Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Xác định độ ổn định của dẫn xuất cyclized 2,4-dinitrophenyl hydrazone của glucose
Tóm tắt
Chiến thuật được thiết lập tốt nhất để phân tích monosaccharide, chẳng hạn như glucose, dựa trên các quy trình chuyển hóa, sử dụng các tác nhân như 2,4-dinitrophenylhydrazine (DNPH). Thông thường, sự không ổn định của sản phẩm imine được hình thành làm suy giảm khả năng phát hiện lượng đường trong mẫu nhỏ; gây khó khăn cực kỳ cho phân tích quang phổ của monosaccharide. Trong nghiên cứu này, chúng tôi đề xuất một quy trình chuyển hóa đã được điều chỉnh, dựa trên sự hình thành dẫn xuất DNPH-glucose ổn định, nhằm hỗ trợ trong việc phân tích quang phổ của glucose. Quy trình chuyển hóa đã được tùy chỉnh để thực hiện bước xử lý sản phẩm trong điều kiện axit. Môi trường giàu proton dẫn đến việc giảm trực tiếp base Schiff với sự sắp xếp lại nội phân tử đồng thời của sản phẩm để tạo ra dẫn xuất DNPH-glucose cyclized ổn định. Cấu trúc đồng nhất của hợp chất được đề cập đã được xác minh bằng 1NMR, 13C-NMR, HMBC và tinh thể tia X. Dẫn xuất cho thấy độ ổn định mở rộng trong các mẫu huyết tương bị nhiễm, điều này cho thấy tiềm năng áp dụng quy trình được mô tả để phân tích và phát hiện glucose trong các mẫu sinh học.
Từ khóa
#glucose #2 #4-dinitrophenylhydrazine #dẫn xuất cyclized #phân tích quang phổ #độ ổn địnhTài liệu tham khảo
Baños C-E, Silva M. In situ continuous derivatization/pre-concentration of carbonyl compounds with 2, 4-dinitrophenylhydrazine in aqueous samples by solid-phase extraction: application to liquid chromatography determination of aldehydes. Talanta. 2009;77(5):1597–602.
Barman BN. Accurate determination of aldehydes in amine catalysts or amines by 2, 4-dinitrophenylhydrazine derivatization. J Chromatogr A. 2014;1327:19–26.
Castellari M, Versari A, Spinabelli U, Galassi S, Amati A. An improved HPLC method for the analysis of organic acids, carbohydrates, and alcohols in grape musts and wines. J Liq Chromatogr Relat Technol. 2000;23(13):2047–56.
Chen F-T A, Evangelista RA. Analysis of mono-and oligosaccharide isomers derivatized with 9-aminopyrene-1, 4, 6-trisulfonate by capillary electrophoresis with laser-induced fluorescence. Anal Biochem. 1995;230(2):273–80.
Cheng HL, Her GR. Determination of linkages of linear and branched oligosaccharides using closed-ring chromophore labeling and negative ion trap mass spectrometry. J Am Soc Mass Spectrom. 2002;13(11):1322–30.
Clarke WL, Cox D, Gonder-Frederick LA, Carter W, Pohl SL. Evaluating clinical accuracy of systems for self-monitoring of blood glucose. Diabetes Care. 1987;10(5):622–8.
Clarke WL, Anderson S, Farhy L, Breton M, Gonder-Frederick L, Cox D, Kovatchev B. Evaluating the clinical accuracy of two continuous glucose sensors using Continuous glucose-error grid analysis. Diabetes Care. 2005;28(10):2412–7.
Dolomanov OV, Bourhis LJ, Gildea RJ, Howard JAK, Puschmann H. OLEX2: a complete structure solution, refinement and analysis program. J Appl Cryst. 2009;42(2):339–41.
Dürr C, Hoffmeister D, Wohlert S-E, Ichinose K, Weber M, von Mulert U, Thorson JS, Bechthold A. The glycosyltransferase UrdGT2 catalyzes both C-and O-glycosidic sugar transfers. Angew Chem Int Ed. 2004;43(22):2962–5.
Evangelista RA, Liu M-S, Chen F-T A. Characterization of 9-aminopyrene-1, 4, 6-trisulfonate derivatized sugars by capillary electrophoresis with laser-induced fluorescence detection. Anal Chem. 1995;67(13):2239–45.
Gerees A, Somogyi L, Konya A, Bukovecz M. Conversion of some aldose 2,4-dinitrophenylhydrazones. Acta Chim Acad Sci Hung. 1962;30:95–103.
Glaser E, Zuckermann N. Hydrazine compounds of α-glucoheptose. Z Physiol Chem. 1927;167:37–69.
Guan X, Rubin E, Anni H. An optimized method for the measurement of acetaldehyde by high-performance liquid Chromatography. Alcohol Clin Exp Res. 2012;36(3):398–405.
Harvey DJ. Derivatization of carbohydrates for analysis by chromatography; electrophoresis and mass spectrometry. J Chromatogr B. 2011;879(17):1196–225.
Heinemann L. Quality of glucose measurement with blood glucose meters at the point-of-care: relevance of interfering factors. Diabetes Technology and Therapeutics. 2010;12(11):847–57.
Heller A, Feldman B. Electrochemical glucose sensors and their applications in diabetes management. Chem Rev. 2008;108(7):2482–505.
Herbreteau B. Review and state of sugar analysis by high performance liquid chromatography. Analusis. 1992;20(7):355–74.
Ko JH, Huang H, Kang GW, Cheong WJ. Simultaneous quantitative determination of monosaccharides including fructose in hydrolysates of yogurt and orange juice products by derivatization of monosaccharides with p-aminobenzoic acid ethyl ester followed by HPLC. Bulletin-Korean Chemical Society. 2005;26(10):1533.
Masuko T, Minami A, Iwasaki N, Majima T, Nishimura S-I, Lee YC. Carbohydrate analysis by a phenol-sulfuric acid method in microplate format. Anal Biochem. 2005;339(1):69–72.
Medeiros PM, Simoneit BRT. Analysis of sugars in environmental samples by gas chromatography-mass spectrometry. J Chromatogr A. 2007;1141(2):271–8.
Medlicott AP, Thompson AK. Analysis of sugars and organic acids in ripening mango fruits (Mangifera indica L. var Keitt) by high performance liquid chromatography. J Sci Food Agric. 1985;36(7):561–6.
Mopper K, Johnson L. Reversed-phase liquid chromatographic analysis of dns-sugars: Optimization of derivatization and chromatographic procedures and applications to natural samples. J Chromatogr A. 1983;256:27–38.
Nowell H, Barnett SA, Christensen KE, Teat SJ, Allan DR. I19, the small-molecule single-crystal diffraction beamline at Diamond Light Source. J Synchrotron Radiat. 2012;19(3):435–41.
Okano V, Bastos MP, Do Amaral L. Kinetics and mechanism for pyridine N-oxide carboxaldehyde phenylhydrazone formation. J Am Chem Soc. 1980;102(12):4155–9.
Rogatsky E, Jayatillake H, Goswami G, Tomuta V, Stein D. Sensitive LC MS quantitative analysis of carbohydrates by Cs< sup >+</sup> Attachment. J Am Soc Mass Spectrom. 2005;16(11):1805–11.
Sanders EB, Schubert J. Spectrophotometric analysis of carbonyl compounds in the presence of carbohydrates without prior separation. Anal Chem. 1971;43(1):59–62.
Schleis TG. Interference of maltose, icodextrin, galactose, or xylose with some blood glucose monitoring systems. Pharmacotherapy: The Journal of Human Pharmacology and Drug Therapy. 2007;27(9):1313–21.
Siegel D, Rasenko T, Koch M, Nehls I. Determination of the <i> Alternaria </i> mycotoxin tenuazonic acid in cereals by high-performance liquid chromatography-electrospray ionization ion-trap multistage mass spectrometry after derivatization with 2, 4-dinitrophenylhydrazine. J Chromatogr A. 2009;1216(21):4582–8.
Soman A, Qiu Y, Li QC. HPLC-UV method development and validation for the determination of low level formaldehyde in a drug substance. J Chromatogr Sci. 2008;46(6):461–5.
Strydom DJ. Chromatographic separation of 1-phenyl-3-methyl-5-pyrazolone-derivatized neutral, acidic and basic aldoses. J Chromatogr A. 1994;678(1):17–23.
Uchiyama S, Inaba Y, Kunugita N. Derivatization of carbonyl compounds with 2, 4-dinitrophenylhydrazine and their subsequent determination by high-performance liquid chromatography. J Chromatogr B. 2011;879(17):1282–9.
Xu J-J, Zhu Z, Shi S-M, Zhou J, Jin C-M. Syntheses and crystal structures of two cadmium coordination polymers [Cd (2-mBIM)(NCS)(SCN)] n and [Cd2 (2-mBIM) 2 (NO3) 2 (C4H4O4)(H2O) 5] n based on bis (2-methylimidazol-1-yl) methane. J Coord Chem. 2010;63(13):2296–306.