Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Sự phát triển và cấu trúc siêu vi mô của tế bào corpus striatum phôi gà đã được phân tách và nuôi cấy trên lớp tế bào gan
Tóm tắt
Tế bào thần kinh corpus striatum phôi gà đã được phân tách và duy trì trên các lớp nuôi cấy từ tế bào gan. Mặc dù một số túi bao gồm hạt tối lớn hiện diện trong nhiều quá trình thần kinh và nút tiền synap, nhưng chúng ít hơn đáng kể so với tế bào thần kinh tủy sống gà được nuôi trong điều kiện tương tự. Sự phát quang do paraformaldehyde gây ra, mặc dù được quan sát thấy trong một vài mẻ nuôi cấy ở các tập hợp tế bào thần kinh corpus striatum, nhưng nhìn chung vắng mặt và không có chứng cứ quyết định nào cho thấy rằng tế bào thần kinh corpus striatum phát quang thường được phát triển trên lớp nuôi cấy từ tế bào gan. Microtubules lấp đầy hầu hết các thân tế bào và quá trình thần kinh, và mở rộng tốt vào các nút synap thường gần gũi với các khu vực hoạt động. Chúng phong phú hơn nhiều trong các nuôi cấy corpus striatum so với các chế phẩm tủy sống tương ứng và hình thành bào quan chính của nhiều sợi thần kinh. Những sự khác biệt này giữa tế bào thần kinh tủy sống gà và corpus striatum là cả thú vị và khó giải thích. Có thể rằng số lượng tế bào cholinergic thích hợp có sẵn để chuyển đổi thành tế bào adrenergic trong corpus striatum là ít hơn, và rằng số lượng lớn các túi bao gồm hạt tối chỉ đơn giản cho thấy một tỷ lệ sản xuất và lưu trữ acetylcholine tăng lên đáng kể.
Từ khóa
#tế bào thần kinh #corpus striatum #phôi gà #tế bào gan #nuôi cấy #microtubule #acetylcholineTài liệu tham khảo
Benitez HH, Masurovsky EB, Murray MR (1974) Interneurons of the sympathetic ganglia in organotypic culture. A suggestion as to their function based on 3 types of study. J Neurocytol 3:363–384
Bird MM (1976) Microtubule-synaptic vesicle associations in cultured rat spinal cord neurons. Cell Tissue Res 165:101–115
Bird MM, James DW (1974) An ultrastructural and electrophysiological study of the development of neuro-muscular junctions between previously dissociated foetal rat cells in vitro. Cell Tissue Res 155:269–282
Bird MM, James DW (1975) The culture of previously dissociated embryonic chick spinal cord cells on feeder layers of liver and kidney and the development of paraformaldehyde induced fluorescence upon the former. J Neurocytol 4:633–646
Ceccarelli B, Clementi F, Mantegazza P (1971) Synaptic transmission in the superior cervical ganglion of the cat after reinnervation by vagus fibres. J Physiol 216:87–98
Crain SM, Peterson ER (1974) Development of neural connections in culture. Ann NY Acad Sci 228:6–34
Dale HH, Feldberg W (1934) The chemical transmission of secretory impulses to the sweat gland of the cat. J Physiol 82:121–128
Eränkö L (1972) Ultrastructure of the developing sympathetic nerve cell and the storage of catecholamines. Brain Res 46:159–175
Furshpan EJ, MacLeish PR, O'Lague PH, Potter DD (1976) Chemical transmission between rat sympathetic neurons and cardiac myocytes developing in microcultures; evidence for cholinergic, adrenergic and dual function neurons. Proc Natl Acad Sci USA 73:4225–4229
Gray EG (1975) Presynaptic microtubules and their associations with synaptic vesicles. Proc Roy Soc B 190:369–372
Johnson FR, Armstrong-James M (1970) Morphology of superficial post natal cerebral cortex with special reference to synapses. Z Zellforsch 110:540–558
Johnson M, Ross D, Meyers M, Rees R, Bunge R, Wakshull E, Barton H (1978) Synaptic vesicle cytochemistry changes when cultured sympathetic neurons develop cholinergic interactions. Nature (Lon) 262:308–310
Konig N, Roch G, Marty R (1978) The onset of synaptogenesis in the rat temporal cortex. Anat Embryol 148:73–87
O'Lague PH, Potter DD, Furshpan EJ (1978) Studies on rat sympathetic neurons developing in cell culture. III Cholinergic transmission. Develop Biol 67:424–443
Panula P, Reichardt L (1979) Ultrastructural demonstration of adenylate cyclase activity in the rat neostriatum. Neuroscience 4:779–788
Pappas GD, Peterson ER, Masurovsky EB, Crain SN (1971) Electron microscopy of the in vitro development of mammalian end plates. Annals NY Acad Sci 183:33–45
Patterson PM, Chun LLY (1974) The influence of non-neuronal cells on catecholamine and acetylcholyne synthesis and accumulation in cultures of dissociated sympathetic neurons. Proc Natl Acad Sci USA 71:3607–3610
Purves D, Lichtman JW (1978) Formation and maintenance of synaptic connections in autonomic ganglia. Physiol Rev 58:821–862
Purves RD, Hill CE, Chamley JH, Mack GE, Fry MD, Burnstock G (1974) Functional autonomic neuromuscular junctions in tissue culture. Pflügers Arch 380:1–7
Ross D, Johnson M, Bunge R (1977) Development of cholinergic characteristics in adrenergic neurons is age dependent. Nature (Lon) 267:536–539
Sjöquist F (1963) The correlation between occurence and localization of acetylcholinesterase-rich cell bodies in the stellate ganglion and the outflow of cholinergic sweat secretory fibres in the fore-paw of the cat. Acta Physiol Scand 57:339–351
Yamauchi A, Lever JD, Kemp KW (1973) Catecholamine loading and depletion in the rat superior cervical ganglion. J Anat 114:271–282