Văn hóa ba chiều của hạch giun và ốc cho nghiên cứu về phục hồi thần kinh

Invertebrate Neuroscience - Tập 5 - Trang 173-182 - 2005
E. J. Babington1, J. Vatanparast1,2, J. Verrall1, S. E. Blackshaw1
1Department of Human Anatomy & Genetics, University of Oxford, Oxford, UK
2Department of Physiology, Faculty of Medicine, Shaheed Beheshti University of Medical Science, Tehran, Iran

Tóm tắt

Mạng lưới collagen ba chiều (3D) cung cấp một ma trận ổn định trong đó các hạch tái sinh được tách ra từ giun và ốc có thể được duy trì để nghiên cứu các cơ chế phân tử và tế bào cơ sở cho quá trình tái sinh. Các hạch đoạn từ giun, hoặc các hạch thượng thực quản, hạ thực quản hoặc miệng từ ốc được duy trì trong tối đa 3 tuần trong các ma trận collagen loại I của động vật có vú. Ma trận collagen hỗ trợ sự phát triển tái sinh của các trục sợi trục cũng như sự di cư của các tế bào vi tuần hoàn, những yếu tố quan trọng trong quá trình sửa chữa. Các protein, yếu tố hòa tan hoặc mô mục tiêu có thể được thêm vào ma trận collagen cơ bản để điều chỉnh môi trường của mô đang tái sinh. Chúng tôi mô tả các kỹ thuật nhuộm miễn dịch cho các sợi trục tái sinh và các tế bào vi tuần hoàn trong ma trận gel kết hợp với nhuộm nhân tế bào và việc sử dụng đánh dấu nội bào để phân biệt các sợi trục của các tế bào thần kinh đã xác định trong quá trình phát triển tái sinh.

Từ khóa

#ma trận collagen ba chiều #hạch giun #hạch ốc #tái sinh #sửa chữa thần kinh #tế bào vi tuần hoàn #đánh dấu nội bào

Tài liệu tham khảo

Blackshaw SE, Arkison S, Cameron C , Davies JA (1997) Promotion of regeneration and axon growth following injury in an invertebrate nervous system by the use of three-dimensional collagen gels. Proc R Soc B 264: 657–661 Camardo J, Proshansky E , Schacher S (1983) Identified Aplysia neurons form specific chemical synapses in culture. J Neurosci 3:2614–2620 Chen A, Kumar SM, Sahley CL, Muller KJ (2000) nitric oxide influences injury-induced microglial migration and accumulation in the leech CNS. J Neurosci 20:1036–1043 Chiquet M, Puri EC, Turner DC (1979) Fibronectin mediates attachment of chicken myoblasts to a gelatin-coated substratum. J Biol Chem 254:5475–5482 Del Rio-Hortega P (1920) La microglia y su transformacion celulas en basoncito y cuerpos granulo-adiposos. Trab Lab Invest Biol Madrid 18:37–82 Ghirardi M, Casadio A, Santarelli L, Montarolo PO (1996) Aplysia hemolymph promotes neurite outgrowth and synaptogenesis of identified Helix neurons in cell culture. Invert Neurosci 2:41–49 Guthrie S, Lumsden A (1994) Collagen gel co-culture of neural tissue. Neuroprotocols 4:116–120 Kumar SM, Marshall Porterfield D, Muller KJ, Smith PJS, Sahley CL (2001) nerve injury induces a rapid efflux of nitric oxide (NO) detected with a novel no microsensor. J Neurosci 21:215–220 Masuda-Nakagawa LM, Nicholls JG (1991) Extracellular matrix molecules in development and regeneration of the leech CNS. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci 331:323–335 Masuda-Nakagawa LM, Muller KJ, Nicholls JG (1990) Accumulation of laminin and microglial cells at sites of injury and regeneration in the central nervous system of the leech. Proc Biol Sci 241:201–206 McCulloch F , Breckenridge L (1998) Effects of target tissue on growth of snail neurons in collagen gel culture. Neuroreport 9:2391–2397 McGlade-McCulloh E, Morrissey AM, Norona F, Muller KJ (1989) Individual microglia move rapidly and directly to nerve lesions in the leech central nervous system. Proc Natl Acad Sci USA 86:1093–1097 Moffett SB (1995) Neural regeneration in gastropod molluscs. Prog Neurobiol 46:289–330 Muller KJ , McMahan UJ (1976) The shapes of sensory and motor neurons and the distribution of their synapses in ganglia of the leech: a study using intracellular injection of horseradish peroxidase. Proc R Soc Lond B 194:481–499 Nicholls JG, Martin AR, Wallace BG, Fuchs PA (2001) From neuron to brain. Sinauer Associates Inc, Sunderland Sonetti D, Ottaviani E, Bianchi F, Rodriguez M, Stefano ML, Scharrer B, Stefano GB (1994) Microglia in invertebrate ganglia. Proc Natl Acad Sci USA 91:9180–9184 Von Bernhardi R, Muller KJ (1995) Repair of the central nervous system: lessons from lesions in leeches. J Neurobiol 27:353–366 Wang W-Z, Emes RD, Christoffers K, Verrall J, Blackshaw SE (2005) Hirudo medicinalis: a platform for investigating genes in neural repair. Cell Mol Neurobiol 25(2):427–440 Wong RG, Hadley RD, Kater SB, Hauser GC (1981) Neurite outgrowth in molluscan organ and cell cultures: the role of conditioning factor(s) J Neurosci 1:1008–1021