Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Đầu măng của lúa mì như một nguồn thay thế cho các văn hóa callus phôi có khả năng tái sinh
Tóm tắt
Đầu măng của Triticum aestivum L. các giống Turbo và Nandu, cả hai đều là giống lúa mì mùa hè, đã được cắt từ cây con 4 và 10 ngày tuổi, và được sử dụng để tạo callus phôi. Một môi trường L3 được điều chỉnh, bổ sung 10 μM axit 2,4-dichlorophenoxyacetic (2,4-d) để khởi tạo văn hóa, và 5 μM 2,4-d để nhân giống, là tối ưu; 90% cây con ‘Turbo’ 4 ngày tuổi đã hình thành callus phôi. Tái sinh cây trồng tối ưu đạt được từ callus ủ trên môi trường MS cải tiến không có 2,4-d, nhưng bổ sung 2,22 μM 6-benzylaminopurine và 0,27 μM axit naphthaleneacetic. Các cây con được hình thành thông qua phôi từ tất cả các callus phôi ‘Turbo’ được khởi tạo từ các mẫu cắt 4 ngày tuổi, với số lượng trung bình 8 cây tái sinh cho mỗi mẫu cắt. Sự tái sinh chỉ diễn ra thông qua phôi. Kết quả thu được từ ‘Nandu’ nằm trong cùng một phạm vi.
Từ khóa
#Triticum aestivum #phôi #callus #tái sinh #axit 2 #4-dichlorophenoxyaceticTài liệu tham khảo
Barcelo P, Lazzeri PA, Martin A & Lörz H (1991) Competence of cereal leaf cells. I. Patterns of proliferation and regeneration capability in vitro of the inflorescence sheath leaves of barley, wheat and tritordeum. Plant Sci. 77: 243–251
Barcelo P, Lazzeri PA, Hernandez P, Martin A & Lörz H (1993) Morphogenic cell and protoplast cultures of tritordeum. Plant Sci. 88: 209–218
Chowdhury SH, Kato K, Yamamoto Y & Hayashi K (1991) Varietal variation in plant regeneration capacity from immature embryos among common wheat cultivars. Japan. J. Breed. 41: 443–450
Felföldi K & Purnhauser L (1992) Induction of regenerating callus cultures from immature embryos of 44 wheat and 3 triticale cultivars. Cereal Res. Com. 20: 273–277
Gamborg OL, Miller K & Ojima K (1968) Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells. Expt. Cell. Res. 50: 151–158
Jähne A, Lazzeri PA, Jäger-Gussen M & Lörz H (1991) Plant regeneration from embryogenic cell suspensions derived from anther cultures of barley (Hordeum vulgare). Theor. Appl. Genet. 82: 74–80
Kato K, Chowdhury SH & Harada S (1991) Effect of culture condition on plant regeneration capacity of mature embryo derived callus in wheat (Triticum aestivum L.). Wheat Information Service 72: 95–97
Mohmand AS & Nabors MW (1991) Comparison of two methods for callus culture and plant regeneration in wheat (Triticum aestivum L.). Plant Cell Tiss. Org. Cult. 26: 185–187
Mathias RJ (1990) Factors affecting the establishment of callus cultures in wheat. In: Bajaj YPS (Ed) Biotechnology in Agriculture and Forestry, Vol 13 (pp 25–45). Springer-Verlag, Berlin Heidelberg
Murashige T & Skoog F (1962) A revised method for rapid growth and bioassay with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15: 473–497
Rajyalakshmi K, Grover A, Maheshwari N, Tyagi AK & Maheshwari SC (1991) High frequency regeneration of plantlets from the leaf bases via somatic embryogenesis and comparison of polypeptide profiles from morphogenic and non-morphogenic calli in wheat (Triticum aestivum) Physiol. Plant. 82: 617–623
Scott KJ, He DG & Yang YM (1990) Somatic embryogenesis in wheat. In: Bajaj YPS (Ed) Biotechnology in Agriculture and Forestry, Vol 13 (pp 46–67). Springer-Verlag, Berlin Heidelberg
Vasil V, Castillo AM, Fromm ME & Vasil IK (1992) Herbicide restistant fertile transgenic wheat plants obtained by microprojectile bombardement of regenerable embryogenic callus. Bio/Technology 10: 667–674
Vasil V, Sriivastava V, Castillo AM, Fromm ME & Vasil IK (1993) Rapid production of transgenic wheat plants by direct bombardment of cultured immature embryos. Bio/Technology 11: 1553–1558
Wagner G & Hess D (1973) In vitro-Befruchtungen bei Petunia hybrid. Z. Pflanzenphysiol. 69: 262–269
Weeks JT, Anderson OD & Blechl A (1993) Rapid production of multiple independent lines of fertile transgenic wheat (Triticum aestivum). Plant Physiol. 102: 1077–1084
Wernicke W & Milkovits L (1984) Developmental gradients in wheat leaves-response of leaf segments in different genotypes cultured in vitro. J. Plant Physiol. 115: 49–58
Wernicke W & Milkovits L (1986) The regeneration potential of wheat shoot meristems in the presence and absence of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid. Protoplasma 131: 131–141
Zhuang J, Xu J & Chen G (1984) Studies on the induction of plant differentiation in pollen callus of wheat. Acta Genet. Sin. 11: 374–381