Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Hai dòng tế bào biểu mô MDCK với phản ứng về thể tích và ion khác nhau đối với ionophore canxi A23187
Tóm tắt
Tế bào thận chó Madin-Darby (MDCK) đã bị mất thể tích khi tiếp xúc với 50 μM ionophore canxi A23187. Cơ chế ion học cho sự giảm thể tích khác nhau giữa hai loại tế bào. MDCK1 mất kali, tương tự như các tế bào đang trải qua giảm thể tích điều hòa trong môi trường ít nước. MDCK2 chủ yếu mất natri, cũng như các tế bào có AMP vòng tăng cao hoặc khi được điều trị với amiloride. Những tác động của A23187 và dibutyryl-cyclic AMP lên hàm lượng Na và K cũng như thể tích cho thấy rằng các chất nhắn thứ hai nội bào có thể kích hoạt các cơ chế khác nhau để giảm thể tích tế bào.
Từ khóa
#tế bào MDCK #ionophore canxi #giảm thể tích #cơ chế ion học #nhắn thứ hai nội bàoTài liệu tham khảo
Allen, J. C.; Coffey, A. K.; Mills, J. W. Involvement of cytoskeletal organization and Na/H exchange in dibutyryl cyclic AMP induced alterations of MDCK cell volume. Alvarado, F. and van Os, C. H. eds. Ion Gradient Coupled Transport. INSERM Symposium No. 26. New York: Elsevier; 1986:415–419.
Benos, D. J. Amiloride: a molecular probe of sodium transport in tissues and cells. Am. J. Physiol. 242: C131-C145; 1982.
Brown, C. D. A.; Simmons, N. L. Catecholamine stimulation of Cl secretion in MDCK cell epithelium. Biochim. Biophys. Acta 649: 427–435; 1981.
Cala, P. M. Volume regulation by flounder red blood cells in anisotonic media. J. Gen. Physiol. 6: 537–552; 1977.
Cala, P. M. Cell volume regulation by Amphiuma red blood cells. The role of Ca+2 as a modulator of alkali metal/H+ exchange. J. Gen. Physiol. 82: 761–784; 1983.
Cereijido, M.; Meza, I.; Martinez-Palomo, I. Occluding junctions in cultured epithelial monolayers. Am. J. Physiol. 240: C96-C102; 1981.
Devis, P. E.; Grohol, S. H.; Taub, M. Dibutyryl cyclic AMP resistant MDCK cells in serum-free medium have reduced cyclic AMP dependent protein kinase and a diminished effect of PGE1 on differentiated function. J. Cell. Physiol. 125: 23–35; 1985.
Dunnet, C. W. New tables for multiple comparisons with a control. Biometrics 20: 482–491; 1964.
Foster, D. O.; Pardee, A. B. Transport of amino acids by confluent and nonconfluent 3T3 and polyoma virus-transformed 3T3 cells growing on glass coverslips. J. Biol. Chem. 244: 2675–2681; 1969.
Grantham, J. J.; Lowe, C. M.; Dellasega, M., et al. Effect of hypotonic medium on K and Na content of proximal renal tubules. Am. J. Physiol. 232: F42-F49; 1977.
Grinstein, S.; Dupre, A.; Rothstein, A. Volume regulation in human lymphocytes. Role of calcium. J. Gen. Physiol. 79: 849–868; 1982.
Hassid, A. Modulation of cyclic 3′, 5′-adenosine monophosphate in cultured renal (MDCK) cells by endogenous prostaglandins. J. Cell. Physiol. 116: 297–302; 1983.
Husted, R. F.; Welsh, M. J.; Stokes, J. B. Variability of functional characteristics of MDCK cells. Am. J. Physiol. 250: C214-C221; 1986.
Mills, J. W.; Lubin, M. Effect of adenosine 3′,5′-cyclic monophosphate on volume and cytoskeleton of MDCK cells. Am. J. Physiol. 250: C319-C324; 1986.
Mills, J. W.; Skiest, D. J. Role of cyclic AMP and the cytoskeleton in volume control in MDCK cells. Mol. Physiol. 8: 247–262; 1985.
Paillard, M.; Leviel, F.; Garden, J. P. Regulation of cell volume in separated renal tubules incubated in hypotonic medium. Am. J. Physiol. 236: F226-F231; 1979.
Schoenfield, R. G.; Lewellan, C. J. A colorimetric method for determination of serum chloride. Clin. Chem. 10: 533–539; 1964.
Taub, M.; Saier, M. H., Jr. Regulation of22Na+ transport by calcium in an established kidney epithelial cell line. J. Biol. Chem. 254: 11440–11444; 1979.
Wilkinson, L. SYSTAT, the system for statistics. Evanston, IL: SYSTAT, Inc.; 1987.
Wohlwend, A.; Vasalli, J. D.; Belin, D., et al. LLC-PK1 cells: cloning of phenotypically stable subpopulations. Am. J. Physiol. 250: C682-C687; 1986.