Nghiên cứu trích ly polyphenol từ vỏ bưởi (Citrus Grandis Limonia Osbeck L.) có hỗ trợ sóng siêu âm

Engineering and Technology For Sustainable Development - Tập 31 Số 4 - Trang 32-37 - 2021
Quang Binh Hoang1, Thien Trung Le1,2, Thi Kim Nguyen Ngan3, Nguyen Hoang Thai Le1
1Faculty of Food Science and Technology, Nong Lam University, Ho Chi Minh City, Vietnam
2Fresh Soul Nong Lam Co., Ltd
3School of Biotechnology, International University, Ho Chi Minh City, Vietnam

Tóm tắt

Vỏ bưởi chiếm 50% khối lượng phụ phẩm của quá trình chế biến nước bưởi. Trong vỏ bưởi chứa nhiều phenolic acid, hợp chất có nhiều tác dụng tốt đối với sức khỏe con người. Việc chiết tách hợp chất này ra khỏi vỏ bưởi là điều cần thiết. Trong nghiên cứu này ảnh hưởng của nồng độ ethanol, tỷ lệ nguyên liệu dung môi và nhiệt độ trích ly đến hàm lượng polyphenol tổng số (TPC), hàm lượng naringin và hoạt tính chống oxy hóa (phương pháp DPPH) của dịch trích đã được đánh giá. Kết quả nghiên cứu cho thấy tất cả các yếu tố khảo sát đều có ảnh hưởng đến hàm lượng polyphenol tổng số, hàm lượng naringin và hoạt tính chống oxy hóa của dịch trích. Điều kiện trích ly với ethanol 80%, tỷ lệ nguyên liệu và dung môi là 1:25 (g/ml) tại nhiệt độ 60 °C và thời gian xử lý siêu âm là 7,5 phút cho dịch trích ly có hàm lượng polyphenol tổng số là 9,05 ± 0,08 mg GAE/g vck, hàm lượng naringin là 4,65 ± 0,08 mg NE/ g vck và hoạt tính chống oxy hóa là 4,76 ± 0,03 mg AAE/g vck. Ứng dụng siêu âm có hữu ích trong cải thiện hiệu quả trích ly các hợp chất axit phenolic từ vỏ bưởi.

Từ khóa

#Antioxidant capacity #naringin #pomelo peel #polyphenols #ultrasound-assisted extraction

Tài liệu tham khảo

K. Rezzadori, S. Benedetti, E. R. Amante, Proposals for

the residues recovery: Orange waste as raw material for

new products, Food and Bioproducts Processing,

Vol. 90, Issue 4, pp. 606-614, October 2012.

https://doi.org/10.1016/j.fbp.2012.06.002

F. Chen, N. Zhang, X. Ma, T. Huang, Y. Shao, C. Wu,

Q. Wang, Naringin alleviates diabetic kidney disease

through inhibiting oxidative stress and inflammatory

reaction, Plos One (11), 2015.

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0143868

J. O. Ezekwesili-Ofili, C. G. Ngozi, Comparative

effects of peel extract from Nigerian grown citrus on

body weight, liver weight and serum lipids in rats fed a

high-fat diet, African Journal of Biochemistry Research

Vol. 9, 110-116, 2015.

https://doi.org/10.5897/AJBR2015.0856

M. B. Pashazanousi, M. Raeesi, S. Shirali, Chemical

composition of the essential oil, antibacterial and

antioxidant activities, total phenolic and flavonoid

evaluation of various extracts from leaves and fruit

peels of citrus limon, Asian Journal of Chemistry

(10), pp. 4331-4334, 2012.

https://doi.org/10.1016/j.jfca.2006.01.003

B. K. Tiwari, B. Nigel P., S. B. Charles, Handbook of

plant food phytochemicals: sources, stability and

extraction, John Wiley & Sons, Ltd., Publisher: Wiley-Blackwell, 502, 2013.

https://doi.org/10.1002/9781118464717

Y. Q. Ma, J. C. Chen, D. H. Liu, X. Q. Ye, Effect of

ultrasonic treatment on the total phenolic and

antioxidant activity of extracts from citrus peel, Journal

of Food Science, Vol. 73, 115-120, 2008.

https://doi.org/10.1111/j.1750-3841.2008.00908.x

Y. Q. Ma, J. C. Chen, D. H. Liu, X. Q. Ye,

Simultaneous extraction of phenolic compounds of

citrus peel extracts: Effect of ultrasound, Ultrason

Sonochem, Vol. 16, 57-62, 2009.

https://doi.org/10.1016/j.ultsonch.2008.04.012

M. K. Khan, M. Abert-Vian, A. S. Fabiano-Tixier,

O. Dangles, F. Chemat, Ultrasound-assisted extraction

of polyphenols (flavanone glycosides) from orange

(Citrus sinensis L.) peel., Food Chemistry Vo.119, no.

, pp.851-858, 2010.

https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2009.08.046

E. Garcia-Castello, A. D. Rodriguez-Lopez, L. Mayor,

R. Ballesteros, C. Conidi, A. Cassano, Optimization of

conventional and ultrasound assisted extraction of

flavonoids from grapefruit (Citrus paradisi L.) solid

wastes, LWT-Food Science and Technology, Vol. 64,

no.2, pp.1114-1122, (2015).

https://doi.org/10.1016/j.lwt.2015.07.024

G. Beretta, P. Granata, M. Ferrero, M. Orioli, R. M.

Facino, Standardization of antioxidant properties of

honey by a combination of

spectrophotometric/fluorometric assays and

chemometrics, Analytical Chimica Acta, Vol. 533,

no. 2, pp. 180-191, (2005).

https://doi.org/10.1016/j.aca.2004.11.010

W. B. Davis, Determination of flavanones in citrus

fruits, Anal. Chem, Vol. 19, no. 7, pp. 476-478, 1947.

https://doi.org/10.1016/j.aca.2004.11.010

K. Thaipong, U. Boonprakob, K. Crosby, L. Cisneros-Zevallos, D. H. Byrne, Comparison of ABTS, DPPH, FRAP, and ORAC assays for estimating antioxidant activity from guava fruit extracts, Journal of Food Composition Analysis, Vol. 19, no. 6-7, pp. 669-675, Sept.- Nov. 2006.

https://doi.org/10.1016/j.jfca.2006.01.003

I. Y. Ningsih, S. Zulaikhah, M. A. Hidayat, B. Kuswandi, Antioxidant activity of various kenitu (Chrysophyllum cainito L.) leaves extracts from Jember, Indonesia, Agriculture and Agricultural Science Procedia, Vol. 9, pp. 378-385, 2016.

https://doi.org/10.1016/j.aaspro.2016.02.153

Q. D. Do, A. E. Angkawijaya, P. L. Tran-Nguyen, L. H. Huynh, F. E. Soetaredjo, S. Ismadji, Y. H. Ju , Effect of extraction solvent on total phenol content, total flavonoid content, and antioxidant activity of limnophila aromatica, Journal of Food and Drug Analysis, Vol. 22, no. 3, pp. 296-302, 2014.

https://doi.org/10.1016/j.jfda.2013.11.001

N. N. M. Phuong., T. T. Le, M. Q. Dang, J. Van Camp, K. Raes, Selection of extraction conditions of phenolic compounds from rambutan (Nephelium lappaceum L.) peel, Food and Bioproducts Processing. Vol. 122, pp. 222-229, July 2020.

https://doi.org/10.1016/j.fbp.2020.05.008

N. C. Predescu, C. Papuc, V. Nicorescu, I. U. L. I. A. N. A. Gajaila, G. V. Goran, C. D. Petcu, G. E. O. R. G. E. T. A. Stefan, The influence of solid-to-solvent ratio and extraction method on total phenolic content, flavonoid content and antioxidant properties of some ethanolic plant extracts, Rev. Chim, Vol. 67, pp. 1922-1927, 2016.

H. H. Zhang, S. Wang, Optimization of total polyphenols extraction from Vigna angularis and their antioxidant activities, Indian Journal of Pharmaceutical Sciences, Vol. 78(5), pp. 608-614, 2016.

https://doi.org/10.4172/pharmaceuticalsciences.1000159

P. W. Tan, C. P. Tan, C. W. Ho, Antioxidant properties., Effect of solid-to-solvent ratio on antioxidant compounds and capacities of Pegaga (Centella asiatica), International Food Research Journal, Vol. 18, pp. 553-558, 2011.

J. Shi, , J. Yu, J. Pohorly, C. Young, M. Bryan, Y. Wu, Optimization of the extraction of polyphenols from grape seed meal by aqueous ethanol solution, Food Agriculture & Environment, Vol.1, pp. 42-47, 2003.

K. K. Chew, M. Z. Khoo, S. Y. Ng, Y. Y. Thoo, M. Wan Aida, C. W. Ho, Effect of ethanol concentration, extraction time and extraction temperature on the recovery of phenolic compounds and antioxidant capacity of orthosiphon stamineus extracts, International Food Research Journal, Vol. 18(4), pp. 1427-1435, 2011.

A. Altemimi, R. Choudhary, D. G. Watson, D. A. Lightfoot, Effects of ultrasonic treatments on the polyphenol and antioxidant content of spinach extracts, Ultrasonics Sonochemistry, Vol. 24, pp. 247-255, 2015.

https://doi.org/10.1016/j.ultsonch.2014.10.023

H. V. Annegowda, R. Bhat, L. Min-Tze, A. A. Karim, S. M. Mansor, Influence of sonication treatments and extraction solvents on the phenolics and antioxidants in star fruits, Journal of Food Science and Technology, Vol. 49(4), pp. 510-514, 2012.

https://doi.org/10.1007/s13197-011-0435-8