Quy Định Của Đường Dẫn Axit Retinoic Đối Với Yếu Tố Tăng Trưởng Nội Mạch Ở Amnion Cừu

Reproductive Sciences - Tập 26 - Trang 1351-1359 - 2021
Cecilia Y. Cheung1,2, Debra F. Anderson2, Marion Rouzaire3, Loïc Blanchon3, Vincent Sapin3, Robert A. Brace1,2
1Department of Obstetrics and Gynecology, Oregon Health & Science University, Portland, USA
2Center for Developmental Health, Oregon Health & Science University, Portland, USA
3Team “Translational approach to epithelial injury and repair”, Université Clermont Auvergne, CNRS, Inserm, GReD, Clermont-Ferrand, France

Tóm tắt

Yếu tố tăng trưởng nội mạch (VEGF) đã được đề xuất là một yếu tố điều tiết quan trọng trong quá trình hấp thu dịch ối qua amnion vào hệ mạch của thai nhi trên bề mặt nhau thai. Tuy nhiên, các tác nhân kích thích biểu hiện và hoạt động của VEGF trong amnion vẫn chưa được xác định. Sử dụng mô hình cừu mang thai, chúng tôi nhằm mục đích điều tra sự hiện diện của con đường axit retinoic (RA) trong amnion cừu và xác định tác động của nó đến biểu hiện VEGF. Hơn nữa, chúng tôi đã khám phá các mối quan hệ giữa thụ thể RA và VEGF và kiểm tra giả thuyết rằng RA điều chỉnh hấp thu màng trong (IMA) thông qua sự kích thích VEGF ở amnion trong các bào thai cừu chịu tác động từ tỷ lệ IMA thay đổi. Nghiên cứu của chúng tôi cho thấy rằng các isoform thụ thể RA được biểu hiện trong amnion cừu, và các yếu tố đáp ứng với RA (RAREs) đã được xác định trong các trình điều khiển gen RARß và VEGF ở cừu. Trong các tế bào amnion cừu, điều trị bằng RA đã làm tăng mức mRNA của RARβ và tăng cường mức độ bản sao mRNA của VEGF. Trong các bào thai cừu, sự gia tăng tỷ lệ IMA liên quan đến mức độ mRNA VEGF tăng lên trong amnion nhưng không phải trong chorion. Hơn nữa, mRNA của RARβ có mối tương quan dương với mức độ mRNA VEGF trong amnion và không phải ở chorion. Chúng tôi kết luận rằng một con đường RA có mặt trong màng thai cừu và rằng RA có khả năng kích thích VEGF. Phát hiện một mối quan hệ tích cực giữa VEGF amnion và RARβ trong bối cảnh thay đổi tỷ lệ IMA cho thấy con đường retinoid có thể đóng vai trò thông qua VEGF trong việc điều chỉnh sự vận chuyển màng trong qua amnion.

Từ khóa

#Yếu tố tăng trưởng nội mạch #axit retinoic #hấp thu màng trong #amnion #cừu #thụ thể RA #thai nhi.

Tài liệu tham khảo

Thomas CE. The infrastructure of human amnion epithelium. J. Ultrastruct Res. 1965;13(1):65–83. Minh HN, Smadja A, Orcel L. Morphological study of the chorioallantoic fetal membranes. Eur J Obstet Gyneco Reprod Biol. 1984;17(5):305–314. Shandley L, Alcorn D, Wintour EM. Ovine amniotic and allantoic epithelial across gestation. Anat Rec. 1997;248(4):542–553. Adams EA, Choi HM, Cheung CY, Brace RA. Comparison of amniotic and intramembranous unidirectional permeabilities in late-gestation sheep. Am J Obstet Gynecol. 2005;193(1):247–255. Han YM, Romero R, Kim JS, et al. Regional-specific gene expression profiling: novel evidence for biological heterogeneity of the human amnion. Biol Reprod. 2008;79(5):654–961. Benirschke K, Kaufmann P. Anatomy and pathology of the pla-cental membranes. In: Benirschke K, Kaufmann P, eds. Pathology of the Human Placenta, 4th ed. New York, NY: Springer; 2000: 281–334. Sharshiner R, Brace RA, Cheung CY. Vesicular uptake ofmacro-molecules by human placental amniotic epithelial cells. Placenta. 2017;57:137–143. Gilbert WM, Brace RA. The missing link in amniotic fluid volume regulation: intramembranous absorption. Obstet Gynecol. 1989;74(5):748–754. Brace RA, Anderson DF, Cheung CY. Regulation of amniotic fluid volume: mathematical model based on intramembranous transport mechanisms. Am JPhysiol Regul Integr Comp Physiol. 2014;307(10):R1260–R1273. Cheung CY, Li S, Chen D, Brace RA. Regulation of caveolin-1 expression and phosphorylation by VEGF in ovine amnion cells. Reprod Sci. 2010;17(12):1112–1119. Chou MT, Wang J, Fujita DJ. Src kinase becomes preferentially associated with the VEGFR, KDR/Flk-1, following VEGF stimulation ofvascular endothelial cells. BMC Biochem. 2002;3:32–42. Cooper JC, Sharkey AM, McLaren J, Charnock-Jones DS, Smith SK. Localization of vascular endothelial growth factor and its receptor, flt, in human placenta and decidua by immunohisto-chemistry. J Reprod Fertil. 1995;105(2):205–213. Clark DE, Smith SK, Sharkey AM, Charnock-Jones DS. Localization of VEGF and expression of its receptors flt and KDR in human placenta throughout pregnancy. Hum Reprod. 1996;11(5): 1090–1098. Bogic LV, Brace RA, Cheung CY. Cellular localization of vascular endothelial growth factor in ovine placenta and fetal membranes. Placenta. 2000;21(2-3):203–209. Bogic LV, Brace RA, Cheung CY. Developmental expression of vascular endothelial growth factor (VEGF) receptors and VEGF binding in ovine placenta and fetal membranes. Placenta. 2001;22(4):265–275. Matsumoto LC, Bogic L, Brace RA, Cheung CY. Fetal esopha-geal ligation induces expression of vascular endothelial growth factor messenger ribonucleic acid in fetal membranes. Am J Obstet Gynecol. 2001;184(2):175–184. Daneshmand SS, Cheung CY, Brace RA. Regulation of amniotic fluid volume by intramembranous absorption in sheep: role of passive permeability and vascular endothelial growth factor. Am J obstet Gynecol. 2003;188(3):786–793. Cheung CY. Vascular endothelial growth factor activation of intramembranous absorption: a critical pathway for amniotic fluid volume regulation. J Soc Gynecol Investig. 2004;11(2):63–74. Lefebvre P, Martin PJ, Flajollet S, Dedieu S, Billaut X, B Lefebvre B. Transcriptional activities of retinoic acid receptors. Vitam Horm. 2005;70:199–264. Marceau G, Gallot D, Lemery D, Sapin V. Metabolism of retinol during mammalian placental and embryonic development. Vitam Horm. 2007;75:97–115. Germain P, Chambon P, Eichele G, et al. International union of pharmacology. LX. Retinoic acid receptors. Pharmacol Rev. 2006;58(4):712–725. Comptour A, Rouzaire M, Belville C, et al. Nuclear retinoid receptors and pregnancy: placental transfer, functions, and pharmacological aspects. Cell Mol Life Sci. 2016;73(20):3823–3837. Sapin V, Bouillet P, Oulad-Abdelghani M, Dastugue B, Chambon P, Dolle P. Differential expression of retinoic acid-inducible (Stra) genes during mouse placentation. Mech Dev. 2000;92(2): 295–299. Chen JT, Liang JB, Chou CL, Shyu RC, Lu DW. Retinoic acid induces VEGF gene expression in human retinal pigment epithelial cells (ARPE-19). J Ocul Pharmacol Ther. 2005;21(6): 413–419. Chien CY, Yuan TA, Cho CH, et al. All-trans retinoic acid ameliorates glycemic control in diabetic mice via modulating pancreatic islet production of vascular endothelial growth factor-A. Biochem Biophys Res Commun. 2016;477(4):874–880. Marceau G, Gallot D, Borel V, et al. Molecular and metabolic retinoid pathways in human amniotic membranes. Biochem Bio-physRes Comm. 2006;346(4):1207–1216. Prat C, Bouvier D, Comptour A, et al. All-trans-retinoic acid regulates aquaporin-3 expression and related cellular membrane permeability in the human amniotic environment. Placenta. 2015;36(8):881–887. Brace RA, Gilbert WM, Thornburg KL. Vascularization of the ovine amnion and chorion: a morphometric characterization of the surface area of the intramembranous pathway. Am J Obstet Gynecol. 1992;167(6):1747–1755. Cheung CY, Beardall MK, Anderson DF, Brace RA. Prostaglan-din E2 regulation of amnion cell vascular endothelial growth factor expression: relationship with intramembranous absorption rate in fetal sheep. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 2014; 307(3): R354–R360. Rouzaire M, Comptour A, Belville C, et al. All-trans retinoic acid promotes wound healing of primary amniocytes through the induction of LOXL4, a member of the lysyl oxidase family. Int JBiochem Cell Biol. 2016;81(pt A):10–19. Cheung CY, Anderson DF, Brace RA. Aquaporins in ovine amnion: responses to altered amniotic fluid volumes and intra-membranous absorption rates. Physiol Rep. 2016;4(14): e12868. Robertson P, Faber JJ, Brace RA, et al. Responses of amniotic fluid volume and its four major flows to lung liquid diversion and amniotic infusion in the ovine fetus. Reprod Sci. 2009;16(1):88–93. Anderson DF, Jonker SS, Louey S, Cheung CY, Brace RA. Regulation of intramembranous absorption and amniotic fluid volume by constituents in fetal sheep urine. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 2013;305(5):R506–R511. Brace RA, Cheung CY, Anderson DF. Inhibitor of intramembra-nous absorption in ovine amniotic fluid. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 2013;306(3):R185–R189. Bednar AD, Beardall MK, Brace RA, Cheung CY. Differential expression and regional distribution of aquaporins in amnion of normal and gestational diabetic pregnancies. Physioll Rep. 2015;3(3):e12320. Schmittgen TD, Livak KJ. Analyzing real-time PCR data by the comparative C(T) method. NatureProtocols. 2008;3(6):1101–1108. Wallingford JC, Milunsky A, Underwood BA. Vitamin A and retinol-binding protein in amniotic fluid. Am J Clin Nutr. 1983;38(3):377–381.