Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Chiết xuất vi mô bằng dung môi ion lỏng tăng cường phương pháp tẩy muối với dung môi hai vai trò để xác định đồng thời các chất ô nhiễm vi lượng với phổ độ phân cực rộng trong mẫu nước
Tóm tắt
Trong môi trường nước thực tế, nhiều chất ô nhiễm nghề nghiệp với dải độ phân cực rộng tồn tại đồng thời ở mức nanogram đến milligram mỗi lít. Hầu hết các phương pháp vi chiết đã báo cáo đều tập trung vào việc chiết xuất các hợp chất có tính chất tương tự (ví dụ: độ phân cực hoặc nhóm chức cụ thể). Trong nghiên cứu này, chúng tôi đã phát triển phương pháp vi chiết có trợ giúp tẩy muối dựa trên dung môi ion lỏng hai vai trò (SILM-DS) nhằm phát hiện đồng thời tetracycline, doxycycline, bisphenol A, triclosan, và methyltriclosan, với log K
ow dao động từ −1.32 đến 5.40 trong các ma trận sữa phức tạp và nước môi trường. Dung dịch phân tán trong vi chiết lỏng-lỏng dựa trên dung môi ion lỏng được chuyển đổi thành dung môi chiết trong quy trình vi chiết hỗ trợ tẩy muối sau đó, và do đó một dung môi duy nhất đã thực hiện vai trò kết hợp là cả chất chiết và chất phân tán trong quy trình SILM-DS. Acetonitrile được chọn làm dung môi hai vai trò nhờ vào ái lực mạnh mẽ của nó đối với cả dung môi ion lỏng và nước, cũng như chất chiết trong bước tẩy muối. Các điều kiện thí nghiệm tối ưu được xác định là 115 μL [C8MIM][PF6] làm chất chiết xuất, 1200 μL acetonitrile làm dung môi hai vai trò, pH 2.0, thời gian chiết xuất siêu âm là 5.0 phút, 3.0 g Na2SO4, và thời gian chiết xuất vortex là 3.0 phút. Dưới các điều kiện tối ưu, tỷ lệ phục hồi của năm chất ô nhiễm dao động từ 74.5 đến 106.9%, và giới hạn phát hiện (LOD) của chúng là 0.12–0.75 μg kg−1 trong mẫu sữa và 0.11–0.79 μg L−1 trong nước môi trường. Độ chính xác thí nghiệm dựa trên độ lệch chuẩn tương đối là 1.4–6.4% cho phân tích trong ngày và 2.3–6.5% cho phân tích giữa các ngày. So với các phương pháp trước đó, những ưu điểm nổi bật của phương pháp mới phát triển là xác định đồng thời các chất ô nhiễm với một loạt độ phân cực rộng và giảm tải công việc kiểm tra môi trường và thực phẩm thông thường một cách đáng kể. Do đó, phương pháp mới có tiềm năng ứng dụng lớn trong việc xác định đồng thời các chất ô nhiễm vi lượng có độ phân cực trái ngược mạnh mẽ trong một số lĩnh vực phân tích.
Từ khóa
Tài liệu tham khảo
Vargas Mamani MC, Reyes Reyes FG, Rath S. Multiresidue determination of tetracyclines, sulphonamides and chloramphenicol in bovine milk using HPLC-DAD. Food Chem. 2009;117:545–52.
Gao JJ, Wang H, Qu JG, Wang HL, Wang XD. Development and optimization of a naphthoic acid-based ionic liquid as a “non-organic solvent microextraction” for the determination of tetracycline antibiotics in milk and chicken eggs. Food Chem. 2017;215:138–48.
Hansch C, Leo A, Hoekman D. Exploring QSAR - hydrophobic, electronic, and steric constants. Washington, DC: American Chemical Society; 1995. p. 177.
Fu L, Huang T, Wang S, Wang X, Su L, Li C, et al. Toxicity of 13 different antibiotics towards freshwater green algae Pseudokirchneriella subcapitata and their modes of action. Chemosphere. 2016;168:217–22.
Asimakopoulos AG, Thomaidis NS, Kannan K. Widespread occurrence of bisphenol A diglycidyl ethers, p-hydroxybenzoic acid esters (parabens), benzophenone type-UV filters, triclosan, and triclocarban in human urine from Athens. Sci Total Environ. 2014;470-471:1243–9.
Ying GG, Kookana RS, Dillon PJ. Sorption and degradation of five selected endocrine disrupting chemicals in aquifer material. Water Res. 2003;37:3785–91.
Gerona RR, Woodruff TJ, Dickenson CA, Pan J, Schwartz JM, Sen S, et al. Bisphenol-A (BPA), BPA glucuronide, and BPA sulfate in midgestation umbilical cord serum in a northern and central California population. Environ Sci Technol. 2013;47:12477–85.
Michalowicz J. Bisphenol A-sources, toxicity and biotransformation. Environ Toxicol Pharmacol. 2014;37:738–58.
Yusa V, Ye XY, Calafat AM. Methods for the determination of biomarkers of exposure to emerging pollutants in human specimens. Trends Anal Chem. 2012;38:129–42.
Perencevich EN, Wong MT, Harris AD. National and regional assessment of the antibacterial soap market: a step toward determining the impact of prevalent antibacterial soaps. Am J Infect Control. 2001;29:281–3.
Zhao JL, Zhang QQ, Chen F, Wang L, Ying GG, Liu YS, et al. Evaluation of triclosan and triclocarban at river basin scale using monitoring and modeling tools: implications for controlling of urban domestic sewage discharge. Water Res. 2013;47:395–405.
Latch DE, Packer JL, Stender BL, Vanoverbeke J, Arnold WA, Mcneill K. Aqueous photochemistry of triclosan: formation of 2,4-dichlorophenol, 2,8-dichlorodibenzo-p-dioxin, and oligomerization products. Toxicol Chem. 2005;24(3):517–25.
Gonzalo-Lumbreras R, Sanz-Landaluze J, Cámara C. Analytical performance of two miniaturised extraction methods for triclosan and methyltriclosan, in fish roe and surimi samples. Food Chem. 2014;146:141–8.
Coogan MA, Edziyie RE, La Point TW, Venables BJ. Algal bioaccumulation of triclocarban, triclosan, and methyl-triclosan in a north Texas wastewater treatment plant receiving stream. Chemosphere. 2007;67:1911–8.
Lv W, Chen Y, Li D, Chen X, Leszczynski J. Methyl-triclosan binding to human serum albumin: multi-spectroscopic study and visualized molecular simulation. Chemosphere. 2013;3:1125–30.
Renew JE, Huang CH. Simultaneous determination of fluoroquinolone, sulfonamide, and trimethoprim antibiotics in wastewater using tandem solid phase extraction and liquid chromatography-electrospray mass spectrometry. J Chromatogr A. 2004;1042:113–21.
Spietelun A, Marcinkowski Ł, de la Guardia M, Namieśnik J. Green aspects, developments and perspectives of liquid phase microextraction techniques. Talanta. 2014;119:34–45.
Sharifi V, Abbasi A, Nosrati A. Application of hollow fiber liquid phase microextraction and dispersive liquid–liquid microextraction techniques in analytical toxicology. J Food Drug Anal. 2016;24:264–76.
Vázquez MM, Vázquez PP, Galera MM, García MD. Determination of eight fluoroquinolones in groundwater samples with ultrasound-assisted ionic liquid dispersive liquid–liquid microextraction prior to high-performance liquid chromatography and fluorescence detection. Anal Chim Acta. 2012;748:20–7.
Vakh C, Pochivalov A, Andruch V, Moskvin L, Bulatov A. A fully automated effervescence-assisted switchable solvent-based liquid phase microextraction procedure: liquid chromatographic determination of ofloxacin in human urine samples. Anal Chim Acta. 2016;907:54–9.
ang H, Gao JJ, Yu NN, Qu JG, Fang F, Wang HL, et al. Development of a novel naphthoic acid ionic liquid and its application in “no-organic solvent microextraction” for determination of triclosan and methyltriclosan in human fluids and the method optimization by central composite design. Talanta. 2016;154:381–91.
Zhao RS, Liu YL, Chen XF, Yuan JP, Bai AY, Zhou JB. Preconcentration and determination of polybrominated diphenyl ethers in environmental water samples by solid-phase microextraction with Fe3O4-coated bamboo charcoal fibers prior to gas chromatography-mass spectrometry. Anal Chim Acta. 2013;769:65–71.
Pindado JO, Pérez Pastor RM. Estimation of measurement uncertainty of pesticides, polychlorinated biphenyls and polyaromatic hydrocarbons in sediments by using gas chromatography-mass spectrometry. Anal Chim Acta. 2012;724:20–9.
Wang HL, Gao M, Gao JJ, Yu NN, Hong H, Yu Q, et al. Determination of fluoroquinolone antibiotics via ionic-liquid-based, salt-induced, dual microextraction in swine feed. Anal Bioanal Chem. 2016;6105:408–22.
Hu XZ, Wu JH, Feng YQ. Molecular complex-based dispersive liquid–liquid microextraction: Analysis of polar compounds in aqueous solution. J Chromatogr A. 2010;1217:7010–6.
Wu LJ, Hu MZ, Li ZC, Song Y, Yu C, Zhang YP, et al. Determination of triazine herbicides in fresh vegetables by dynamic microwave-assisted extraction coupled with homogeneous ionic liquid microextraction high performance liquid chromatography. Anal Bioanal Chem. 2015;407:1753–62.
Huddleston JG, Visser AE, Reichert WM, Willauer HD, Broker GA, Rogers RD. Characterization and comparison of hydrophilic and hydrophobic room temperature ionic liquids incorporating the imidazolium cation. Green Chem. 2001;3:156–64.
Valente IM, Gonçalves LM, Rodrigues JA. Another glimpse over the salting-out assisted liquid–liquid extraction in acetonitrile/water mixtures. J Chromatogr A. 2013;1308:58–62.
Kamarei F, Ebrahimzadeh H, Yamini Y. Optimization of solvent bar microextraction combined with gas chromatography for the analysis of aliphatic amines in water samples. J Hazard Mater. 2010;178(1-3):747–52.
Konieczka P, Namieśnik J. Estimating uncertainty in analytical procedures based on chromatographic techniques. J Chromatogr A. 2010;1217(6):882–91.
Augusto F, Hantao LW, Mogollón NGS, Braga SCGN. New materials and trends in sorbents for solid-phase extraction. Trends Anal Chem. 2013;43(2):14–23.
Moral A, Sicilia MD, Rubio S, Pérez-Bendito D. Multifunctional sorbents for the extraction of pesticide multiresidues from natural waters. Anal Chim Acta. 2008;608(1):61.
Mirnaghi FS, Goryński K, Rodriguez-Lafuente A, Boyacı E, Bojko B, Pawliszyn J. Microextraction versus exhaustive extraction approaches for simultaneous analysis of compounds in wide range of polarity. J Chromatogr A. 2013;1316(21):37–43.
Tabani H, Asadi S, Nojavan S, Parsa M. Introduction of agarose gel as a green membrane in electromembrane extraction: an efficient procedure for the extraction of basic drugs with a wide range of polarities. J Chromatogr A. 2017;1497:47–55.
Faria HDD, Rosa MA, Silveira AT, Figueiredo EC. Direct extraction of tetracyclines from bovine milk using restricted access carbon nanotubes in a column switching liquid chromatography system. Food Chem. 2017;225:98–106.
Filippou O, Deliyanni EA, Samanidou VF. Fabrication and evaluation of magnetic activated carbon as adsorbent for ultrasonic assisted magnetic solid phase dispersive extraction of bisphenol A from milk prior to high performance liquid chromatographic analysis with ultraviolet detection. J Chromatogr A. 2016;1479:20–31.
Azzouz A, Rascon AJ, Ballesteros E. Simultaneous determination of parabens, alkylphenols, phenylphenols, bisphenol A and triclosan in human urine, blood and breast milk by continuous solid-phase extraction and gas chromatography-mass spectrometry. J Pharm Biomed Anal. 2016;119:16–26.
Wang H, Zhang J, Gao F, Yang Y, Dun HJ. Simultaneous analysis of synthetic musks and triclosan in human breast milk by gas chromatography tandem mass spectrometry. J Chromatogr B. 2011;879:1861–9.
Montes R, Rodríguez I, Rubí E, Cela R. Dispersive liquid–liquid microextraction applied to the simultaneous derivatization and concentration of triclosan and methyltriclosan in water samples. J Chromatogr A. 2009;1216:205–10.