Các mẻ lặp lại như một quy trình công nghiệp khả thi để sản xuất ethanol hemicellulosic từ bã mía bằng cách sử dụng tế bào nấm men được cố định

Springer Science and Business Media LLC - Tập 26 - Trang 3787-3800 - 2019
F. A. F. Antunes1, J. C. Santos1, A. K. Chandel1, D. J. Carrier2, G. F. D. Peres3, T. S. S. Milessi1, S. S. da Silva1
1Engineering School of Lorena, University of São Paulo, Lorena, Brazil
2Biosystems Engineering and Soil Science, University of Tennessee, Knoxville, USA
3Engineering School of Lorena-University of São Paulo, Lorena, Brazil

Tóm tắt

Hiện nay, bã mía (SB) là loại chất thải nông nghiệp phong phú nhất được sản xuất ở Brazil. Với việc hemicellulose có thể chiếm tới 30% của SB, việc bioconversion của phân đoạn này thành ethanol thế hệ thứ hai (2G) là rất cần thiết cho sự thành công của các hoạt động chế biến sinh học. Đối với sản xuất ethanol 2G, các kỹ thuật như quá trình cố định có thể là một chiến lược thú vị để cải thiện năng suất quy trình và phải được điều tra kỹ lưỡng. Việc cố định các tế bào của nấm men hoang dã pentose bản địa của Brazil, Scheffersomyces shehatae UFMG-HM 52.2, đã được đề xuất để sản xuất ethanol 2G từ thủy phân hemicellulosic của SB. Một thiết kế thí nghiệm đầy đủ 23 đã được xây dựng với các nồng độ khác nhau của sodium alginate (1,0, 1,5 và 2,0% w/v) và calcium chloride (0,1 M, 0,15 M và 0,2 M) và thời gian điều kiện (12, 18 và 24 h). Qua phân tích thống kê, đã xác định rằng năng suất ethanol cao nhất (YP/S là 0,32 g/g) và năng suất (QP là 0,146 g/L.h) đạt được với các điều kiện cố định gồm 1% sodium alginate, 0,2 M calcium chloride và 12 h thời gian điều kiện. Các mẻ lặp lại đã được thực hiện với các điều kiện xác định này, cho thấy tính khả thi của việc sử dụng hệ thống trong 5 chu kỳ liên tiếp. Kết quả nhấn mạnh việc sử dụng tiếp cận được đề xuất cho sản xuất ethanol, thúc đẩy việc đưa nó vào danh mục hoạt động chế biến sinh học. Thủy phân hemicellulosic từ bã mía: một nguồn carbon lớn có sẵn; S. shehatae UFMG-HM 52.2 là một loại nấm men hoang dã bản địa của Brazil có khả năng lên men pentose; Các điều kiện cố định cho nấm men này đã được xác định cho sản xuất ethanol; Độ ổn định trong sản xuất ethanol đã được chứng minh trong 5 mẻ lặp lại liên tiếp; Cách tiếp cận của chúng tôi đã được chứng minh khả thi cho việc phát triển quy trình ethanol 2G công nghiệp.

Từ khóa

#bã mía #ethanol hemicellulosic #nấm men #cố định tế bào #quy trình công nghiệp #biorefinery

Tài liệu tham khảo

Akin C (1987) Biocatalysis with immobilized cells. Biotechnol Genetic Eng Rev 5:319–367 Alves LA, Felipe MGA, Silva JBA, Silva SS, Prata AMR (1998) Pretreatment of sugarcane bagasse hemicellulose hydrolysate for xylitol production by Candida guilliermondii. Appl Biochem Biotechnol 70:89–98 Alvira P, Tomás-pejó E, Ballesteros M, Negro MJ (2010) Pretreatment technologies for an efficient bioethanol production process based on enzymatic hydrolysis: a review. Bioresour Technol 101:4851–4861 Antunes FAF, Chandel AK, Santos JC; et al (2018) Bioethanol: An overview of production possibilities. In: Brienzo, M.. (Ed) Bioethanol and Beyond ¬ Andvances in Production Process and Future Directions. 1ed.NY - USA: Nova Science Publishers Bangrak P, Savitree L, Phisalaphong M (2011) Continuous ethanol production using immobilized yeast cells entrapped in loofa-reinforced alginate carriers. Braz J Microbiol 42:676–684 Behera S, Kar S, Mohanty RC, Ray RC (2010) Comparative study of bio-ethanol production from (mahula (Madhula latifolia L.) flowers by Saccharomyces cerevisiae cells immobilized in agar and Ca alginate matrices. Appl Energy 87:96–100 Behera S, Mohanty RC, Ray RC (2012) Ethanol fermentation of sugarcane molasses by Zymomonas mobilis MTCC 92 immobilized in Luffa cylindrical L. sponge discs and Ca- alginate matrices. Braz J Microbiol 43:1499–1507 Brennan L, Owende P (2010) Biofuels from microalgae—a review of technologies for production, processing, and extractions of biofuels and co-products. Renew Sustain Energy Rev 14:557–577 Canilha L, Chandel AK, Milessi TSS, Antunes FAF, Freitas WLC, Felipe MGA, da Silva SS (2012) Review article : Bioconversion of sugarcane biomass into ethanol: an overview about composition, pretreatment methods, detoxification of hydrolysates, enzymatic saccharification, and ethanol fermentation. J Biomed Biotechnol 2012:1–15 Carvalho W, Silva SS, Vitolo M, Felipe MGA, Mancilha IM (2002) Improvement in xylitol production from sugarcane bagasse hydrolysate achieved by the use of a repeated-batch immobilized cell system. Z Naturforsch C 57:109–112 Carvalho W, Silva SS, Santos JC, Converti A (2003) Xylitol production by Ca-alginate entrapped cells: comparison of different fermentation systems. Enzyme Microb Technol 32:553–559 Cerqueira-Leite RC, Leal MRLV, Cortez LAB, Griffin WM, Scandiffio MIG (2009) Can Brazil replace 5% of the 2025 gasoline world demand with ethanol? Energy 34:655–661 Chandel AK, Antunes FAF, Anjos V, Bell MJB, Rodrigues LN, Singh OV, Rosa CA, Pagnocca FC, da Silva SS (2013) Ultra-structural mapping of sugarcane bagasse after oxalic acid fiber expansion (OAFEX) and ethanol production by Candida shehatae and Saccharomyces cerevisiae. Biotechnol Biofuels 6(4):1–15 Chandel AK, Antunes FAF, Anjos V et al (2014) Multi-scale structural and chemical analysis of sugarcane bagasse in the process of sequential acidbasepretreatment and ethanol production by Scheffersomyces shehatae and Saccharomyces cerevisiae. Biotechn Biofuels 7:63 Chandel AK, Garlapatib VK, Singhc AK, Antunes FAF, da Silva SS (2018a) The path forward for lignocellulose biorefineries: bottlenecks, solutions, and perspective on commercialization. Biores Technol 26:370–381 Chandel AK, Garlapati VK, Singh AK, Antunes FAF, Silva SS (2018b) The path forward for lignocellulose biorefineries: Bottlenecks, solutions, and perspective on commercialization. Biores Technol. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2018.06.004 Chen KC, Huang CT (1998) Effects of the growth of T. cutaneum in calcium alginate gel beads upon bead structure and oxygen transfer characteristics. Enzyme Microb Technol 10:284–292 Cherubini F (2010) The biorefinery concept: using biomass instead of oil for producing energy and chemicals. Energy Convers Manag 51:1412–1421 CONAB (2018) National Supply Company. Monitoring of the Brazilian harvest, Brazilian Supply Ministry (Segundo Levantamento Safra 2018/2019). https://www.conab.gov.br/info-agro/safras/cana/boletim-da-safra-de-cana-de-acucar. Accessed Oct 2018 Freeman A, Lilly MD (1998) Effect of processing parameters on the feasibility and operational stability of immobilized viable microbial cells. Enzyme Microb Technol 23:335–345 Gírio FM, Fonseca C, Carvalheiro F, Duarte LC, Marques S, Bogel-Lukasik R (2010) Hemicelluloses for fuel ethanol: a review. Bioresour Technol 101:4775–4800 Ha SJ, Galazkac JM, Kima SR, Choia JH, Yang X, Seoe JHN, Glassf L, Catec JHD, Jina YS (2011) Engineered Saccharomyces cerevisiae capable of simultaneous cellobiose and xylose fermentation. Proc Natl Acad Sci (PNAS) 108:504–509 Hahn-hägerdal B, Jeppsson H, Skoog K, Prior B (1994) Biochemistry and physiology of xylose fermentation by yeasts. Enzyme Microbiol Technol 16:933–942 Harmsen PFH, Huijgen WJJ, Bermúdez Lopez LM, Bakke RC (2012) Literature review of physical and chemical pretreatment processes for lignocellulosic biomass. Food and Biomass Res Wageningen UR 1:1–49 Holtzapple T (2003) Hemicelluloses. Encycl Food Sci Nutr. https://doi.org/10.1016/B0-12-227055-X/00589-7 Ivanova V, Petrova P, Hristov J (2011) Application in the ethanol fermentation of immobilized yeast cells in matrix of alginate/magnetic nanoparticles, on chitosan-magnetite microparticles and cellulose-coated magnetic nanoparticles. Int Rev Chem Eng 3:289–299 Jeffries TW (1983) Utilization of xylose by bacteria, yeasts and fungi. Adv Biochem Eng Biotechnol 27:1–32 Knauf M, Moniruzzaman M (2004) Lignocellulosic biomass processing: a perspective. Int Sugar J 1263:147–150 Ksungur YG, Zorlu N (2001) Production of ethanol from beet molasses by Ca-alginate immobilized yeast cells in a packed-bed bioreactor. Turkish J Biol 25:265–275 Meena K, Raja TK (2006) Immobilization of Saccharomyces cerevisiae cells by gel entrapment using various metal alginates. World J Microbiol Biotechnol 22:651–653 Nelder JA (1998) The selection of terms in response surface models—how strong is the weak heredity principle. Am Stat 52:16 Nigam JN (2000) Continuous ethanol production from pineapple cannery waste using immobilized yeast cell. J Biotechnol 80:189–193 Ogbonna JC, Amano Y, Nakamura KJ (1989) Elucidation of optimum conditions for immobilization of viable cells by using calcium alginate. J Ferment Bioeng 67:92–96 Omar SH (1993) Oxygen diffusion through gels employed for immobilization. 2—In the presence of microorganisms. Appli Microbiol Biotechnol 40:173–181 Parajó JC, Dominguez H, Dominguez JM (1998) Biotechnological production of xylitol. Part 1: interest of xylitol and fundamentals of its biosynthesis. Bioresour Technol 65:191–201 Parekh SR, Yu S, Wayman M (1986) Adaptation of Candida shehatae and Pichia stipitis to wood hydrolysates for increased ethanol production. Appl Microbiol Biotechnol 25:300–304 Peart PC, Chen ARM, Reynolds WR, Reese PB (2012) Entrapment of mycelial fragments in calcium alginate: a general technique for the use of immobilized filamentous fungi in biocatalysis. Steroids 77:85–90 Perez-Bibbins B, Torrado-Agrasar A, Salgado JM, Mussato SI, Dominguez JM (2015) Xylitol production in immobilized cultures: a recent review. Crit Rev Biotechnol 10:1–14 Rowell RM, Pettersen R, Tshabalala MA (2005) Cell wall chemistry. In: Rowell RM (ed) Handbook of wood chemistry and wood composites. CRC Press, Boca Raton, pp 35–74 Sanda T, Hasunuma T, Matsuda F, Kondo A (2011) Repeated-batch fermentation of lignocellulosic hydrolysate to ethanol using a hybrid Saccharomyces cerevisiae strain metabolically engineered for tolerance to acetic and formic acids. Biores Technol 102:7917–7924 Santos JC, Silva SS, Mussatto SI, Carvalho W, Cunha MA (2005) Immobilized cells cultivated in semi-continuous mode in a fluidized bed reactor for xylitol production from sugarcane bagasse. World J Microbiol Biotechnol 21:531–535 Sarrouh BF, Silva SS (2013) Repeated batch cell-immobilized system for the biotechnological production of xylitol as a renewable green sweetener. Appl Biochem Biotechnol 169:3–12 Sarrouh BF, Tresinari DS, Silva SS (2007) Biotechnological production of xylitol in a three-phase fluidized bed bioreactor with immobilized yeast cells in Ca-alginate beads. Biotechnol J 2:759–763 Singh A, Sharma P, Saran AK, Singh N, Bishnoi NR (2013) Comparative study on ethanol production from pretreated sugarcane bagasse using immobilized Saccharomyces cerevisiae on various matrices. Renewable Energy 50:488–493 Wang Y, Tan L, Wang T, Sun Z, Tang Y, Kida K (2017) Production of ethanol from kitchen waste by using flocculating Saccharomyces cerevisiae KF-7. Environ Technol 38:316–325 Winkelhausen E, Kuzmanova S (1998) Microbial conversion of d-xylose to xylitol. J Ferment Bioeng 86:1–14 Zhao J, Xia L (2010) Ethanol production from corn stover hemicellulosic hydrolysate using immobilized recombinant yeast cells. Biochem Eng J 49:28–32