Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Sinh trưởng phôi soma lặp lại trong các nền văn hóa lá mầm đậu phộng bằng cách tiếp xúc liên tục với 2,4-D
Tóm tắt
Phôi soma từ lá mầm chưa trưởng thành của đậu phộng (Arachis hypogaea) được kích thích trên môi trường bổ sung acid 2,4-dichlorophenoxyacetic (2,4-D). Hơn 90% phôi phát triển ban đầu và 41–46% phôi phát triển lặp lại đã được đạt được sau 12 tuần kích thích bằng cách duy trì các nền văn hóa phôi trên môi trường chứa 20 mg l-1 2,4-D. Việc duy trì các nền văn hóa trên môi trường với 30 hoặc 40 mg l-1 2,4-D dẫn đến phôi phát triển ban đầu và thứ cấp thấp hơn, cũng như sự phát triển của khối u không phôi. Việc chuyển các nền văn hóa phôi sang môi trường thứ cấp với 10 hoặc 20 mg l-1 2,4-D đã làm tăng đáng kể sự phát triển phôi thứ cấp so với môi trường cơ bản không có chất điều hòa sinh trưởng. Việc sử dụng môi trường Murashige & Skoog so với môi trường của Finer không có ảnh hưởng đáng kể đến sự phát triển phôi (85–95%), sự phát triển phôi lặp lại (11–37%) hoặc số lượng phôi trung bình. Sự phát triển phôi thứ cấp cũng được duy trì trong hơn một năm bằng cách cấy ghép lại nhiều lần các phôi soma đã được cách ly trên môi trường với 20 mg l-1 2,4-D.
Từ khóa
#đậu phộng #phôi soma #2 #4-D #phát triển phôi #môi trường nuôi cấyTài liệu tham khảo
Arcioni S, Damiani F, Pezzotti M & E Lupotto (1990) Alfalfa, Lucerne (Medicago spp.). In: Bajaj Y (Ed) Biotechnology in Agriculture and Forestry, Vol 10 (pp 197–241). Springer-Verlag, New York
Baker CM & Wetzstein HY (1992) Somatic embryogenesis and plant regeneration from leaflets of peanut Arachis hypogaea. Plant Cell Rep. 11: 71–75
Baker CM & Wetzstein HY (1994) Influence of auxin type and concentration on peanut somatic embryogenesis. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 36: 361–368
Durham R & Parrott W (1992) Repetitive somatic embryogenesis from peanut cultures in liquid medium. Plant Cell Rep. 11: 122–125
Finer J & Nagasawa A (1988) Development of an embryogenic suspension culture of soybean (Glycine max Merrill.). Plant Cell Tiss. Org. Cult. 15: 125–136
Gamborg O, Miller R & Ojima K (1968) Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells. Exp. Cell Res. 50: 150–158
Ghosh B & Sen S (1991) Plant regeneration through somatic embryogenesis from spear callus culture of Asparagus cooperi Baker. Plant Cell Rep. 9: 667–670
Gleddie S, Keller W & Setterfield G (1983) Somatic embryogenesis and plant regeneration from leaf explants and cell suspensions of Solanum melongena (eggplant). Can. J. Bot. 61: 656–666
Hazra S, Sathaye S & Mascarenhas A (1989) Direct somatic embryogenesis in peanut (Arachis hypogaea). Bio/Technol. 7: 949–951
Karunaratne S & Periyapperuma K (1989) Culture of immature embryos of coconut, Cocos nucifera L: Callus proliferation and somatic embryogenesis. Plant Sci. 62: 247–253
Maheswaran G & Williams E (1986) Direct secondary somatic embryogenesis from immature sexual embryos of Trifolium repens cultured in vitro. Ann. Bot. 57: 109–117
Mathews H, Litz R, Wilde H, Merkle S & Wetzstein H (1992) Stable gene expression of β-glucuronidase and NPT II genes in mango somatic embryos. In Vitro Cell. Dev. Biol. 28P: 172–178
Murashige T & Skoog F (1962) A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15: 473–497
Plata E & Viéitez A (1990) In vitro regeneration of Camellia reticulata by somatic embryogenesis. J. Hort. Sci. 65: 707–714
Raemakers C, Amati M, Staritsky G, Jacobsen E & Visser R (1993) Cyclic somatic embryogenesis and plant regeneration in cassava. Ann. Bot. 71: 289–294
Raj Bhansali R, Driver J & Durzan D (1990) Rapid multiplication of adventitious somatic embryos in peach and nectarine by secondary embryogenesis. Plant Cell Rep. 9: 280–284
Sellars R, Southward G & Phillips G (1990) Adventitious somatic embryogenesis from cultured immature zygotic embryos of peanut and soybean. Crop Sci. 30: 408–414
Stamp J & Henshaw G (1987) Secondary somatic embryogenesis and plant regeneration in cassava. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 10: 227–233
Stuart D & Strickland S (1984) Somatic embryogenesis from cell cultures of Medicago sativa L. II. The interaction of amino acids with ammonium. Plant Sci. Lett. 34: 175–181
Tulecke W & McGranahan G (1985) Somatic embryogenesis and plant regeneration from cotyledons of walnut, Juglans regia L. Plant Sci. 40: 57–63
Wetzstein H & Baker C (1993) The relationship between somatic embryo morphology and conversion in peanut (Arachis hypogaea L.). Plant Sci. 92: 81–89