Sự sinh sản của virus viêm phổi truyền nhiễm ở bò (bovine herpes-1) trong các nền văn hóa tế bào nguyên thủy từ chuột

Veterinary Research Communications - Tập 10 - Trang 45-55 - 1986
A. Ghram1, H. Minocha1
1Department of Laboratory Medicine, Kansas State University, Manhattan, (USA)

Tóm tắt

Quá trình tổng hợp virus trong các nền văn hóa tế bào từ phổi và thận của chuột BALB/C bị nhiễm virus viêm phổi truyền nhiễm ở bò (IBR) bắt đầu từ 6 đến 8 giờ sau khi nhiễm virus và đạt đỉnh titer 5,5 log10 đơn vị hình đốm (PFU) ở 48 giờ sau khi nhiễm (PI). Hiệu ứng tế bào gây bệnh (CPE) trong các nền văn hóa tế bào xảy ra ở 8–10 giờ, với hơn 90% số tế bào bị CPE ở 48 đến 72 giờ PI. Hầu hết (60–80%) virus mới tổng hợp được liên kết với tế bào, điều này được xác định thông qua thử nghiệm đốm trên virus ngoại bào và nội bào. Các thí nghiệm pulse-chase đã chứng minh sự tích hợp của các tiền chất phóng xạ vào DNA và protein của virus. Synthesis DNA virus diễn ra từ 2 đến 4 giờ PI và đạt tối đa ở khoảng 4 đến 6 giờ. Các protein của virus được phát hiện ở 4 giờ và đạt đỉnh giữa 6 đến 8 giờ PI. Phương pháp thử nghiệm miễn dịch enzyme liên kết (ELISA) xác nhận sự tổng hợp của các protein virus đặc hiệu, tăng dần trong suốt chu kỳ phát triển của virus. Tóm tắt bằng tiếng Pháp được cung cấp ở cuối bài báo.

Từ khóa

#virus viêm phổi truyền nhiễm ở bò #sinh sản virus #tế bào nguyên thủy #chuột BALB/C #CPE #DNA virus #protein virus #ELISA

Tài liệu tham khảo

Chow, T.L., and Davis, R.W., 1964. The susceptibility of mule deer to Infectious Bovine Rhinotracheitis. Am. J. Vet. Res., 25: 518–519. Davies, D.H., and Carmichael, L.E., 1973. Role of cell-mediated immunity in the recovery of cattle from primary and recurrent infections with Infectious Bovine Rhinotracheitis virus. Infect. Immun. 8: 510–518. Derbyshire, J.B., and Caplan, B.A., 1976. The isolation and characterization of strain of IBR virus from stillbirth in swine. Can. J. Comp. Med., 40: 252–256. Edwards, S., Chasey, D., and White, H., 1983. Experimental Infectious Bovine Rhinotracheitis: Comparison of four antigen detection methods. Res. Vet. Sci., 34: 42–45. Garvey, J.S., Cremer, N.E., and Sussdorf, D.H., 1977. Methods in Immunology, 3rd Edition, W.A. Benjamin, Inc., p. 218–219. Geder, L., Lee, K.J., Dawson, M.S., Engle, R.B.A., Maliniak, R.M., and Lang, C.M., 1981. Induction of persistent infection in mice and oncogenic transformation of mouse macrophage with IBR virus. Am. J. Vet. Res., 42(2): 300–307. Geder, L., Lee, K.J., Dawson, M.S., Hyman, R.W., Maliniak, R.M., and Rapp, F., 1980. Properties of mouse embryofibroblasts transformed in vitro by IBR virus. J.N.C.I. 65: 441–445. Gibbs, E.P.J., and Rweyemamu, M.M., 1977. Bovine herpesviruses. Part I, Bovine herpesvirus I. Vet. Bull., 47(5): 317–343. House, J.A., 1972. Bovine herpesvirus IBR-IPV. Strain differences. Cornell Vet., 62: 431–453. Jasty, V., and Chang, P.W., 1969. Infectious Bovine Rhinotracheitis virus in bovine kidney cells: sequence of viral production, cellular changes, and localization of viral nucleic acid and protein. Am. J. Vet. Res., 30(8): 1325–1332. Kahrs, R.F., 1977. Infectious Bovine Rhinotracheitis: A review and update. JAVMA, 171(10): 1055–1064. Kaplan, A.S., and Vatter, A.E., 1959. A comparison of herpes simplex and pseudorabies viruses. Virology, 7: 394–408. Kelly, D.F., 1977. Experimental infection of rabbits with the virus of Infectious Bovine Rhinotracheitis. Br. J. Exp. Path., 58: 168–176. Lowry, O.H., Rosenbrough, N.J., Farr, A.L., and Randall, R.J., 1951. Protein measurement with folin phenol reagent. J. Biol. Chem., 193: 265–275. Lupton, H.W., Barnes, H.J., and Reed, D.E., 1980. Evaluation of the rabbit as a laboratory model for Infectious Bovine Rhinotracheitis virus infection. Cornell Vet., 70: 77–95. Madin, S.H., York, C.J., and McKercher, D.G., 1956. Isolation of Infectious Bovine Rhinotracheitis virus. Science, 124: 721–722. McKercher, D.G., 1959. Infectious Bovine Rhinotracheitis. Adv. Vet. Sci., 5: 299–328. McKercher, D.G., Saito, J.K., Wada, E.M., and Straub, O., 1958. Current status of the newer virus diseases of cattle. Proc. U.S. Livestock Sanit. Assn. 62, 136–158. Michalski, F. and Hsiung, G.D., 1975. Malignant transformation of hamster cells following infection with a bovine herpesvirus (Infectious Bovine Rhinotracheitis virus). Proc. Soc. Exp. Biol. Med., 148: 891–896. Michalski, F.J., Dietz, A., and Hsiung, G.D., 1976. Growth characteristics of bovine herpesvirus I (Infectious Bovine Rhinotracheitis) in human diploid cell strain WI-38. Proc. Soc. Exp. Biol. Med., 151: 407–410. Mills, K.W., Gerlach, E.H., Bell, J.W., Farkas, M.E., and Taylor, R.J., 1978. Serotyping Herpes Simplex Virus isolates by enzyme-linked immunosorbent assays. J. Clin. Microbiol., 7(1): 73–76. Mohanty, S.B., Lillie, M.G., Corselius, N.P., and Beck, J.D., 1972. Natural infection with Infectious Bovine Rhinotracheitis virus in goats. JAVMA, 160: 879–880. Nakane, P.K., and Kawaoi, A., 1974. Peroxidase-labeled antibody: a new method of conjugation. J. Histochem. Cytochem., 22: 1084–1091. Nelson, D.R., Maré, C.J., and Glock, R.D., 1972. Infectious Bovine Rhinotracheitis (herpesvirus bovis) infection in swine. Am. J. Vet. Res., 33: 1209–1215. Pastoret, P.P., Aguillar-Setién, A., Burtonboy, G., Mager, J., Jetteur, P., and Schoenaers, F., 1979. Effect of repeated treatment with dexamethasone on the re-excretion pattern of IBR virus and humoral immune response. Vet. Microbiol., 4: 149–155. Plummer, G., Goodheart, C.R., Henson, D., and Bowling, C.P., 1969. A comparative study of the DNA density and behavior in tissue cultures of 14 different herpesviruses. Virology, 39: 134–137. Porter, D.D., Larsen, A.E., and Cox, N.A., 1975. Isolation of Infectious Bovine Rhinotracheitis virus from mustelidae. J. Clin. Microb., 1: 112–113. Roizman, B., 1969. The herpesviruses: a biochemical definition of the group. Curr. Top. Microb. Immu., 49: 1–79. Smith, P.C., 1978. Experimental Infectious Bovine Rhinotracheitis of English ferrets (Mustaela putorius furo L.). J. Clin. Micro., 1: 112–113. Snowdon, W.A., 1965. The IBR-IPV virus: reaction to infection and intermittent recovery of virus from experimentally infected cattle. Aust. Vet. J., 41: 135–142. Stevens, J.G., and Groman, N.B., 1963. Properties of infectious bovine rhinotracheitis virus in a quantitated virus-cell culture system. Am. J. Vet. Res., 24: 1158–1163. Theil, K.W., Mohanty, S.B., and Hetrick, F.M., 1971. Intracellular localization and sequential development of Infectious Bovine Rhinotracheitis viral antigens. Am. J. Vet. Res., 32(12): 1955–1962.