Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Tuyến nước bọt của ruồi giấm Glossina pallidipes Austen bị nhiễm Trypanosoma brucei và các hạt virus: Nghiên cứu cấu trúc siêu vi
Tóm tắt
Nghiên cứu đã xem xét tác động của việc nhiễm Trypanosoma brucei và virus DNA lên cấu trúc siêu vi của các tế bào tuyến nước bọt ở Glossina pallidipes Austen. Tế bào không bị nhiễm có chứa một quần thể ribosome dày đặc và lưới nội chất thô, các vùng Golgi phân tán và ti thể. Trong các tế bào nhiễm bệnh của tuyến nước bọt, tính toàn vẹn siêu vi của chất tế bào bị thay đổi rõ rệt do sự tăng sinh tế bào dẫn đến một lớp biểu mô phân tầng và sự phình to của tuyến; sự thoái hóa tế bào được đặc trưng bởi sự hình thành các khoảng trống trong chất tế bào, sự tập trung lại của cromatin, sự mất trật tự và loại bỏ các bào quan tế bào cùng với sự phì đại của tuyến. Các hạt virus được tìm thấy trong nhân tế bào cũng như trong chất tế bào. Chứng cứ cấu trúc siêu vi cho thấy rằng virus chủ yếu được lắp ráp trong nhân của tế bào và các virion đi qua màng nhân. Các trypanosome được tìm thấy trong chất tế bào đang thoái hóa và lòng tế bào. Các ý nghĩa của các đặc điểm quan sát được trong các tế bào nhiễm bệnh được thảo luận và có những gợi ý về sự thay đổi các chức năng trao đổi chất do sự nhiễm trùng gây ra.
Từ khóa
#Trypanosoma brucei #virus DNA #tuyến nước bọt #tế bào #cấu trúc siêu vi #Glossina pallidipesTài liệu tham khảo
Berridge M. J., Gupta B. L., Oschman J. L. and Wall B. H. (1976) Salivary gland development in the blowfly, Calliphora erythrocephala. J. Morph. 149, 459–582.
Burtt E. (1942) Observations on the high proportion of polymorphic trypanosome infections found in the salivary glands of G. brevipalpis near Amani, Tanganyika Territory, with a note on the appearance of the infected glands. Ann. Trop. Med. 36, 170–176.
Burtt E. (1945) Hypertrophied salivary glands in Glossina. Evidence that G. pallidipes with this abnormality is peculiarly suited to trypanosome infection. Ann. Trop. Med. Parasitol. 39, 11–13.
Burtt E. (1950) An illustration of the appearance presented by trypanosome colonies occurring on the proboscis and in the salivary glands of a tsetse fly. Acta Trop. 7, 61–62.
Chamberlain R. W. (1968) Arboviruses, the arthropod-borne animal viruses. Curr. Topics Microbiol. Immunol. 42, 38–58.
Fawcett D. W. and Witebsky F. (1964) Observations on the ultrastructure of the nucleated erythrocytes and thrombocytes, with particular reference to the structural basis of their discoid shape. Z. Zellforsch, mikrosk. Anat. 62, 785–806.
Golder T. K. and Patel N. Y. (1984) Some effects of trypanosome development on the saliva and salivary glands of the tsetse fly, Glossina morsitans. Euro. J. Cell. Biol. 22, 551.
Jaenson T. G. T. (1978) Virus-like rods associated with salivary gland hyperplasia in tsetse, Glossina pallidipes. Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 72, 234–238.
Janzen H. G. A., Rhodes A. J. and Doane F. W. (1970) Chikungunya virus in salivary glands of Aedes aegypti (L): an electron microscope study. Can. J. Microbiol. 16, 581–586.
Jenni L. (1973) Virus-like particles in a strain of G. morsitans centralis Machado 1970. Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 67, 295.
Jenni L. and Steiger R. (1974) Virus-like particles of Glossina fuscipes Newst. 1910. Acta Trop. 31, 177–180.
Jurand A., Simoes L. C. G. and Pavan C. (1967) Changes in the ultrastructure of salivary gland cytoplasm in Sciara ocellaris (Comstock, 1882) due to microsporidian infection. J. Insect Physiol. 13, 795–803.
Klei T. R. and De Giusti L. D. (1973) Ultrastructural changes in salivary glands of Pseudolynchia canariensis (Diptera: Hippoboscidae) infected with Sporozoites of Haemoproteus columbae. J. Invert. Pathol. 22, 321–328.
Larsen J. R. and Ashley R. F. (1971) Demonstration of Venezuelan equine encephalomyelitis virus in tissue of Aedes aegypti. Amer. J. Trop. Med. Hyg. 20, 754–760.
Livesey J. L., Molyneux D. H. and Jenni L. (1980) Mechanoreceptor-trypanosome infection in the labrum of Glossina: fluid mechanics. Acta Trop. 37, 151–161.
Mims C. A., Day M. F. M. and Marsha L. I. D. (1966) Cytopathic effect of Semliki forest virus in the mosquito Aedes aegypti. Am. J. Trop. Med. Hyg. 15, 775–784.
Otieno L. H., Kokwaro E. D., Chimtawi M. and Onyango P. (1980) Prevalence of enlarged salivary glands in wild populations of Glossina pallidipes in Kenya, with a note on the ultrastructure of the affected organ. J. Invert. Path. 36, 113–118.
Reynolds E. S. (1963) The use of lead citrate at high pH as an electron-opaque stain in electron microscopy. J. Cell Biol. 17, 208–212.
Sequeira L. M. (1971) Structure and functional relations of the salivary glands of the tsetsefly. M.Sc. thesis. University of Nairobi.
Steinhaus A. S. and Zeikus R. D. (1969) Teratology of the beetle Tenebrio molitor. IV Ultrastructure of the necrotic fat body foregut associated with the pupal-winged adult. J. Invert. Path. 13, 337–344.
Whitfield S. G., Murthy F. A. and Sudia W. D. (1971) Eastern equine encephalomyelitis virus: an electron microscopic study of Aedes triseriatus (Say) salivary gland infection. Virology 43, 110–122.
Whitnail A. B. M. (1934) The trypanosome infections of Glossina pallidipes in the Umfolosi Game Reserve, Zululand. Onderstepoort J. Vet. Anim. Ind. 11, 7–21.
Wigglesworth V. B. (1965) The Principles of Insect Physiology 6th ed. Dutton, New York.