, L., Zhang, Q., Liu, Y., Chen, H., Qin, W., Wu, H., Chen, S., 2016. An overview of plant phenolic compounds and their importance in human nutrition and management of type 2 diabetes. Molecules. 21, https://doi.org/10.3390/molecules21101374.
Ortiz, M., Azan˜ón, V., Melgar, M., Elias, L., 1995. The corn tree (Brosimum alicastrum): a food source forthe tropics. World Rev. Nutr. Diet. 77, 135–146.
Ozer, H.K., 2017. Phenolic compositions and antioxidant activities of Maya nut (Brosimum alicastrum): comparison with commercial nuts. Int. J. Food Prop. 20, 2772–2781.
Pires, F.B., Dolwitsch, C.B., Dal Prá, V., Faccin, H., Monego, D.L., Carvalho, L.M., Viana, C., Lameira, O., Lima, F.O., Bressan, L., da Rosa, M.B., 2017. Qualitative and quantitative analysis of the phenolic content of Connarus var. angustifolius, Cecropia obtusa, Cecropia palmata and Mansoa alliacea based on HPLC-DAD and UHPLC-ESI-MS/MS. Rev. Bras. Farmacogn. 27, 426–433.
Ross, K.A., Beta, T., Arntfield, S.D., 2009. A comparative study on the phenolic acids identified and quantified in dry beans using HPLC as affected by different extraction and hydrolysis methods. Food Chem. 113, 336–344.
SANTE/11945/2015, guidance document on analytical quality control and method validation procedures for pesticides residues analysis in food and feed. SANTE/11945/2015. DG-SANTE, European Commission 2016.
Sinha, A.K., Verma, S.C., Sharma, U.K., 2007. Development and validation of an RP-HPLC method for quantitative determination of vanillin and related phenolic compounds in Vanilla planifolia. J. Sep. Sci. 30, 15–20.
Vergara-Santana, M.I., Larios-Cuevas, E., Lemus-Juárez, S., 2013. La historia oral a través de métodosetnobotánicos: compartiendoconocimientotradicional sobre plantas medicinales. In: Covarrubias-Cuellar, K.Y., Camarena-Ocampo, M. (Eds.). La historia oral y la interdisciplinariedad retos y perspectivas. Universidad de Colima, Colección Culturas Contemporáneas, México, pp. 49–73.
Wen, D., Li, C., Di, H., Liao, Y., Liu, H., 2005. A universal HPLC method forthe determination of phenolic acids in compound herbalmedicines. J. Agric. Food Chem. 53, 6624–6629.
Ziaková, A., Brandsteterová, E., 2003. Validation of HPLC determination of phenolic acids present in some Lamiaceae familyplants. J. Liq. Chromatogr. Relat. Technol. 26, 443–445.