Sự tiếp nhận dấu hiệu protein ngoại sinh trong các tế bào của nhú thận chuột rat

Springer Science and Business Media LLC - Tập 93 - Trang 63-68 - 1989
B. Sundelin1,2, S.-O. Bohman1,2
1Department of Pathology, Huddinge Hospital, Huddinge, Sweden
2Laboratory for Biological Structure Research, Department of Anatomy, Karolinska Institutet, Stockholm, Sweden

Tóm tắt

Để nghiên cứu khả năng thực bào của các loại tế bào khác nhau trong nhú thận chuột rat, đặc biệt là các tế bào kẽ, enzyme peroxidase từ củ cải đường (HRP) (8 mg/100 g trọng lượng cơ thể) đã được tiêm tĩnh mạch vào chuột rat trưởng thành. Sự phân bố của peroxidase đã được nghiên cứu trong các động vật được cố định bằng perfusion sau 60 và 180 phút tiêm và được phát hiện là tương tự nhau sau cả hai khoảng thời gian. Các tế bào biểu mô của ống góp đã tiếp nhận lượng dấu hiệu lớn nhất. HRP chủ yếu được tìm thấy trong các thể lysosome lớn giống như, nằm ở phần đáy của tế bào chất, cho thấy sự tiếp nhận từ không gian kẽ. Tuy nhiên, một lượng nhỏ dấu hiệu cũng được thấy trong các túi vi thể gần màng tế bào lòng. Các tế bào kẽ của các động vật bị tiêm HRP đã thay đổi cấu trúc siêu vi và có nhiều hõm vào không đều của màng tế bào. Các tế bào chỉ tiếp nhận một lượng nhỏ dấu hiệu, nằm trong các thể lysosome tròn nhỏ. Do đó, các tế bào kẽ không có đặc điểm của tế bào thực bào, cả trong trạng thái tự nhiên hay khi bị thách thức với một protein ngoại bào.

Từ khóa

#thực bào #tế bào kẽ #nhú thận #chuột rat #enzyme peroxidase

Tài liệu tham khảo

Änggård E, Bohman S-O, Griffin JE III, Larsson C, Maunsbach AB (1972) Subcellular localization of the prostaglandin system in the rabbit renal papilla. Acta Physiol Scand 84:231–246 Bohman S-O (1974) The ultrastructure of the rat renal medulla as observed after improved fixation methods. J Ultrastruct Res 47:329–360 Bohman S-O (1980) The ultrastructure of the renal medulla and the interstitial cells. In: Mandal A, Bohman S-O (eds) The renal papilla and hypertension. Plenum Press, New York, pp 7–33 Bohman S-O (1983) The ultrastructure of the renal interstitium. In: Cotran RS (ed) Contemporary issues in nephrology, vol IX, Tubulointerstitial diseases. Churchill Livingstone, New York, pp 1–34 Bohman S-O, Maunsbach AB (1972) Ultrastructure and biochemical properties of subcellular fractions from rat renal medulla. J Ultrastruct Res 38:225–245 Bulger RE, Trump BF (1966) Fine structure of the rat renal papilla. Am J Anat 118:685–721 Cotran RS, Karnovsky MJ (1967) Vascular leakage induced by horseradish peroxidase in the rat. Proc Exp Soc Biol Med 126:557–561 Edelson PJ, Zwiebel R, Cohn ZA (1975) The pinocytic rate of activated macrophages. J Exp Med 142:1150–1164 Graham RC, Karnovsky MJ (1966) The early stages of absorption of injected horseradish peroxidase in the proximal tubules of mouse kidney: Ultrastructural cytochemistry by a new technique. J Histochem Cytochem 14:291–302 Hart DNJ, Fabre JW (1981) Demonstration and characterization of Ia-positive dendritic cells in the interstitial connective tissues of rat heart and other tissues, but not brain. J Exp Med 153:347–361 Hume DA, Gordon S (1983) Mononuclear phagocyte system of the mouse defined by immunohistochemical localization of antigen F4/80. Identification of resident macrophages in renal medullary and cortical interstitium and the juxtaglomerular complex. J Exp Med 157:1704–1709 Langer KH (1975) Niereninterstitium — Feinstrukturen und Kapillarpermeabilität. II. Elektronenmikroskopische Permeabilitäts-studien an peritubulären Kapillaren der Niere (zugleich ein Beitrag zur kapillären Porentheorie). Cytobiologie 10:185–198 Moestrup SK, Christensen EI, Sottrup-Jensen L, Gliemann J (1987) Binding and receptor-mediated endocytosis of pregnancy zone protein-proteinase complex in rat macrophages. Biochim Biophys Acta 930:297–303 Muirhead EE (1986) Renomedullary system of blood pressure control. Hypertension 8 [Suppl I]:I-38 Muirhead EE (1988) The renomedullary system of blood pressure control. Am J Med Sci 295:231–233 Nissen HM, Bojesen I (1969) On lipid droplets in renal interstitial cells. IV. Isolation and identification. Z Zellforsch 97:274–284 Osvaldo L, Latta H (1966) Interstitial cells of the renal medulla. J Ultrastruct Res 15:589–613 Panner BJ, Rifkin BR (1973) Peroxidase uptake by renal papillary cells of normal and hypokalemic rats. Lab Invest 28:305–312 Smith RE, Farquhar MG (1965) Preparation of nonfrozen sections for electron microscope cytochemistry. Sci Instrum News 10:13–18 Steinman RM, Cohn ZA (1973) Identification of a novel cell type in peripheral lymphoid organs of mice. I. Morphology, quantiation, tissue distribution. J Exp Med 137:1142 Steinman RM, Cohn ZA (1974) Identification of a novel cell type in peripheral lymphoid organs of mice. II. Functional properties in vitro. J Exp Med 139:380–397 Steinman RM, Kaplan G, Witmer MD, Cohn ZA (1979) Identification of a novel cell type in peripheral lymphoid organs of mice. V. Purification of spleen dendritic cells, new surface markers, and maintenance in vitro. J Exp Med 149:1–16 Straus W (1971) Comparative analysis of the concentration of injected horseradish peroxidase in cytoplasmic granules of the kidney cortex, in the blood, urine, and liver. J Cell Biol 48:620–632 Straus W (1972) Cytochemical observations on the transport of horseradish peroxidase in different segments of the nephron. Histochem J 4:517–529 Wilde WS, Vorburger C (1967) Albumin multiplier in kidney vasa recta analyzed by microspectrophotometry of T-1824. Am J Physiol 213:1233–1243 Wisse E (1974) Observations on the fine structure and peroxidase cytochemistry of normal rat liver Kupffer cells. J Ultrastruct Res 46:393–426