Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Xem xét lại tác động ức chế hô hấp của bikaverin trên các ti thể tách biệt
Tóm tắt
Kovac et al (1) đã chỉ ra rằng bikaverin làm mất sự liên kết của phosphoryl hóa oxy hóa của ti thể ở nồng độ 20µg/ml (52 nmol/ml) trong hệ phản ứng không có magne (Mg2+). Trong nghiên cứu hiện tại, các tác động của bikaverin lên các phản ứng của ti thể đã được xem xét lại một cách chi tiết ở nhiều nồng độ khác nhau trong hệ phản ứng có và không có magne, sử dụng ti thể gan chuột cống tách biệt và các hạt ti thể phụ (SMP) để xác định ảnh hưởng của nó lên hô hấp ti thể ở nồng độ thấp (<30nmol/mg protein ti thể). Kết luận cho thấy bikaverin không có tác động mất liên kết (không làm giảm tỷ lệ P/O) ở nồng độ thấp và có tác động này ở nồng độ cao do làm rối loạn tính thấm ion ở màng trong của ti thể. Ở nồng độ thấp, bikaverin ức chế cả hô hấp liên kết NAD và succinate, nhưng không can thiệp vào các hệ thống vận chuyển electron và chuyển giao năng lượng của ti thể.
Từ khóa
#bikaverin #ti thể #phosphoryl hóa oxy hóa #hô hấp #ion thẩm thấuTài liệu tham khảo
Kovac L, Bohmerova E, Fuska J (1978) Inhibition of mitochondrial functions by the antibiotics bikaverin and duclauxine. J Antibiot 31: 616–620
Fuska J, Proksa B, Fuskova A (1975) New potential cytotoxic and antitumor substances I. In vitro effect of bikaverin and its derivatives on cells of certain tumors. Neoplasma 22: 335–339
Henderson JF, Battel ML, Zombor G, Fuska J, Nemec P(1977) Effects of bikaverin on purine nucleotide synthesis and catabolism in Ehrlich ascites tumor cells in vitro. Biochem Pharmacol 26: 1973–1977
Myers DK, Slater EC (1957) The enzymatic hydrolysis of adenosine triphosphate by liver mitochondria. Biochem J 67: 558–572
Hemker HC, Hulsman WC (1961) Dinitrophenol-induced ATPase of rat liver mitochondria. Biochim Biophys Acta 48: 221–223
Terashima N, Ishida M, Hamasaki T, Hatuda Y (1972) Isolation of bikaverin from Mycogonejaapii. Phytochemistry 11: 2880
Kawai K, Hisada K, Mori S, Nozawa Y, Koyama K, Natori S (1991) The induction of mitochondrial swelling by chaetochromin A, a bis-naphthopyrone mycotoxin from Chaetomium gracile. Proc Jpn Assoc Mycotoxicol 33: 31–35
Chance B, Williams GR (1956) The respiratory chain and oxidative phosphorylation. Advances in Enzymol 17: 65–134
Kawai K, Fukushima H, Nozawa Y (1985) Inhibition of mitochondrial respiration by asteltoxin, a respiratory toxin from Emericella variecolor. Toxicol Lett 28: 73–77
Tedesch H, Harris DL, (1955) The osmotic behavior and permeability to non- electrolytes of mitochondria. Arch Biochem Biophys 58: 52–67
Lowry OH, Rosebrough NJ, Farr AL, Randall RJ (1951) Protein measurement with the Folin phenol reagent. J Biol Chem 193: 265–275
Kawai K, Nozawa Y, Kato T, Yamanaka N (1982) Effects of xanthomegnin and duclauxin on culture cells of murine leukemia and Ehrlich ascitic tumor. Res Commun Chem Pathol Pharmacol 36: 429–438
Kawai K, Mori H, Kitamura J (1983) The uncoupling effect of flavogalucin, a benzoquinol mycotoxin from Aspergillus chavalieri, on mitochondrial respiration. Toxicol Lett 19: 321–325
Kawai K, NakamaruT, Maebayashi Y, Nozawa Y, Yamazaki M (1983) Inhibition by secalonic acid D of oxidative phosphorylation and Ca2+-induced swelling in mitochondria from rat livers. Appl Environ Microbiol 46: 793–796
ShiojiriH, KawaiK, Kato T, Ogihara Y, Nozawa Y (1984) Cytotoxicities on culture cells and inhibitory effects on mitochondrial respiration by duclauxin and related compounds. Proc Jpn Assoc Mycotoxicol 18: 38–41
Kawai K, Nozawa Y, Maebayashi Y, Yamazaki M, Hamasaki T (1984) Averufin, an anthraquinone mycotoxin possessing a potent uncoupling effect on mitochondrial respiration. Appl Environ Microbiol 47: 481–483
Kawai K, Kato T, Mori H, Kitamura J, Nozawa Y (1984) A comparative study on cytotoxicities and biochemical properties of anthraquinone mycotoxins emodin and skyrin from Penicillium islandicum. Toxicol Lett 20: 155–160
Nakamaru T, Shiojiri H, Kawai K, Nozawa Y, Maebayashi Y, Yamazaki M (1984) The effects of toxic metabolites violaceol I, II from Emericella violacea on mitochondrial respiration. Proc Jpn Assoc Mycotoxicol 19: 30–33
Kawai K, Nakamaru T, Nozawa Y, Maebayashi Y, Yamazaki M, Natori S (1984) The inhibitory effect of sterigmatocystin and 5,6-dimethoxysterigmatocystin on ATP synthesis in mitochondria. Appl Environ Microbiol 48: 1001–1003
Shiojiri H, Nakamaru T, Hisada K, Kawai K, Nozawa Y, Okuyama E, Yamazaki M (1985) The effect of bacillosporin A on mitochondrial respiration. Proc Jpn Assoc Mycotoxicol 20: 17–19
Kawai K, Nozawa Y, Mori H, Ogihara Y (1986) Inhibition of mitochondrial respiration by flavoskyrin, a toxic metabolite of Penicillium islandicum. Toxicol Lett 30: 105–111
Kawai K, Nakamaru T, Hisada K, Nozawa Y, Mori H (1986) The effects of demethylsterigmatocystin and sterigmatin on ATP synthesis system in mitochondria: A comparison with sterigmatocystin. Myco Res 2: 33–38
Kawai K, Ishizaki K, Nakamaru T, Hisada K, Nozawa Y, Kawai K-I (1989) Toxicity of emestrin, a new macrocyclic dithiodioxopiperazine mycotoxin, to mitochondrial function. Myco Res 5: 2–8
Kawai K, Hisada K, Mori S, Nozawa Y, Koyama K, Natori S (1991) The induction of mitochondrial swelling by chaetochromin A, a bis-naphthopyrone mycotoxin from Chaetomium gracile. Proc Jpn Assoc Mycotoxicol 33: 31–35
Mori S, Kawai K, Nozawa Y, Koyama K, Natori S. (1993) The impairing effects of chaetochromin D on mitochondrial respiration and structure. Myco Res 9: 4–13