Định lượng tình trạng xơ hóa và tế bào mast trong phản ứng mô của chất bịt ống nội nha được chiếu xạ bằng liệu pháp laser công suất thấp

Lasers in Medical Science - Tập 26 - Trang 741-747 - 2010
Fábio Luiz Camargo Villela Berbert1, Gustavo Sivieri-Araújo1, Lizeti Toledo Oliveira Ramalho2, Sanívia Aparecida Lima Pereira3, Denise Bertulucci Rocha Rodrigues3, Marcelo Sivieri de Araújo3
1Department of Restorative Dentistry, Discipline of Endodontics, Dental School of Araraquara, São Paulo State University-UNESP, Araraquara, Brazil
2Department of Morphology, Discipline of Histology, Dental School of Araraquara, São Paulo State University-UNESP, Araraquara, Brazil
3Department of Pathology, Dental School of University of Uberaba, Uberaba, Brazil

Tóm tắt

Liệu pháp laser công suất thấp (LLLT) tăng tốc độ phục hồi mô. Tế bào mast kích thích sự phát triển của nguyên bào sợi và sự xuất hiện của xơ hóa tại chỗ. Mục tiêu của nghiên cứu này là định lượng tỷ lệ xơ hóa và tế bào mast trong mô liên kết sau khi chất bịt ống nội nha oxit kẽm và eugenol (ZOE) được cấy ghép và chiếu xạ bằng LLLT, ngay sau khi cấy ghép và lại sau 24 giờ. Sáu mươi con chuột được phân chia thành ba nhóm: GI, GII và GIII (n = 20). Trong GI, các ống chứa Endofill được cấy ghép vào động vật và không được chiếu xạ bằng LLLT. Trong GII, các ống chứa Endofill được cấy ghép vào động vật và sau đó được chiếu xạ bằng LLLT đỏ (InGaAIP) với bước sóng 685-nm, D = 72 J/Cm2, E = 2 J, T = 58 giây, P = 35 mW, và trong GIII, các ống chứa Endofill được cấy ghép và chiếu xạ bằng LLLT hồng ngoại (AsGaAl) với bước sóng 830-nm, D = 70 J/Cm2, E = 2 J, T = 40 giây, P = 50 mW. Sau 7 ngày và 30 ngày, các động vật được hy sinh. Một loạt các mẫu cắt dày 6-µm được thu thập và nhuộm với Toluidine Blue và Picrosirius và được phân tích dưới kính hiển vi ánh sáng tiêu chuẩn bằng cách sử dụng bộ lọc ánh sáng phân cực để định lượng xơ hóa. Thống kê được thực hiện dưới hình thức định tính và định lượng với mức độ ý nghĩa 5%. Việc chiếu xạ bằng LLLT không cải thiện tỷ lệ xơ hóa, tuy nhiên, nó đã cung cấp sự giảm đi đáng kể trong nồng độ tế bào mast độc lập trong khoảng thời gian nghiên cứu.

Từ khóa

#li liệu pháp laser công suất thấp #tế bào mast #xơ hóa #chất bịt ống nội nha #mô liên kết

Tài liệu tham khảo

Basford JR (1995) Low-intensity laser therapy: still not an established clinical tool. Lasers Surg Med. doi:10.1002/lsm.1900160404 Enwemeka CS, Reddy K (2000) The biological effects of laser therapy and other physical modalities on connective tissue repair processes. Laser Ther 12:22–30 Reddy GK, Stehno-Bittel L, Enwemeka CS (1998) Laser photostimulation of collagen production in healing rabbit Achilles tendons. Lasers Surg Med. doi:10.1002/(SICI)1096-9101(1998)22:5<281::AID-LSM4>3.0.CO;2-L Reddy GK, Gum S, Stehno-Bittel L, Enwemeka CS (1998) Biochemistry and biomechanics of healing tendon: Part II. Effects of combined laser therapy and electrical stimulation. Med Sci Sports Exerc 30:794–800 Enwemeka CS, Conhen-Kornberg E, Duswalt EP, Weber DM, Rodriguez IM (1994) Biomechanical effects of three different periods of GaAs laser photostimulation on tenotomized tendons. Laser Ther 6:181–188 Salate ACB, Barbosa G, Gaspar P, Koeke PU, Parizotto NA, Benze BG, Foschiani D (2005) Effect of In-Ga-Al-P diode laser irradiation on angiogenesis in partial ruptures of Achilles tendon in rats. Photomed Laser Surg. doi:10.1089/pho.2005.23.470 Enwemeka CS (1992) Ultrastructural morphometry of membrane-bound intracytoplasmic collagen fibrils in tendon fibroblasts exposed to He-Ne laser beam. Tissue Cell. doi:10.1016/0040-8166(92)90067-H Omi T, Kawana S, Sato S, Honda M (2003) Ultrastructural changes elicited by a non-ablative wrinkle reduction laser. Lasers Surg Med. doi:10.1002/lsm.10119 Heissig B, Rafii S, Akiyama H et al (2005) Low-dose irradiation promotes tissue revascularization through VEGF release from mast cells and MMP-9-mediated progenitor cell mobilization. J Exp Med. doi:10.1084/jem.20050959 Mickel AK, Wright ER (1999) Growth inhibition of Streptococcus anginosus (milleri) by three calcium hydroxide sealers and one zinc oxide-eugenol sealer. J Endod. doi:10.1016/S0099-2399(99)80396-3 Hodosh AJ, Hodosh S, Hodosh M (1993) Potassium nitrate-zinc oxide eugenol temporary cement for provisional crowns to diminish postpreparation tooth pain. J Prosthet Dent 70:493–495 Spangberg L, Langeland K (1973) Biologic effect of dental materials. 1. Toxicity of root canal filling materials on HeLa cells in vitro. Oral Surg Oral Med Oral Pathol 35:402–414 Langeland K (1974) Root canal sealants and pastes. Dent Clin North Am 18:309–327 Lindquist L, Otteskog P (1980) Eugenol: liberation from dental materials and effect on human diploid fibroblast cells. Scand J Dent Res. doi:10.1111/j.1600-0722.1980.tb01266.x Hume WR (1984) Effect of eugenol on respiration and division in human pulp, mouse fibroblasts, and liver cells in vitro. J Dent Res. doi:10.1177/00220345840630110101 Hensten-Pettersen A, Helgeland K (1977) Evaluation of biologic effects of dental materials using four different cell culture techniques. Scand J Dent Res. doi:10.1111/j.1600-0722.1977.tb00565.x Leonardo MR, Silva LA, Almeida WA, Utrilla LS (1999) Tissue response to an epoxy resin-based root canal sealer. Endod Dent Traumatol. doi:10.1111/j.1600-9657.1999.tb00745.x Barkin ME, Boyd JP, Cohen S (1984) Acute allergic reaction to eugenol. Oral Surg Oral Med Oral Pathol 57:441–442 Garbuzenko E, Nagler A, Pickholtz D, Gillery P, Reich R, Maquart FX, Levi-Schaffer F (2002) Human mast cells stimulate fibroblast proliferation, collagen synthesis and lattice contraction: a direct role for mast cells skin fibrosis. Clin Exp Allergy. doi:10.1046/j.1365-2222.2002.01293.x Jordana M (1993) Mast cells and fibrosis-who’s on first? Am J Respir Cell Mol Biol 8:7–8 Jeong WL, Lee CS, Park SJ, Chung JY, Jeong KS (2002) Kinetics of macrophages, myofibroblasts and mast cells in carbon tetrachloride-induced rat liver cirrhosis. Anticancer Res 22:869–877 Pereira SAL, Santos VM, Rodrigues DBR, Cunha-Castro EC, Reis MA, Teixeira VPA (2007) Quantitative analysis of fibrosis and mast cells in the tongue of chronic chagasic patients: autopsy study. Med Mal Infect. doi:10.1016/j.medmal.2006.11.013 Barbosa SV, Araki K, Spangberg LS (1993) Cytotoxicity of some modified root canal sealers and their leachable components. Oral Surg Oral Med Oral Pathol 75:357–361 Leonardo MR, Utrilla LS, Rothier A, Leonardo RT, Consolaro A (1990) Comparison of subcutaneous connective tissue responses among three different formulations of Gutta-percha used in thermatic techniques. Int Endod J. doi:10.1111/j.1365-2591.1990.tb00102.x Yesilsoy C, Koren LZ, Morse DR, Kobayashi C (1988) A comparative tissue toxicity evaluation of established and newer root canal sealers. Oral Surg Oral Med Oral Pathol 65:459–467 Tanomaru-Filho M, Leonardo MR, Silva LAB, Utrilla LS (1998) Effect of different root canal sealers on periapical repair of teeth with chronic periradicular periodontitis. Int Endod J. doi:10.1046/j.1365-2591.1998.00134.x Ross G, Ross A (2008) Low-level lasers in dentistry. Gen Dent 56:629–634 Maier M, Haina D, Landthaler M (1990) Effect of low-energy laser on the growth and regeneration of capillaries. Lasers Med Sci. doi:10.1007/BF02032595 Miró L, Coupe M, Charras C, Jambon C, Chevalier JM (1984) Estudio capiloroscópico de la acción de un láser de AsGa sobre la microcirculación. Inv Clin Laser 1:9–14 Lievens PC (1991) The effect of i.r. laser irradiation on the vasomotricity of the lymphatic system. Laser Med Sci. doi:10.1007/BF02032547 Steinlechner CWB, Dyson M (1993) The effects of low-level laser therapy on the proliferation of keratinocytes. Laser Ther 5:65–73 Webb C, Dyson M, Lewis WHP (1998) Stimulatory effect on 660 nm low-level laser energy on hypertrophic scar-derived fibroblasts: possible mechanisms for increase in cell culture. Lasers Surg Med. doi:10.1002/(SICI)1096-9101(1998)22:5<294::AID-LSM6>3.0.CO;2-K Skinner SM, Gage JP, Wilce PA, Shaw RM (1996) A preliminary study of the effects of laser radiation on collagen metabolism in cell culture. Aust Dent J. doi:10.1111/j.1834-7819.1996.tb04854.x Torneck CD (1966) Reaction of rat connective tissue to polyethylene tube implants. Part I Oral Surg Oral Med Oral Pathol 21:379–387 Torneck CD (1967) Reaction of rat connective tissue to polyethylene tube implants. Part II Oral Surg Oral Med Oral Pathol 24:674–683 American Dental Association Council on Dental Materials and Devices of the American Dental Association (1972) Biologic effect of dental materials. J Am Dent Assoc 84:375–395 American National Standards Institute/American Dental Association (1982) Specification n°41° for recommended standard practices for biological evaluation of dental materials. ANSI/ADA, New York, 1982 International Organization For Standarization. Dentistry (1997) Preclinical evaluation of biocompatibility of medical devices used in dentistry. Test methods for dental materials: ISO/TR 7405-1997(E). ISO, Switzerland, 1997 Ellis DL (1996) Treatment of telangiectasia macularis eruptiva perstans with the 585-nm flashlamp-pumped dye laser. Dermatologic Surg 22:33–37 Rezzani R, Rodella LF, Tartaglia GM, Paganelli C, Sapelli P, Bianchi R (2004) Mast cell and the inflammatory response to different implanted biomaterials. Arch Histol Cytol. doi:10.1679/aohc.67.211 Rodella LF, Rezzani R, Buffoli B et al (2006) Role of mast cells in wound healing process after glass-fiber composite implant in rats. J Cell Mol Med. doi:10.1111/j.1582-4934.2006.tb00537.x