Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Kích thích sự phát triển và sản xuất solamargine bởi các văn hóa chồi đa dạng của Solanum paludosum sử dụng một môi trường văn hóa mới
Tóm tắt
Các văn hóa callus hữu cơ của Solanum paludosum đã được thu nhận từ các mẫu gốc, mầm và lá mầm của các cây con được nuôi cấy trong điều kiện vô trùng. Các văn hóa callus này phát triển nhiều chồi, sự phát triển này diễn ra trong môi trường lỏng cơ bản Murashige và Skoog. Các chồi đa dạng này sản xuất solamargine, glycoalkaloid steroid chính có trong quả chưa chín. Việc tối ưu hóa thành phần đại lượng dinh dưỡng của môi trường lỏng được thực hiện bằng phương pháp derived từ thành phần thực vật. Cách tiếp cận này dẫn đến việc thiết lập một môi trường thích hợp (môi trường SPOM) phù hợp cho việc cải tiến cả sự phát triển và sản xuất solamargine bởi các văn hóa chồi đa dạng của S. paludosum.
Từ khóa
#Solanum paludosum #callus cultures #solamargine #glycoalkaloids #Murashige and Skoog #plant tissue cultureTài liệu tham khảo
Bhattacharyya J (1984) Isolation of solasodine from fruits of Solanum asperum and Solanum paludosum. J. Nat. Prod. 47: 1059
Carew DP & Krueger RJ (1977) Catharanthus roseus tissue culture: the effects of medium modifications on growth and alkaloid production. Lloydia 40: 326–336
Cham BE & Wilson L (1987) HPLC of Glycoalkaloids from Solanum sodomeum. Planta Med. 59–62
De Eknamkul W & Ellis BE (1985) Effects of macronutrients on growth and rosmarinic acid formation in cell suspension cultures of Anchusa officinalis. Plant Cell Rep. 4: 46–49
Drapeau D, Blanch HW & Wilke CR (1986) Growth kinetics of Dioscorea deltoidea and Catharanthus roseus in batch culture. Biotechnol. Bioeng. 28: 1555–1563
Gamborg LO, Miller RA & Ojima K (1968) Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells. Exp. Cell Res. 50: 151–158
El Badaoui H (1993) Comparison between different techniques of in vitro cultures of Solanum paludosum Moric. for the production of solamargin, the main alkaloid. Thesis of the University (INP) of Toulouse
Fujita Y, Hara Y, Ogino T & Suga C (1981a) Production of shikonin derivatives by cell suspension cultures of Lithospermum erythrorhizon. I. Effects of nitrogen sources on the production of shikonin derivatives. Plant Cell Rep. 1: 59–60
Fujita Y, Hara Y, Suga C & Morimoto T (1981b) Production of shikonin derivatives by cell suspension cultures of Lithospermum erythrorhizon. II. A new medium for the production of shikonin derivatives. Plant Cell Rep. 1: 61–63
Heller R (1969) Biologie végétale. Tome II: Nutrition et Métabolisme. Série des précis de Sciences biologiques, sous la direction de PP Grassé, Masson et Cie éd., 400–401
Henry M & Guignard JL (1982) Production d'acide quillayique chez une suspension cellulaire de Saponaria officinalis. Physiol. Vég. 20: 201–209
Khouri HE, Ibrahim RK & Rideau M (1986) Effects of nutritional and hormonal factors on growth and production of anthraquinone glucosides in cell suspension cultures of Cinchona succirubra. Plant Cell Rep. 5: 423–426
McCarthy JJ, Ratcliffe D & Street HE (1980) The effect of nutrient medium composition on the growth cycle of Catharanthus roseus G. Don cells grown in batch culture. J. Exp. Bot. 31: 1315–1325
Martin SM, Rose D & Hui V (1977) Growth of plant cell (Ipomea) suspension cultures with ammonium as the sole source of nitrogen. Can. J. Bot. 55: 2838–2843
Matsumoto T, Okunishi K, Nishida K, Noguchi M & Tamaki E (1971) Studies on the culture conditions of higher plant cells in suspension culture. Part II. Agr. Biol. Chem. 35: 543–551
Merillon JM, Chenieux JC & Rideau M (1983) Cinetique de croissance, évolution du métabolisme glucido-azoté et accumulation alcaloidique dans une suspension cellulaire de Catharanthus roseus. Planta Med. 47: 169–176
Morard P, Bernadac A & Valles V (1990) Selectivity of the root absorption of nutrient ions in grain sorghum J. Plant Nutr. 13: 249–268
Morard P (1995) Les cultures végétales hors sol, S.A.R.L. Publications Agricoles, Agen, 308p.
Murashige T & Skoog F (1962) A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15: 473–497
Nigra HM, Caso OH & Giulietti AM (1987) Production of solasodine by calli from different parts of Solanum eleagnifolium Cav. plants. Plant Cell Rep. 6: 135–137
Pauthe-Dayde D, Rochd M & Henry M (1989) Triterpenoid saponin production in callus and multiple shoot cultures of Gypsophila spp. Phytochem. 29: 483–487
Valverde M, Lavaud C, Boustie J, El Badaoui H, Muguet B & Henry M (1993) Solamargine: the main glycoalkaloid from fruits of Solanum paludosum. Planta Med. 59: 483–484
Vasseur J & Dubois J (1985) Influence de l'alimentation minérale sur la prolifération de petits explantats racinaires de Cichorium intybus L. (var. Witloof) cultivés in vitro. C.R.Acad. Sc. Paris, 300, Série III, 717–720