Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Phân bón sinh học thế hệ mới và các chất kích thích sinh học mới: tài liệu và xác nhận cơ chế của vi khuẩn thúc đẩy sự phát triển thực vật nội sinh ở cây cà chua
Tóm tắt
Một nghiên cứu đã được thực hiện để xác định tính phù hợp của các vi sinh vật nội sinh như là những loại phân bón sinh học thế hệ tiếp theo và các chất kích thích sinh học mới. Enterobacter turicensis RCT5 và Stenotrophomonas maltophilia RCT31 thể hiện vùng hòa tan, phosphate, kali, silicate, và kẽm, sản xuất phytase. Trong số ba môi trường được sử dụng để hòa tan phosphate, môi trường rễ đã cho kết quả tốt nhất trong chưa đầy 24 giờ, trong khi các môi trường khác mất nhiều thời gian hơn để cho kết quả tương tự. Các chủng vi sinh vật đã thể hiện khả năng khác nhau trong việc sản xuất axit hữu cơ trong thử nghiệm đĩa và tám loại trong số này là những nhà sản xuất exopolysaccharide dồi dào. Chúng tôi đã có thể giải thích một phần cơ chế hòa tan các muối không hòa tan, bao gồm axit hữu cơ và hoạt động protein trong dịch lọc văn hóa không tế bào của các vi sinh vật nội sinh. Tất cả các vi sinh vật nội sinh nốt rễ đều cho thấy tiềm năng như là các chất kích thích sinh học mới và phân bón sinh học thế hệ tiếp theo như đã được tìm thấy trong thử nghiệm nảy mầm của cây cà chua, một loại cây không chủ sử dụng các phương pháp khác nhau. Điều này chứng minh rằng các vi sinh vật nội sinh có các cơ chế biểu hiện khác nhau của các đặc điểm thúc đẩy sự phát triển của thực vật cũng như có thể thúc đẩy sự phát triển của cây cà chua bất kể phương pháp nào được sử dụng.
Từ khóa
#vi khuẩn thúc đẩy sự phát triển thực vật nội sinh #phân bón sinh học thế hệ mới #chất kích thích sinh học #hòa tan phosphate #axit hữu cơ #sản xuất exopolysaccharides #cây cà chuaTài liệu tham khảo
Aeron A, Chauhan PS, Dubey RC, Maheshwari DK, Bajpai VK (2015) Root nodule bacteria from Clitoria ternatea L. are putative invasive non-rhizobial endophytes. Can J Microbiol 61(2):131–142
Aeron A, Maheshwari DK, Meena VS (2020a) Chemotactically active plant endophytic bacteria in the growth promotion of medicinal legume Clitoria ternatea L. Arch Microbial 202:1049–1058. https://doi.org/10.1007/s00203-020-01815-0
Aeron A, Dubey RC, Maheshwari DK (2020b) A plant growth promoting non-nodulating endophytic bacteria (Stenotrophomonas maltophilia) from root nodules of Mucuna utilis var. capitata L. (Safed Kaunch/Mucuna utilis var. capitata L.). Can J Microbiol 66(11):605–677. https://doi.org/10.1139/cjm-2020-0196
Ashraf M, Berge SH, Mahmood OT (2004) Inoculating wheat seedlings with exopolysaccharide producing bacteria restricts sodium uptake and stimulates plant growth under salt stress. Biol Fertil Soil 40:157–162
Beever RE, Burns DWJ (1980) Phosphorus uptake, storage and utilization by fungi. Adv Bot Res 8:127–219
Blaha D, Prigent-Combaret C, Sajjad MM, Moënne-Loccoz Y (2005) Phylogeny of the 1-aminocyclopropane-1-carboxylic acid deaminase-encoding gene acd S in phytobeneficial and pathogenic Proteobacteria and relation with strain biogeography. FEMS Microbiol Ecol 56:455–470
Compant S, Reiter B, Sessitsch A, Nowak J, Clement C, Barka EA (2005) Endophytic colonization of Vitis vinifera L. by plant growth-promoting bacterium Burkholderia spp. strain PsJN. Appl Environ Microbiol 71:1685–1693
Costa JM, Loper JE (1994) Characterization of siderophore production by the biological-control agent Enterobacter cloacae. Mol Plant Microb Interact 7:440–448
Gaur AC (1990) Phosphate solubilising microorganisms as biofertilizer. Omega Scientific Publications, New Delhi, p 176
Glick BR, Karaturovíc D, Newell P (1995) A novel procedure for rapid isolation of plant growth-promoting rhizobacteria. Can J Microbiol 41:533–536
Glick BR, Penrose DM, Li J (1998) A model for the lowering of plant ethylene concentrations by plant growth-promoting bacteria. J Theor Biol 190:63–68
Guo LD, Hyde KD, Liew ECY (2000) Identification of endophytic fungi from Livistona chinens is based on morphology and rDNAsequences. New Phytol 147:617–630
Halder AK, Chakrabartty PK (1993) Solubilization of inorganic phosphate by Rhizobium. Fol Microbiol 38:325–330
Jorquera MA, Hernández MT, Rengel Z, Marschner P, Mora ML (2008) Isolation of culturable phosphobacteria with both phytate mineralization and phosphate-solubilization activity from the rhizosphere of plants grown in a volcanic soil. Biol Fertil Soil 44:1025–1034
Li JH, Wang ET, Chen WF, Chen WX (2008) Genetic diversity and potential for promotion of plant growth detected in nodule endophytic bacteria of soybean grown in Heliongjiang province of China. Soil Biol Biochem 40:238–246
Lowry O, Rosebrough NJ, Far AL, Randall RJ (1951) Protein measurement with the kolin phenol reagent. J Biol Chem 193:235–275
Palaniappan P, Chauhan PS, Saravanan VS, Anandham R, Sa TM (2010) Isolation and characterization of plant growth-promoting endophytic bacterial isolates from root nodule of Lespedeza sp. Biol Fertil Soils 46:807–816
Rajendran G, Sing F, Desai AJ, Archana G (2008) Enhanced growth and nodulation of pigeon pea by co-inoculation of Bacillus strains with Rhizobium spp. Bioresour Technol 99:4544–4550
Reis DJFB, Da Silva LG, Reis VM, Dobereiner J (2000) Occurrence of diazotrophic bacteria in different sugar cane genotypes. Pes Agropecu Bra 35:985–994
Selvakumar G, Kundu S, Gupta AD, Shouche YS, Gupta HS (2007) Isolation and characterization of non-rhizobial plant growth promoting bacteria from nodules of Kudzu (Pueraria thunbergiana) and their effect on wheat seedling growth. Curr Microbiol 56(2):134–139
Sgroy V, Cassán F, Masciarelli O, Florencia Del Papa M, Lagares A, Luna V (2009) Isolation and characterization of endophytic plant growth-promoting (PGPB) or stress homeostasis-regulating (PSHB) bacteria associated to the halophyte Prosopis strombulifera. Appl Microbiol Biotechnol 85(2):371–381
Sturz AV, Christie BR, Matheson BG, Nowak J (1997) Biodiversity of endophytic bacteria which colonize red clover nodules, roots, stems and foliage and their influence on host growth. Biol Fertil Soil 25:13–19
Xiao B, Lian B, Shao W (2012) Do bacterial secreted proteins play a role in the weathering of potassium-bearing rock powder? Geomicrobiol J 29(6):497–505