Phân tách nhanh lactucin và lactucopicrin từ Cichorium glandulosum bằng sắc ký lỏng chuẩn bị áp suất trung bình và phân tích định lượng bằng sắc ký lớp mỏng hiệu năng cao

Akademiai Kiado Zrt. - Tập 35 - Trang 593-602 - 2022
Yewei Zhong1, Huiwen Tan1, Rui Zhang1, Adalaiti Abudurexiti1, Junlin Yan1, Xiaoli Ma1
1College of Pharmacy, Xinjiang Medical University, Urumqi, China

Tóm tắt

Sắc ký lỏng chuẩn bị áp suất trung bình (MPPLC) đã được sử dụng để tách biệt và chuẩn bị lactucin và lactucopicrin từ toàn bộ cây thảo Cichorium glandulosum. Sau khi chiết xuất dịch chiết methanol của toàn bộ cây bằng ete dầu mỏ và aceton ethyl nhiều lần để thu được dịch chiết aceton ethyl, các sản phẩm thô, cụ thể là lactucin và lactucopicrin đã được tách biệt bằng MPPLC và theo dõi sắc ký lớp mỏng (TLC), và tỷ lệ tinh khiết của chúng đạt hơn 80%. Phân tích định tính và định lượng lactucin và lactucopicrin đã được thực hiện bằng sắc ký lớp mỏng hiệu năng cao (HPTLC) trên toàn bộ cây của C. glandulosum. Nội dung của lactucin và lactucopicrin đã được xác định bằng cách quét ở 256 nm trong toàn bộ cây của C. glandulosum. Giá trị RF của lactucin và lactucopicrin lần lượt là 0.42 ± 0.05 và 0.65 ± 0.05 với khoảng tuyến tính lần lượt là 0.498–2.988 và 0.499–2.994 μg/band. Hệ số tương quan lần lượt là 0.9938 và 0.9946, cho thấy mối quan hệ tuyến tính tốt. Độ phục hồi trung bình lần lượt là 99.96% và 99.52%, và độ lệch chuẩn tương đối (RSD) lần lượt là 2.49% và 2.45%. Các sản phẩm thô, cụ thể là lactucin và lactucopicrin, có thể được tách biệt với độ tinh khiết cao từ toàn bộ cây thảo C. glandulosum bằng MPPLC. Nội dung lactucin và lactucopicrin trong C. glandulosum có thể được xác định một cách nhanh chóng và chính xác bằng HPTLC.

Từ khóa

#sắc ký lỏng #lactucin #lactucopicrin #Cichorium glandulosum #sắc ký lớp mỏng #phân tích định lượng

Tài liệu tham khảo

Wang R, Zheng G, Dang T et al (2021) Chemical constituents from the roots of Cichorium glandulosum Boiss. et Huet (Asteraceae). Biochem Syst Ecol 96:104261. https://doi.org/10.1016/j.bse.2021.104261 Tong J, Ma B, Ge L et al (2015) Dicaffeoylquinic acid-enriched fraction of Cichorium glandulosum seeds attenuates experimental type 1 diabetes via multipathway protection. J Agric Food Chem 63(50):10791–10802. https://doi.org/10.1021/acs.jafc.5b04552 Zhang Y, Xin XL, Ajiyakbayr A (2021) Purification of antidiabetes active compositions of Cichorium glandulolsum Boiss. et Huet by macroporous resin. Chin Trad Patent Med 34:2322–2325 Qin HY, Zhang T, Wang ZY et al (2019) The action and mechanism of ethanol extract of Cichorium glandulosum on type 2 diabetes mellitus accompanied with nonalcoholic fatty liver disease based on systems pharmacology. Acta Pharm Sin 54(11):2019–2030 Qin DM, Wang XB, Zou N et al (2019) Gas chromatography-mass spectrometry (GC-MS) analysis of the volatile oil of Cichorium glandulosum Boiss et Huet and its effects on carbon tetrachloride-induced liver fibrosis in rats. Med Sci Monit 25:3591–3604. https://doi.org/10.12659/MSM.913445 Li M, Ma J, Ahmad O et al (2018) Lipid-modulate activity of Cichorium glandulosum Boiss. et Huet polysaccharide in nonalcoholic fatty liver disease larval zebrafish model. J Pharmacol Sci 138(4):257–262. https://doi.org/10.1016/j.jphs.2018.09.012 Tong J, Yao X, Zeng H et al (2015) Hepatoprotective activity of flavonoids from Cichorium glandulosum seeds in vitro and in vivo carbon tetrachloride-induced hepatotoxicity. J Ethnopharmacol 174:355–363. https://doi.org/10.1016/j.jep.2015.08.045 Adaleti M, Zang W, Li X et al (2022) Anti-liver fibrosis activity in virto of Cichorium glandulosum seedand root compatibility. Central South Pharm 20(05):1077–1082 Ding L, Liu JL, Hassan W et al (2014) Lipid modulatory activities of Cichorium glandulosum Boiss. et Huet are mediated by multiple components within hepatocytes. Sci Rep. https://doi.org/10.1038/srep04715 Tong J, Mo QG, Ma BX et al (2017) The protective effects of Cichorium glandulosum seed and cynarin against cyclophosphamide and its metabolite acrolein-induced hepatotoxicity in vivo and in vitro. Food Funct 8(1):209–219. https://doi.org/10.1039/c6fo01531j Dang T, Zheng G, Zhang Q et al (2019) Sesquiterpenoids with diverse carbon skeletons from the roots of Cichorium glandulosum and their anti-inflammatory activities. Fitoterapia. https://doi.org/10.1016/j.fitote.2019.104170 Yang QL, Wang X, Ma XP et al (2016) Experimental study on the anti-inflammatory effect of Cichorium glandulosum Boiss. et Huet aqueous extracts. China Med Herald 13(24):27–30 Wang X, Liu M, Cai GH et al (2020) A potential nutraceutical candidate lactucin inhibits adipogenesis through downregulation of JAK2/STAT3 signaling pathway-mediated mitotic clonal expansion. Cells 9(2):331. https://doi.org/10.3390/cells9020331 Han C, Wu X, Zou N et al (2021) Cichorium pumilum Jacq extract inhibits LPS-induced inflammation via MAPK signaling pathway and protects rats from hepatic fibrosis caused by abnormalities in the gut-liver axis. Front Pharmacol. https://doi.org/10.3389/fphar.2021.683613 Oliya BK, Kim MY, Lee SH (2021) In vitro propagation, lactucin quantification, and antibacterial activity of Indian lettuce (Lactuca indica L.). In Vitro Cell Dev-Pl 58(3):361–371. https://doi.org/10.1007/s11627-021-10234-9 Jang JH, Park CY, Sung EG et al (2021) Lactucin induces apoptosis through reactive oxygen species-mediated BCL-2 and CFLAR(L) downregulation in Caki-1 cells. Genes Genomics 43(10):1199–1207. https://doi.org/10.1007/s13258-021-01142-8 Zhang FH, Yan YL, Wang Y et al (2016) Lactucin induces potent anti-cancer effects in HL-60 human leukemia cancer cells by inducing apoptosis and sub-G1 cell cycle arrest. Bangl J Pharmacol 11(2):478–484. https://doi.org/10.3329/bjp.v11i2.26729 Rotondo R, Oliva MA, Staffieri S et al (2020) Implication of lactucopicrin in autophagy, cell cycle arrest and oxidative stress to inhibit U87Mg glioblastoma cell growth. Molecules 25(24):5843. https://doi.org/10.3390/molecules25245843 Meng Q, Tang B, Qiu B (2019) Growth inhibition of Saos-2 osteosarcoma cells by lactucopicrin is mediated via inhibition of cell migration and invasion, sub-G1 cell cycle disruption, apoptosis induction and Raf signalling pathway. J BUON 24(5):2136–2140 Zhao CM, Cheng SH, Yang YF et al (2021) Isolation of four monomers of Stevia glycoside by medium pressure preparative chromatography. China Food Addit 32(12):89–96 Li DW, Wu YJ (2018) Separation and preparation of high-purity huperzine a by medium pressure preparative chromatography. Chin J Mod Appl Pharm 35(01):63–66 Wang Y, Liu H, Shen L et al (2015) Isolation and purification of six iridoid glycosides from gardenia jasminoides fruit by medium-pressure liquid chromatography combined with macroporous resin chromatography. J Sep Sci 38(23):4119–4126. https://doi.org/10.1002/jssc.201500705 Yang J, He Q, Ma XL et al (2020) Content determination of sesquiterpenoids of Cichorium glandulosum Boiss. et Huet. J Xinjiang Med Univ 43(01):25–27 Zainab T (2010) Preparation Studies of standard compounds of Cichorum glangulosum Boiss. et Huet and Studies Content of the Major Active Compositions, Dissertation, Xinjiang Medical University. Ge L, Li N, Hu YY et al (2021) Qualitative and quantitative analyses of quercetin and isorhamnetin in Hippophae rhamnoides L. fruits hydrolysis products by high-performance thin-layer chromatography. J Planar Chromatogr 34(4):315–322. https://doi.org/10.1007/s00764-021-00122-8 Pu YP, Li M, Xu F et al (2021) Determination of four kinds of hydroxynaphthoquinone ingredients in the root of Arnebiaeuchroma (Royle) Johnst. from different batches in Xinjiang Province by using high-performance thin-layer chromatography. J Planar Chromatogr 34(4):297–305. https://doi.org/10.1007/s00764-021-00119-3