Nhiễm Trùng Vùng Mổ Do Mycobacterium Không Lao Tăng Trưởng Nhanh: Một Thực Thể Thường Bị Bỏ Qua Và Chẩn Đoán Sai

Indian Journal of Surgery - Tập 83 - Trang 418-423 - 2020
Ashwini Choudhary1, R. Gopalakrishnan1, P. Senthur Nambi1, M. A. Thirunarayan2, V. Ramasubramanian1, Sowmya Sridharan1
1Department of Infectious Diseases, Apollo Hospitals, Chennai, India
2Department of Infectious Diseases and Microbiology, Apollo Hospitals, Chennai, India

Tóm tắt

Các loại mycobacteria không lao (NTM) phát triển nhanh như M. fortuitum và M. chelonae rất phổ biến; đã được cách ly từ nước tự nhiên, nước máy và nước dùng trong các bồn tắm tại bệnh viện; và có thể gây ra nhiễm trùng vùng mổ. Một nghiên cứu hồi cứu được thực hiện tại một bệnh viện giới thiệu chăm sóc tài chính ba. Những bệnh nhân có nhiễm trùng vết mổ (SSI) mà mẫu cấy vết thương phát hiện NTM phát triển nhanh hoặc kết quả kiểm tra mô bệnh lý cho thấy viêm hạt đã được đưa vào nghiên cứu. Tổng cộng có 50 bệnh nhân được phân tích. Ba mươi mốt bệnh nhân đã thực hiện phẫu thuật nội soi, và mười chín bệnh nhân đã thực hiện phẫu thuật mở. Thời gian trung bình xuất hiện sau phẫu thuật là 40 ngày (dao động từ 7 đến 90 ngày). Các đặc điểm lâm sàng bao gồm lành vết thương chậm, tiết dịch mãn tính ở vùng mổ, sưng nốt, và hình thành rãnh xoang. Mô bệnh lý cho thấy viêm hạt ở 40 bệnh nhân với 2 bệnh nhân có nhuộm que lao dương tính. Cấy vi khuẩn cho kết quả dương tính ở 16 bệnh nhân: 12 bệnh nhân phát hiện M. fortuitum, 2 bệnh nhân phát hiện M. abscessus, và 2 bệnh nhân có vi khuẩn tăng trưởng nhanh mà không thể xác định loại rõ ràng. Sáu trong số mười sáu trường hợp cấy dương tính cũng có mô bệnh lý cho thấy viêm hạt. Tất cả các mẫu cấy đều nhạy cảm với clarithromycin, amikacin, levofloxacin, imipenem, và tigecycline. Bốn mươi hai bệnh nhân đã được giải phẫu làm sạch bên cạnh điều trị y tế. Tám bệnh nhân chỉ được điều trị y tế đơn thuần vì họ có tổn thương nốt nhỏ hoặc tiết dịch tối thiểu. Điều trị y tế bao gồm clarithromycin và levofloxacin hoặc moxifloxacin trong 4–6 tháng, cùng với amikacin trong 2 tháng đầu. Trong số 50 bệnh nhân, bốn mươi hai bệnh nhân hồi phục hoàn toàn, 7 bệnh nhân theo dõi và tình trạng lâm sàng tốt, và một bệnh nhân mất dấu theo dõi. Nhiễm trùng NTM phát triển nhanh nên bị nghi ngờ ở những bệnh nhân có SSI khởi phát muộn hoặc xoang tiết dịch mãn tính, đặc biệt là sau phẫu thuật nội soi. Chẩn đoán có thể được xác nhận bằng cách cấy mycobacteria và kiểm tra mô bệnh lý. Phản ứng thường tốt với phẫu thuật làm sạch, tiếp theo là sự kết hợp của clarithromycin, quinolone và amikacin trong 4–6 tháng.

Từ khóa

#nhiễm trùng vùng mổ #mycobacteria không lao #viêm hạt #cấy vi khuẩn #điều trị y tế #phẫu thuật nội soi

Tài liệu tham khảo

Von Reyn CF, Waddell RD, Eaton T et al (1993) Isolation of Mycobacterium avium complex from water in the United States, Finland, Zaire, and Kenya. J Clin Microbiol 31:3227–3230 Gayathri Devi DR, Sridharan D, Indumathi VA, Babu PRS, Sandhya Belwadi MR, Swamy ACV (2004) Isolation of Mycobacterium Chelonae from wound infection following laparoscopy: a case report. Indian J Tuberc 51:149–151 John T, Velotta E (2005) Nontuberculous (atypical) mycobacterial keratitis after LASIK: current status and clinical implications. Cornea. 24(3):245–255 Rimmer J, Hamilton S, Gault D (2004) Recurrent mycobacterial breast abscesses complicating reconstruction. Br J Plast Surg 57(7):676–678 Griffith DE, Aksamit T, Brown-Elliott BA, Catanzaro A, Daley C, Gordin F et al (2007) An official ATS/IDSA statement: diagnosis, treatment, and prevention of nontuberculous mycobacterial diseases. ATS Mycobacterial Diseases Subcommittee, American Thoracic Society, Infectious Disease Society of America. Am J Respir Crit Care Med 175(4):367 Brown-Elliott BA, Wallace RJ (2002) Clinical and taxonomic status of pathogenic nonpigmented or late-pigmenting rapidly growing mycobacteria. JrClin Microbiol Rev 15(4):716–746 Hoffman PC, Fraser DW, Robicsek F, O’Bar PR, Mauney CU (1981) Two outbreaks of sternal wound infection due to organisms of the M fortuitum complex. J Infect Dis 143:533–542 Devi DR, Indumathi VA, Indira S, Babu PR, Shridharan D, Belwadi MR (2003) Injection site abscess due to Mycobacterium fortuitum: a case report. Indian J Med Microbial 21:133–134 Drage LA, Ecker PM, Orenstein R, Phillips PK, Edson RS (2010) An outbreak of Mycobacterium chelonae infections in tattoos. J Am Acad Dermatol 62(3):501–506 Lahiri KK, Jena J, Pannicker KK (2009) Mycobacterium fortuitum infections in surgical wounds. Med J Armed Forces India 65:91–92 Kalita JB, Rahman H, Baruah KC (2005) Delayed post-operative wound infections due to non-tuberculous Mycobacterium. Indian J Med Res:535–539 Muthuswami JC, Vyas FL, Mukundan U, Jesudasan MV, Govil S, Jesudasan. Mycobacterium fortuitum: an iatrogenic cause of soft tissue infection in surgery. ANZ J Surg 2004; 74–76 Sethi S, Sharma M, Ray P, Singh M, Gupta A (2001) Mycobacterium fortuitum wound infections following laparoscopy. Indian J Med Res 113:83–84 Silcox VA, Good RC, Floyd MM (1981) Identification of clinically significant Mycobacterium fortuitum complex isolates. J Clin Microbiol 14(6):686–691 Swenson JM, Wallace RJ Jr, Silcox VA, Thornsberry C (1985) Antimicrobial susceptibility of five subgroups of Mycobacterium fortuitum and Mycobacterium chelonae. Antimicrob Agents Chemother 28(6):807–811 Stone MS, Wallace RJ Jr, Swenson JM, Thornsberry C, Christensen LA (1983) Agar disk elution method for susceptibility testing of Mycobacterium marinum and Mycobacterium fortuitum complex to sulfonamides and antibiotics. Antimicrob Agents Chemother 24(4):486–493 Phillips MS, von Reyn CF (2001) Nosocomial infections due to nontuberculous mycobacteria. Clin Infect Dis 33(8):1363–1374 Britton WJ, Roche PW, Winter N (1994) Mechanisms of persistence of mycobacteria. Trends Microbiol 2:284–288 Rastogi N, David HL (1988) Mechanisms of pathogenicity in mycobacteria. Biochimie 70:1101–1120 Hall-Stoodley L, Lappin-Scott H (1998) Biofilm formation by the rapidly growing mycobacterial species Mycobacterium fortuitum. FEMS Microbiol Lett 168:77–84 Rubin J (1991) Mycobacterial disinfection and control. In: Block SS (ed) Disinfection, sterilization, and preservation, 4th edn. Lea and Febiger, Philadelphia, pp 377–378 Pelletier PA, du Moulin GC, Stottmeier KD (1988) Mycobacteria in public water supplies: comparative resistance to chlorine. Microbiol Sci 5:147–148 Kamalanathan M, Hippolyte S, You S, Kuan D et al (2018) P224 Treatment and outcomes of skin and soft tissue NTM infections: an increasingly common and sometimes complex problem. Thorax 73:A222–A223 William A. Rutala, David J. (2008) Weber and the Healthcare Infection Control Practices Advisory Committee (HICPAC). Guideline for disinfection and sterilization in healthcare facilities.