Phương pháp vi phân 96 giếng dựa trên resazurin để xác định nồng độ ức chế tối thiểu của biosurfactants

Biotechnology Letters - Tập 38 - Trang 1015-1019 - 2016
Mohamed Elshikh1, Syed Ahmed1, Scott Funston1, Paul Dunlop1, Mark McGaw1, Roger Marchant1, Ibrahim M. Banat1
1School of Biomedical Sciences, Pharmaceutical Science and Practice Research Group, Ulster University, Coleraine, Northern Ireland, UK

Tóm tắt

Mục tiêu của nghiên cứu này là phát triển và xác thực một phương pháp vi phân để đo nồng độ ức chế tối thiểu (MIC) của biosurfactants. Một phương pháp vi phân chuẩn hóa bao gồm thuốc nhuộm resazurin đã được phát triển để đo MIC của biosurfactants và tính hợp lệ của phương pháp này đã được xác lập thông qua việc lặp lại việc xác định MIC của tetracycline và gentamicin với các chủng vi khuẩn chuẩn. Phương pháp mới này cho phép tạo ra các phép đo MIC chính xác, đồng thời khắc phục các vấn đề quan trọng liên quan đến màu sắc và độ hòa tan có thể gây cản trở việc đo lường sự phát triển đối với nhiều loại chiết xuất biosurfactant.

Từ khóa

#biosurfactants #nồng độ ức chế tối thiểu #phương pháp vi phân #resazurin #vi khuẩn chuẩn

Tài liệu tham khảo

Amsler K, Santoro C, Foleno B, Bush K, Flamm R (2010) Comparison of broth microdilution, agar dilution, and Etest for susceptibility testing of doripenem against Gram-Negative and Gram-Positive pathogens. J Clin Microbiol 48:3353–3357 Das P, Yang X-P, Ma LZ (2014) Analysis of biosurfactants from industrially viable Pseudomonas strain isolated from crude oil suggests how rhamnolipids congeners affect emulsification property and antimicrobial activity. Front Microbiol 5:696 Jorgensen JH, Ferraro MJ (2009) Antimicrobial susceptibility testing: a review of general principles and contemporary practices. Clin Infect Dis 49:1749–1755 Kim SH, No HK, Prinyawiwatkul W (2007) Effect of molecular weight, type of chitosan, and chitosan solution pH on the shelf-life and quality of coated eggs. J Food Sci 72:S044–S048 Klančnik A, Piskernik S, Jeršek B, Možina SS (2010) Evaluation of diffusion and dilution methods to determine the antibacterial activity of plant extracts. J Microbiol Methods 81:121–126 National Committee for Clinical Laboratory Standards (2012) Clinical and Laboratory Standards Institute “Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing”; twenty-second informational supplement—11th edn. M100-S22. Standards, vol 32 No 3 O’Brien J, Wilson I, Orton T, Pognan F (2000) Investigation of the Alamar Blue (resazurin) fluorescent dye for the assessment of mammalian cell cytotoxicity. Eur J Biochem 267:5421–5426 Rodrigues L, Banat IM, Teixeira J, Oliveira R (2006) Biosurfactants: potential applications in medicine. J Antimicrob Chemother 57:609–618 Sanchez JGB, Kouznetsov VV (2010) Antimycobacterial susceptibility testing methods for natural products research. Brazil J Microbiol 41:270–277 Singh CR, Kathiresan K, Anandhan S, Suganthi K (2014) Antioxidant and antibacterial activity of field grown and tissue cultured root callus of mangrove species. Eur J Med Plants 4:723–742 Weber A, May A, Zeiner T, Gorak A (2012) Downstream processing of biosurfactants. Chem Eng Trans 27:115–120 Wiegand I, Hilpert K, Hancock REW (2008) Agar and broth dilution methods to determine the minimal inhibitory concentration (MIC) of antimicrobial substances. Nat Protoc 3:163–175 Yemoa A, Gbenou J, Affolabi D, Moudachirou M, Bigot A, Anagonou S, Portaels F, Quetin-Leclercq J, Martin A (2011) Buruli ulcer: a review of in vitro tests to screen natural products for activity against Mycobacterium ulcerans. Planta Med 77:641–646