Ảnh hưởng của chất lượng tinh trùng đến sự phát triển của phôi sau khi tiêm tinh trùng vào bào tương

Springer Science and Business Media LLC - Tập 23 - Trang 69-74 - 2006
Kalliopi E. Loutradi1, Basil C. Tarlatzis1,2, Dimitrios G. Goulis1, Leonidas Zepiridis2, Thoula Pagou2, Elisabeth Chatziioannou2, Grigoris F. Grimbizis1,2, Ioannis Papadimas1, Ioannis Bontis1,2
1Unit for Human Reproduction, 1st Department of Obstetrics & Gynecology, “Papageorgiou” General Hospital, Thessaloniki, Greece
2Infertility and IVF Centre, Geniki Kliniki, Thessaloniki, Greece

Tóm tắt

Mục tiêu: Khảo sát mối quan hệ có thể có giữa chất lượng tinh trùng và sự phát triển của phôi, tỷ lệ mang thai và tỷ lệ cấy ghép, ở bệnh nhân thực hiện tiêm tinh trùng vào bào tương (ICSI). Phương pháp: Tỷ lệ thụ tinh và phân chia, chất lượng phôi, sự phát triển phôi nang, tỷ lệ mang thai và tỷ lệ cấy ghép đã được phân tích ở 1020 phôi từ 219 cặp vợ chồng đang thực hiện chu kỳ điều trị ICSI đầu tiên. Các cặp vợ chồng được phân loại thành năm nhóm, theo các yếu tố của tinh dịch: Nhóm 1: bệnh nhân có các yếu tố tinh dịch bình thường, Nhóm 2: bệnh nhân bị oligo-astheno-teratozoospermia nhẹ, Nhóm 3: bệnh nhân bị oligo-astheno-teratozoospermia nặng, Nhóm 4: bệnh nhân bị azoospermia tắc nghẽn, Nhóm 5: bệnh nhân bị azoospermia không tắc nghẽn. Kết quả: Tỷ lệ thụ tinh và phân chia, chất lượng phôi cũng như tỷ lệ phát triển phôi nang bị giảm đáng kể khi chất lượng tinh dịch giảm. Tuy nhiên, không có sự khác biệt đáng kể nào được quan sát thấy trong tỷ lệ mang thai lâm sàng và tỷ lệ cấy ghép. Kết luận: Tổng quát, một mối quan hệ tiêu cực đã được quan sát giữa chất lượng tinh dịch và sự phát triển của phôi, ngay cả trước khi kích hoạt bộ gen phôi, gợi ý rằng tinh trùng có thể ảnh hưởng đến quá trình hình thành phôi từ giai đoạn rất sớm.

Từ khóa

#chất lượng tinh trùng #phát triển phôi #tiêm tinh trùng vào bào tương #tỷ lệ mang thai #tỷ lệ cấy ghép

Tài liệu tham khảo

Palermo G, Joris H, Devroy P, Van Steirteghem AC: Pregnancies after intracytoplasmic sperm injection of a single spermatozoon into an oocyte. Lancet 1992;340:17–18 Van Steirteghem AC, Nagy Z., Joris H, Liu J, Staessen C, Smitz J, Wisanto A, Devroey P: High fertilization and implantation rates after intracytoplasmic sperm injection. Hum Reprod 1993;8:1061–1066 Janny L, Menezo YJR: Evidence for a strong paternal effect on human preimplantation embryo development and blastocyst formation. Mol Reprod Dev 1994;38:36–42 Ron-El R, Nachum H, Herman A, Golan A, Caspi E, Soffer Y: Delayed fertilization and poor embryonic development associated with impaired semen quality. Fertil Steril 1991;55:338–344 Shoukir Y, Chardonnens D, Campana A, Sakkas D: Blastocyst development from supernumery embryos after intracytoplasmic sperm injection: a paternal influence? Hum Reprod 1998;13:1632–1637 Göker ENT, Sendag F, Levi R, Sendag H, Tavmergen E: Comparison of ICSI outcome of ejaculated sperm with normal, abnormal parameters and testicular sperm. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 2002;104:129–136 Vernaeve V, Toyrnaye H, Osmanagaolu K, Verhryen G, Van Steirteghem A, Devroey P: Intracytoplasmic sperm injection with testicular spermatozoa is less successful in men with nonobstrucive azoospermia than in men with obstructive azoospermia. Fertil Steril 2003;79:529–533 Nicopoulos JDM, Gilling-Smith C, Almeida PA, Ramsay JWA: The results of 154 ICSI cycles using surgically retrieved sperm from azoospermic men. Hum Reprod 2004;19:579–585 Balaban B, Urman B, Isiklar A, Alatas C, Mercan R, Aksoy S, Nuhoglu A: Blastocyst transfer following intracytoplasmic sperm injection of ejaculated, epididymal or testicular spermatozoa. Hum Reprod 2000;116:125–129 Oehninger S, Chaturvedy S, Toner J, Morshedi M, Mayer J, Lanzendorf S, Muasher S: Semen quality: is there a paternal effect in pregnancy outcome in in vitro fertilization/intracytoplasmic sperm injection?. Hum Reprod 1998;13:2161–2164 World Health Organization: WHO Laboratory Manual for the Examination of Human Semen and Sperm–Cervical Mucus Interaction, 4th edn. Cambridge University Press, United Kingdom, 2000 Tarlatzis BC, Pados G, Bontis J, Lagos S, Gribizis G, Spanos E, Mantalenakis S: ovarian stimulation with buserilin / HMG / HCG: prospective randomized study of short versus long protocol. Hum Reprod 1993;8:807–812 Braude P, Bolton V, Moore S: Human gene expression first occurs between the four- and eight-cell stage of preimplantation development. Nature 1988;332:459–461 Tesarik J, Mendoza C, Greco E: Paternal effects acting during the first cell cycle of human preimplantation development after ICSI. Hum Reprod 2002;17:184–189 Swann K, Larman MG, Saunders CM and Lai FA: The cytosolic sperm factor that triggers Ca++ oscillations and egg activation in mammals is a novel phospholipase C: PLCζ. Reproduction 2004;127:431–439 Sakkas D, Mariethoz E, Manicardi G, Bizzaro D, Bianchi PG, Bianchi U: Origin of DNA damage in ejaculated human spermatozoa. Rev Reprod 1999;4:31–37 Evenson DP, Larson KL, Jost LK: Sperm chromatin structure assay: Its clinical use for detecting sperm DNA fragmentation in male infertility and comparisons with other techniques. J Androl 2002;23:25–43 Tomlinson MJ, Moffatt O, Manicardi GC, Bizzaro D, Afnan M, Sakkas D: Interrelationships between seminal parameters and sperm nuclear DNA damage before and after density gradient centrifugation: implications for assisted conception. Hum Reprod 2001;16:2160–2165 Sun JG, Jurisicova A, Casper RF: Detection of deoxyribonucleic acid fragmentation in human sperm: correlation with fertilization in vitro. Biol Reprod 1997;56:602–607 Lopes S, Sun JG, Juriskova A, Meriano J, Casper RF: Sperm deoxyribonucleic acid fragmentation is increased in poor quality sperm samples and correlates with failed fertilization in intracytoplasmic sperm injection. Fertil Steril 1998;69:528–532 Benchaib M, Braun V, Lornage J, Hadj S, Salle B, Lejeune H, Guerin JF: Sperm DNA fragmentation decreases the pregnancy rate in assisted reproductive technique. Hum Reprod 2003;18:1023–1028 Seli E, Gardner DK, Schoolcraft WB, Moffatt O, Sakkas D: Extend of nuclear DNA damage in ejaculated spermatozoa impacts on blastocyst development after in vitro fertilization. Fertil Steril 2004;82:378–383 Virro MR, Larson-Cook KL, Evenson DP: Sperm chromatin structure assay (SCSA) parameters are related to fertilization, blastocyst development, and ongoing pregnancy in in vitro fertilization and intracytoplasmic sperm injection cycles. Fertil Steril 2004;81:1289–1295 Evenson DP, Darzynkiewicz Z, Melamed MR: Relation of mammalian sperm chromatin heterogeneity to fertility. Science 1980;210:1131–1133 Oger I, Da Cruz C, Panteix G, Menezo Y: Evaluating human sperm DNA integrity: relationship between 8-hydroxydeoxyguanosine quantification and the sperm chromatin structure assay. Zygote 2003;11:367–371 Bukulmez O, Yucel A, Yarali H, Bildirici I, Gurgan T: The origin of spermatozoa does not affect intracytoplasmic sperm injection outcome. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 2001;94:250–255 Ghazzawi IM, Sarraf MG, Taher MR, Khalifa FA: Comparison of the fertilizing capability of spermatozoa from ejaculates, epididymal aspirates and testicular biopsies using intracytoplasmic sperm injection. Hum Reprod 1998;13:348–352 Greco E, Scarselli F, Iacobelli M, Rienzi L, Ubaldi F, Ferrero S, Franco G, Anniballo N, Mendoza C, Tesarik J: Efficient treatment of infertility due to sperm DNA damage by ICSI with testicular spermatozoa. Hum Reprod 2005;20:226–230