Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Leptin và adiponectin sau bữa ăn ở người béo phì và người có trọng lượng bình thường khi tiếp xúc với đường và chất béo
Tóm tắt
Các adipokine được sản xuất bởi mô mỡ trắng đóng vai trò trung tâm trong sự phát triển của các bệnh liên quan đến lối sống. Những cá nhân ở các nước công nghiệp hóa dành một phần lớn cuộc đời trong trạng thái không nhịn ăn, sau bữa ăn, điều này liên quan đến sự gia tăng quá trình oxy hóa và viêm. Mục tiêu của nghiên cứu là kiểm tra nồng độ adiponectin và leptin sau bữa ăn sau khi thực hiện bài kiểm tra dung nạp chất béo qua đường miệng (OFTT) và bài kiểm tra dung nạp glucose qua đường miệng (OGTT) ở người béo phì (OB) và người có trọng lượng bình thường (NW). Nghiên cứu bao gồm 50 người trưởng thành mắc bệnh béo phì (BMI ≥ 30) và 17 người khỏe mạnh, có trọng lượng bình thường. Nồng độ triglyceride (TG), adiponectin và leptin sau bữa ăn được đo mỗi giờ một lần trong suốt 8 giờ OFTT, và mỗi nửa giờ trong 2 giờ OFTT. So với mức cơ bản, nồng độ adiponectin sau bữa ăn theo OFTT cho thấy một đỉnh nhẹ ban đầu, sau đó giảm đáng kể sau 8 giờ ở nhóm NW. Trong khi đó, ở nhóm OB, những thay đổi này bị triệt tiêu. Nồng độ leptin sau bữa ăn giảm đáng kể từ mức cơ bản trong OFTT ở nhóm NW, trong khi ở nhóm OB, leptin không thay đổi ngoài một sự gia tăng nhẹ từ 2 đến 8 giờ. Trong khi đó, trong OGTT, cả nồng độ adiponectin và leptin đều không thay đổi ở nhóm NW, nhưng giảm đáng kể ở nhóm OB. Ngoài ra, nhóm OB có sự làm sạch TG chậm hơn ở 6 giờ. Một bữa ăn có chứa chất béo gây ra những thay đổi sau bữa ăn về sự bài tiết của adiponectin và leptin ở NW, nhưng không ở OB. Những quan sát của chúng tôi chỉ ra rằng vai trò điều chỉnh sau bữa ăn tiềm năng của adiponectin và leptin bị suy giảm ở OB, và điều này có ý nghĩa trong việc hiểu biết tổng quát hơn về sự làm sạch TG chậm trễ sau bữa ăn ở những người béo phì.
Từ khóa
#adiponectin #leptin #béo phì #trọng lượng bình thường #dung nạp chất béo #dung nạp glucoseTài liệu tham khảo
H.B. Hubert, M. Feinleib, P.M. McNamara, W.P. Castelli, Obesity as an independent risk factor for cardiovascular disease: a 26-year follow-up of participants in the Framingham heart study. Circulation 67(5), 968–977 (1983)
S. Abu-Abid, A. Szold, J. Klausner, Obesity and cancer. J. Med. 33(1–4), 73–86 (2002)
R.S. Ahima, Adipose tissue as an endocrine organ. Obes. (Silver Spring) 14(Suppl 5), 242S–249S (2006). https://doi.org/10.1038/oby.2006.317
S. Lehr, S. Hartwig, H. Sell, Adipokines: a treasure trove for the discovery of biomarkers for metabolic disorders. Proteom. Clin. Appl. 6(1–2), 91–101 (2012). https://doi.org/10.1002/prca.201100052
J. Beltowski, Leptin and atherosclerosis. Atherosclerosis 189(1), 47–60 (2006). https://doi.org/10.1016/j.atherosclerosis.2006.03.003
T. Kadowaki, T. Yamauchi, N. Kubota, K. Hara, K. Ueki, K. Tobe, Adiponectin and adiponectin receptors in insulin resistance, diabetes, and the metabolic syndrome. J. Clin. Invest. 116(7), 1784–1792 (2006). https://doi.org/10.1172/JCI29126
A.T. Turer, P.E. Scherer, Adiponectin: mechanistic insights and clinical implications. Diabetologia 55(9), 2319–2326 (2012). https://doi.org/10.1007/s00125-012-2598-x
W.L. Holland, A.C. Adams, J.T. Brozinick, H.H. Bui, Y. Miyauchi, C.M. Kusminski, S.M. Bauer, M. Wade, E. Singhal, C.C. Cheng, K. Volk, M.S. Kuo, R. Gordillo, A. Kharitonenkov, P.E. Scherer, An FGF21-adiponectin-ceramide axis controls energy expenditure and insulin action in mice. Cell Metab. 17(5), 790–797 (2013). https://doi.org/10.1016/j.cmet.2013.03.019
C. Menzaghi, V. Trischitta, The adiponectin paradox for all-cause and cardiovascular mortality. Diabetes 67(1), 12–22 (2018). https://doi.org/10.2337/dbi17-0016
S.H. Choi, E.J. Ku, E.S. Hong, S. Lim, K.W. Kim, J.H. Moon, K.M. Kim, Y.J. Park, K.S. Park, H.C. Jang, High serum adiponectin concentration and low body mass index are significantly associated with increased all-cause and cardiovascular mortality in an elderly cohort, “adiponectin paradox”: the Korean longitudinal study on health and aging (KLoSHA). Int. J. Cardiol. 183, 91–97 (2015). https://doi.org/10.1016/j.ijcard.2015.01.057
J.R. Kizer, Adiponectin, cardiovascular disease, and mortality: parsing the dual prognostic implications of a complex adipokine. Metab.: Clin. Exp. 63(9), 1079–1083 (2014). https://doi.org/10.1016/j.metabol.2014.06.011
C. Boutari, N. Perakakis, C.S. Mantzoros, Association of adipokines with development and progression of nonalcoholic fatty liver disease. Endocrinol. Metab. (Seoul.) 33(1), 33–43 (2018). https://doi.org/10.3803/EnM.2018.33.1.33
S. Tonstad, J.P. Despres, Treatment of lipid disorders in obesity. Expert Rev. Cardiovasc. Ther. 9(8), 1069–1080 (2011). https://doi.org/10.1586/erc.11.83
P. Blackburn, B. Lamarche, C. Couillard, A. Pascot, A. Tremblay, J. Bergeron, I. Lemieux, J.P. Despres, Contribution of visceral adiposity to the exaggerated postprandial lipemia of men with impaired glucose tolerance. Diabetes Care 26(12), 3303–3309 (2003)
R.R. Emmons, C.E. Garber, C.M. Cirnigliaro, J.M. Moyer, S.C. Kirshblum, M.D. Galea, A.M. Spungen, W.A. Bauman, The influence of visceral fat on the postprandial lipemic response in men with paraplegia. J. Am. Coll. Nutr. 29(5), 476–481 (2010)
N. Mekki, M.A. Christofilis, M. Charbonnier, C. Atlan-Gepner, C. Defoort, C. Juhel, P. Borel, H. Portugal, A.M. Pauli, B. Vialettes, D. Lairon, Influence of obesity and body fat distribution on postprandial lipemia and triglyceride-rich lipoproteins in adult women. J. Clin. Endocrinol. Metab. 84(1), 184–191 (1999). https://doi.org/10.1210/jcem.84.1.5397
G. Vansant, A. Mertens, E. Muls, Determinants of postprandial lipemia in obese women. Int. J. Obes. Relat. Metab. Disord. J. Int. Assoc. Study Obes. 23(Suppl 1), 14–21 (1999)
S. Dagogo-Jack, C. Fanelli, D. Paramore, J. Brothers, M. Landt, Plasma leptin and insulin relationships in obese and nonobese humans. Diabetes 45(5), 695–698 (1996)
M. Bueno, S. Esteba-Castillo, R. Novell, O. Gimenez-Palop, R. Coronas, E. Gabau, R. Corripio, N. Baena, M. Vinas-Jornet, M. Guitart, D. Torrents-Rodas, J. Deus, J. Pujol, M. Rigla, A. Caixas, Lack of postprandial peak in brain-derived neurotrophic factor in adults with Prader–Willi syndrome. PLoS ONE 11(9), e0163468 (2016). https://doi.org/10.1371/journal.pone.0163468
M.P. Maziarz, S. Preisendanz, S. Juma, V. Imrhan, C. Prasad, P. Vijayagopal, Resistant starch lowers postprandial glucose and leptin in overweight adults consuming a moderate-to-high-fat diet: a randomized-controlled trial. Nutr. J. 16(1), 14 (2017). https://doi.org/10.1186/s12937-017-0235-8
E. Korek, H. Krauss, M. Gibas-Dorna, J. Kupsz, M. Piatek, J. Piatek, Fasting and postprandial levels of ghrelin, leptin and insulin in lean, obese and anorexic subjects. Prz. Gastroenterol. 8(6), 383–389 (2013). https://doi.org/10.5114/pg.2013.39922
P. Imbeault, E. Doucet, P. Mauriege, S. St-Pierre, C. Couillard, N. Almeras, J.P. Despres, A. Tremblay, Difference in leptin response to a high-fat meal between lean and obese men. Clin. Sci. (Lond.) 101(4), 359–365 (2001)
G. Musso, R. Gambino, M. Durazzo, G. Biroli, M. Carello, E. Faga, G. Pacini, F. De Michieli, L. Rabbione, A. Premoli, M. Cassader, G. Pagano, Adipokines in NASH: postprandial lipid metabolism as a link between adiponectin and liver disease. Hepatology 42(5), 1175–1183 (2005). https://doi.org/10.1002/hep.20896
A. Kennedy, J.P. Spiers, V. Crowley, E. Williams, F.E. Lithander, Postprandial adiponectin and gelatinase response to a high-fat versus an isoenergetic low-fat meal in lean, healthy men. Nutrition 31(6), 863–870 (2015). https://doi.org/10.1016/j.nut.2015.01.009
P.J. English, S.R. Coughlin, K. Hayden, I.A. Malik, J.P. Wilding, Plasma adiponectin increases postprandially in obese, but not in lean, subjects. Obes. Res. 11(7), 839–844 (2003). https://doi.org/10.1038/oby.2003.115
L.K. Phillips, J.M. Peake, X. Zhang, I.J. Hickman, D.R. Briskey, B.E. Huang, P. Simpson, S.H. Li, J.P. Whitehead, J.H. Martin, J.B. Prins, Postprandial total and HMW adiponectin following a high-fat meal in lean, obese and diabetic men. Eur. J. Clin. Nutr. 67(4), 377–384 (2013). https://doi.org/10.1038/ejcn.2013.49
P.W. Peake, A.D. Kriketos, G.S. Denyer, L.V. Campbell, J.A. Charlesworth, The postprandial response of adiponectin to a high-fat meal in normal and insulin-resistant subjects. Int. J. Obes. Relat. Metab. Disord. J. Int. Assoc. Study Obes. 27(6), 657–662 (2003). https://doi.org/10.1038/sj.ijo.0802289
A. Lozano, P. Perez-Martinez, C. Marin, F.J. Tinahones, J. Delgado-Lista, C. Cruz-Teno, P. Gomez-Luna, F. Rodriguez-Cantalejo, F. Perez-Jimenez, J. Lopez-Miranda, An acute intake of a walnut-enriched meal improves postprandial adiponectin response in healthy young adults. Nutr. Res. 33(12), 1012–1018 (2013). https://doi.org/10.1016/j.nutres.2013.08.010
T.D.S. Ferreira, V.P. Antunes, P.M. Leal, A.F. Sanjuliani, M. Klein, The influence of dietary and supplemental calcium on postprandial effects of a high-fat meal on lipaemia, glycaemia, C-reactive protein and adiponectin in obese women. Br. J. Nutr. 118(8), 607–615 (2017). https://doi.org/10.1017/S0007114517002525
M.A. Larsen, R. Goll, S. Lekahl, O.S. Moen, J. Florholmen, Delayed clearance of triglyceride-rich lipoproteins in young, healthy obese subjects. Clin. Obes. 5(6), 349–357 (2015). https://doi.org/10.1111/cob.12118
J.C. Cohen, Chylomicron triglyceride clearance: comparison of three assessment methods. Am. J. Clin. Nutr. 49(2), 306–313 (1989)
A. Esteghamati, H. Ashraf, O. Khalilzadeh, A. Zandieh, M. Nakhjavani, A. Rashidi, M. Haghazali, F. Asgari, Optimal cut-off of homeostasis model assessment of insulin resistance (HOMA-IR) for the diagnosis of metabolic syndrome: third national surveillance of risk factors of non-communicable diseases in Iran (SuRFNCD-2007). Nutr. Metab. 7, 26 (2010). https://doi.org/10.1186/1743-7075-7-26
P. Gayoso-Diz, A. Otero-Gonzalez, M.X. Rodriguez-Alvarez, F. Gude, F. Garcia, A. De Francisco, A.G. Quintela, Insulin resistance (HOMA-IR) cut-off values and the metabolic syndrome in a general adult population: effect of gender and age: EPIRCE cross-sectional study. BMC Endocr. Disord. 13, 47 (2013). https://doi.org/10.1186/1472-6823-13-47
P. Gayoso-Diz, A. Otero-Gonzalez, M.X. Rodriguez-Alvarez, F. Gude, C. Cadarso-Suarez, F. Garcia, A. De Francisco, Insulin resistance index (HOMA-IR) levels in a general adult population: curves percentile by gender and age. The EPIRCE study. Diabetes Res. Clin. Pract. 94(1), 146–155 (2011). https://doi.org/10.1016/j.diabres.2011.07.015
D.R. Matthews, J.P. Hosker, A.S. Rudenski, B.A. Naylor, D.F. Treacher, R.C. Turner, Homeostasis model assessment: insulin resistance and beta-cell function from fasting plasma glucose and insulin concentrations in man. Diabetologia 28(7), 412–419 (1985)
R.H. Lustig, S. Sen, J.E. Soberman, P.A. Velasquez-Mieyer, Obesity, leptin resistance, and the effects of insulin reduction. Int. J. Obes. Relat. Metab. Disord. J. Int. Assoc. Study Obes. 28(10), 1344–1348 (2004). https://doi.org/10.1038/sj.ijo.0802753
T. Yamauchi, J. Kamon, Y. Minokoshi, Y. Ito, H. Waki, S. Uchida, S. Yamashita, M. Noda, S. Kita, K. Ueki, K. Eto, Y. Akanuma, P. Froguel, F. Foufelle, P. Ferre, D. Carling, S. Kimura, R. Nagai, B.B. Kahn, T. Kadowaki, Adiponectin stimulates glucose utilization and fatty-acid oxidation by activating AMP-activated protein kinase. Nat. Med. 8(11), 1288–1295 (2002). https://doi.org/10.1038/nm788
J. Fruebis, T.S. Tsao, S. Javorschi, D. Ebbets-Reed, M.R. Erickson, F.T. Yen, B.E. Bihain, H.F. Lodish, Proteolytic cleavage product of 30-kDa adipocyte complement-related protein increases fatty acid oxidation in muscle and causes weight loss in mice. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 98(4), 2005–2010 (2001). https://doi.org/10.1073/pnas.041591798
Z.V. Wang, P.E. Scherer, Adiponectin, the past two decades. J. Mol. Cell Biol. 8(2), 93–100 (2016). https://doi.org/10.1093/jmcb/mjw011
X. Hui, T. Feng, Q. Liu, Y. Gao, A. Xu, The FGF21-adiponectin axis in controlling energy and vascular homeostasis. J. Mol. Cell Biol. 8(2), 110–119 (2016). https://doi.org/10.1093/jmcb/mjw013
A. Iroz, A. Montagner, F. Benhamed, F. Levavasseur, A. Polizzi, E. Anthony, M. Regnier, E. Fouche, C. Lukowicz, M. Cauzac, E. Tournier, M. Do-Cruzeiro, M. Daujat-Chavanieu, S. Gerbal-Chalouin, V. Fauveau, S. Marmier, A.F. Burnol, S. Guilmeau, Y. Lippi, J. Girard, W. Wahli, R. Dentin, H. Guillou, C. Postic, A specific ChREBP and PPARalpha cross-talk is required for the glucose-mediated FGF21 response. Cell Rep. 21(2), 403–416 (2017). https://doi.org/10.1016/j.celrep.2017.09.065
P. Singh, P. Sharma, K.R. Sahakyan, D.E. Davison, F.H. Sert-Kuniyoshi, A. Romero-Corral, J.M. Swain, M.D. Jensen, F. Lopez-Jimenez, T. Kara, V.K. Somers, Differential effects of leptin on adiponectin expression with weight gain versus obesity. Int J. Obes. (Lond.) 40(2), 266–274 (2016). https://doi.org/10.1038/ijo.2015.181
L. Woodward, I. Akoumianakis, C. Antoniades, Unravelling the adiponectin paradox: novel roles of adiponectin in the regulation of cardiovascular disease. Br. J. Pharm. 174(22), 4007–4020 (2017). https://doi.org/10.1111/bph.13619
S.D. Poppitt, F.E. Leahy, G.F. Keogh, Y. Wang, T.B. Mulvey, M. Stojkovic, Y.K. Chan, Y.S. Choong, B.H. McArdle, G.J. Cooper, Effect of high-fat meals and fatty acid saturation on postprandial levels of the hormones ghrelin and leptin in healthy men. Eur. J. Clin. Nutr. 60(1), 77–84 (2006). https://doi.org/10.1038/sj.ejcn.1602270
P.G. Cammisotto, M. Bendayan, Leptin secretion by white adipose tissue and gastric mucosa. Histol. Histopathol. 22(2), 199–210 (2007). https://doi.org/10.14670/HH-22.199
Y. Minokoshi, C. Toda, S. Okamoto, Regulatory role of leptin in glucose and lipid metabolism in skeletal muscle. Indian J. Endocrinol. Metab. 16(Suppl 3), S562–S568 (2012). https://doi.org/10.4103/2230-8210.105573
J.M. Rutkowski, J.H. Stern, P.E. Scherer, The cell biology of fat expansion. J. Cell Biol. 208(5), 501–512 (2015). https://doi.org/10.1083/jcb.201409063
A. Engin, Adiponectin-resistance in obesity. Adv. Exp. Med Biol. 960, 415–441 (2017). https://doi.org/10.1007/978-3-319-48382-5_18