Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Inhibitor tái hấp thu serotonin chọn lọc thúc đẩy quá trình lành vết thương tại giao diện xương-gân trong mô hình rách gân chóp xoay ở chuột
Tóm tắt
Chất ức chế tái hấp thu serotonin chọn lọc (SSRI) được cho là có khả năng tăng cường quá trình hồi phục vết thương, và do đó được mong đợi có ảnh hưởng tích cực đến việc sửa chữa gân chóp xoay. Chúng tôi giả thuyết rằng SSRI có tác động tích cực đến quá trình lành vết thương tại giao diện xương-gân (BTI), và sự hồi phục rách gân chóp xoay sẽ được xác nhận bằng các phép đo độ bền cơ học và đánh giá mô học của gân đã được phục hồi. Nghiên cứu này sử dụng 40 con chuột đực Sprague-Dawley hoang dã. Các động vật được chia thành hai nhóm: nhóm-SSRI, nhóm sửa chữa gân supraspinatus với tiêm SSRI, và nhóm-C, chỉ sửa chữa gân supraspinatus thông thường mà không có SSRI. Các phân tích sinh học cơ học và mô học được thực hiện 8 tuần sau phẫu thuật gân chóp xoay. Lực tối đa (N) ở nhóm-SSRI cao hơn đáng kể so với nhóm-C (54.8 ± 56.9 Vs 25.1 ± 11.1, p = .031). Trong đánh giá mô học, điểm Bonar xác nhận sự khác biệt đáng kể về mật độ sợi collagen (nhóm-C: 0.6 ± 0.5, nhóm-SSRI: 1.1 ± 0.6, p = .024), sự hình thành mạch (nhóm-C: 0.1 ± 0.2, nhóm-SSRI: 0.3 ± 0.4, p = .024) và tính tế bào (nhóm-C: 1.7 ± 0.4, nhóm-SSRI: 2.0 ± 0.0, p = .023) giữa các nhóm. Dựa trên tổng điểm, nhóm-SSRI tốt hơn có ý nghĩa so với nhóm-C (6.3 ± 2.7 Vs 4.3 ± 1.9, p = .019). Nghiên cứu của chúng tôi đã chứng minh rằng SSRI có thể thúc đẩy kết quả sinh học cơ học và mô học tốt hơn sau 8 tuần sửa chữa gân chóp xoay trong mô hình chuột. Do đó, SSRI có thể cải thiện quá trình lành vết thương sau khi sửa chữa gân chóp xoay.
Từ khóa
#SSRI #gân chóp xoay #hồi phục vết thương #mô hình chuột #giao diện xương-gânTài liệu tham khảo
Park JH, Oh KS, Kim TM, Kim J, Yoon JP, Kim JY, et al. Effect of smoking on healing failure after rotator cuff repair. Am J Sports Med. 2018;46:2960–8.
Robson MJ, Quinlan MA, Blakely RD. Immune system activation and depression: roles of serotonin in the central nervous system and periphery. ACS Chem Neurosci. 2017;8:932–42.
Gualano MR, Bert F, Mannocci A, La Torre G, Zeppegno P, Siliquini R. Consumption of antidepressants in Italy: recent trends and their significance for public health. Psychiatr Serv. 2014;65:1226–31.
Leonard BE. Pharmacological differences of serotonin reuptake inhibitors and possible clinical relevance. Drugs. 1992;43:3–10.
Eison AS, Mullins UL. Regulation of central 5-HT2A receptors: a review of in vivo studies. Behav Brain Res. 1996;73:177–81.
Felger JC, Lotrich FE. Inflammatory cytokines in depression: neurobiological mechanisms and therapeutic implications. Neuroscience. 2013;246:199–229.
Wang H, Li P, Zhang Y, Zhang C, Li K, Song C. Cytokine changes in different types of depression: specific or general? Neurol Psychiatry Brain Res. 2020;36:39–51.
Yoshimura R, Hori H, Ikenouchi-Sugita A, Umene-Nakano W, Ueda N, Nakamura J. Higher plasma interleukin-6 (IL-6) level is associated with SSRI-or SNRI-refractory depression. Prog Neuropsychopharmacol Biol Psychiatry. 2009;33:722–6.
Kubera M, Simbirtsev A, Mathison R, Maes M. Effects of repeated fluoxetine and citalopram administration on cytokine release in C57BL/6 mice. Psychiatry Res. 2000;96:255–66.
Wang L, Wang R, Liu L, Qiao D, Baldwin DS, Hou R. Effects of SSRIs on peripheral inflammatory markers in patients with major depressive disorder: a systematic review and meta-analysis. Brain Behav Immun. 2019;79:24–38.
Yoon JP, Chung SW, Jung JW, Lee YS, Kim KI, Park GY, et al. Is a local administration of parathyroid hormone effective to tendon-to-bone healing in a rat rotator cuff repair model? J Orthop Res. 2020;38:82–91.
Sell SL, Craft RM, Seitz PK, Stutz SJ, Cunningham KA, Thomas ML. Estradiol-sertraline synergy in ovariectomized rats. Psychoneuroendocrinology. 2008;33:1051–60.
Cryan JF, Lucki I. Antidepressant-like behavioral effects mediated by 5-hydroxytryptamine2C receptors. J Pharmacol Exp Ther. 2000;295:1120–6.
Bilge S, Bozkurt A, Bas DB, Aksoz E, Savli E, Ilkaya F, et al. Chronic treatment with fluoxetine and sertraline prevents forced swimming test-induced hypercontractility of rat detrusor muscle. Pharmacol Rep. 2008;60:872–9.
Gigante A, Cesari E, Busilacchi A, Manzotti S, Kyriakidou K, Greco F, et al. Collagen I membranes for tendon repair: effect of collagen fiber orientation on cell behavior. J Orthop Res. 2009;27:826–32.
Trudel G, Ramachandran N, Ryan SE, Rakhra K, Uhthoff HK. Supraspinatus tendon repair into a bony trough in the rabbit: mechanical restoration and correlative imaging. J Orthop Res. 2010;28:710–5.
Laudier D, Schaffler MB, Flatow EL, Wang VM. Novel procedure for high-fidelity tendon histology. J Orthop Res. 2007;25:390–5.
Yoon JP, Lee CH, Jung JW, Lee HJ, Lee YS, Kim JY, et al. Sustained delivery of transforming growth factor β1 by use of absorbable alginate scaffold enhances rotator cuff healing in a rabbit model. Am J Sports Med. 2018;46:1441–50.
Chung SW, Park H, Kwon J, Choe GY, Kim SH, Oh JH. Effect of hypercholesterolemia on fatty infiltration and quality of tendon-to-bone healing in a rabbit model of a chronic rotator cuff tear: Electrophysiological, biomechanical, and histological analyses. Am J Sports Med. 2016;44:1153–64.
Nakagawa H, Morihara T, Fujiwara H, Kabuto Y, Sukenari T, Kida Y, et al. Effect of footprint preparation on tendon-to-bone healing: A histologic and biomechanical study in a rat rotator cuff repair model. Arthroscopy. 2017;33:1482–92.
Kuo LT, Chen HM, Yu PA, Chen CL, Hsu WH, Tsai YH, et al. Depression increases the risk of rotator cuff tear and rotator cuff repair surgery: a nationwide population-based study. PLoS One. 2019;14:e0225778.
Lin TW, Cardenas L, Glaser DL, Soslowsky LJ. Tendon healing in interleukin-4 and interleukin-6 knockout mice. J Biomech. 2006;39:61–9.
Schulze-Tanzil G, Al-Sadi O, Wiegand E, Ertel W, Busch C, Kohl B, et al. The role of pro-inflammatory and immunoregulatory cytokines in tendon healing and rupture: new insights. Scand J Med Sci Sports. 2011;21:337–51.
Wei LH, Kuo ML, Chen CA, Chou CH, Lai KB, Lee CN, et al. Interleukin-6 promotes cervical tumor growth by VEGF-dependent angiogenesis via a STAT3 pathway. Oncogene. 2003;22:1517–27.
Postlethwaite AE, Holness MA, Katai H, Raghow R. Human fibroblasts synthesize elevated levels of extracellular matrix proteins in response to interleukin 4. J Clin Invest. 1992;90:1479–85.
Desborough J. The stress response to trauma and surgery. Br J Anaesth. 2000;85:109–17.
Finnerty CC, Mabvuure NT, Ali A, Kozar RA, Herndon DN. The surgically induced stress response. JPEN J Parenter Enteral Nutr. 2013;37:21S–9.
Guilliams TG, Edwards L. Chronic stress and the HPA axis. The standard. 2010;9:1–12.
Song C-Z, Tian X, Gelehrter TD. Glucocorticoid receptor inhibits transforming growth factor-β signaling by directly targeting the transcriptional activation function of Smad3. Proc Natl Acad Sci U S A. 1999;96:11776–81.
Delany AM, Durant D, Canalis E. Glucocorticoid suppression of IGF I transcription in osteoblasts. Mol Endocrinol. 2001;15:1781–9.
Logie JJ, Ali S, Marshall KM, Heck MM, Walker BR, Hadoke PW. Glucocorticoid-mediated inhibition of angiogenic changes in human endothelial cells is not caused by reductions in cell proliferation or migration. PLoS One. 2010;5:e14476.
Ozturk MB, Egemen O, Basat SO, Bozdağ E, Sakız D, Akan M. Histologic and biomechanical evaluation of the effects of social stress and the antidepressant fluoxetine on tendon healing in rats. J Hand Microsurg. 2015;7:294–9.
Duffy DJ, Chang YJ, Fisher MB, Moore GE. Biomechanical evaluation of a novel barbed suture pattern with epitendinous suture augmentation in a canine flexor tendon model. Vet Surg. 2021;50:1128–36.