Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Phản ứng nhiệt động của hoạt động chuyển hóa của Staphylococcus lentus được nuôi cấy trong môi trường khoáng chất hạn chế glucose
Tóm tắt
Các thí nghiệm vi sinh nhiệt lượng đã được tiến hành để nghiên cứu phản ứng nhiệt chuyển hóa của loài chịu mặn Staphylococcus lentus trong môi trường khoáng chất hạn chế glucose. Các yếu tố sinh trưởng đã được tối ưu hóa trong cả thí nghiệm bình lắc và thí nghiệm nhiệt lượng. Giá trị giới hạn của 5 g/L glucose được tìm thấy là tối ưu cho sự phát triển của S. lentus. Các biểu đồ nhiệt luồng, tiêu thụ oxy theo thời gian (OUR), sự phát triển sinh khối, và các biểu đồ giảm thiểu chất nền đã được so sánh để suy luận hoạt động chuyển hóa của S. lentus. Sự thay đổi trong luồng nhiệt do sự thay đổi trong việc tiếp nhận chất nền và ba giai đoạn phát triển khác nhau là đáng chú ý trong các đường cong biểu đồ nhiệt. Biểu đồ hô hấp (OUR) và các biểu đồ nhiệt cho thấy đi theo đường cong phát triển sinh khối. Hệ số oxycalorific được xác thực với các nghiên cứu lý thuyết và những gì đã được ghi nhận trong tài liệu đã công bố.
Từ khóa
#Staphylococcus lentus #nhiệt lượng #chuyển hóa #glucose #sinh khối #môi trường khoáng chấtTài liệu tham khảo
Senthilkumar S, Surianarayanan M, Sushleela R. Biocalorimetric studies of the metabolic activity of Pseudomonas aeroginasa aerobically grown in glucose limited complex growth medium. Biosci Biotechnol Biochem. 2008;72:936–42.
Higuera-Guisset J, Rodriguez-Viejo J. Calorimetry of microbial growth using a thermopile based microreactor. Thermochimica Acta. 2005;427:187–91.
Ligthart J, Daverio E. Application of calorimetric measurements for biokinetic characterization of nitrifying population in activated sludge. Water Res. 2003;37:2723–31.
Vonstockar U, Duboc P, Menoud L, Marison IW. On-line calorimetry as a technique for process monitoring and control in biotechnology. Thermochimica Acta. 1997;300:225–36.
Liu JS, Marison IW, Von Stockar U. Microbial growth by a net heat up-take: a calorimetric and thermodynamic study on acetotrophic methanogenesis by Methanosarcina bakeri. Biotechnol Bioeng. 2001;75:170–80.
Miller GL. Use of dinitrosalicylic acid reagent for determination of reducing sugar. Anal Chem. 1959;31:426–8.
Singh V. On-line measurement of oxygen uptake in cell culture using the dynamic method. Biotechnol Bioeng. 1996;52:443–8.
Surianarayanan M, Balaji D, Senthilkumar S, Asit Baran M. Batch kinetics on growth of salt tolerant Pseudomonas aeroginasa secreting in a biocalorimeter. Biotechnol Bioprocess Eng. 2010;15:670–5.
Bailey J, Ollis F. Biochemical engineering fundamentals. New York: McGraw-Hill; 1986. p. 383–6.
Robinson JA, Tiedj JM. Nonlinear estimation of Monod growth kinetic parameters from a single substrate depletion curve. Appl Environ Microbial. 1983;45:1453–8.
Senthilkumar S, Surianarayanan M, Swaminathan G. Biocalorimetric and respirometric studies on biological treatment of tannery saline wastewater. Appl Microb Biotechnol. 2008;78:249–55.
Senthilkumar S, Surianaryanan M, Madhu B. Biocalorimetric and respirometric studies on metabolic activity of aerobically grown batch culture of Pseudomonas aeruginosa. Biotechnol Bioprocess Eng. 2007;12:340–7.
Birou B, Marison IW, Von stockar U. Calorimetric investigation of aerobic fermentations. Biotechnol Bioeng. 1987;30:650–60.
Surianarayanan M, Senthilkumar S. Bioenergetics studies on aerobic growth of Pseudomonas aeroginasa in a single substrate media. J Chem Technol Biotechnol. 2009;84:1234–9.
Von Stockar U, Marison IW. The use of calorimetry in biotechnology. Adv Biochem Eng Biotechnol. 1989;40:93–136.
Cooney CL, Wang D, Mateles RI. Biotechnol Bioeng. 1968;11:269.