Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Các tác dụng bảo vệ thần kinh của Moringa oleifera: Phương pháp xác định hợp chất hoạt động qua GC-MS trong mô hình đau thần kinh tiểu đường
Chinese Journal of Integrated Traditional and Western Medicine - Trang 1-10 - 2017
Tóm tắt
Khám phá các hoạt động phytotherapeutic của hạt Moringa oleifera (MO) đối với chứng đau thần kinh tiểu đường ở chuột thí nghiệm bị tiểu đường do alloxan. Phương pháp phân đoạn sinh học của MO sử dụng cromatography cột và được hỗ trợ bởi GC-MS được sử dụng để phát hiện thành phần hoạt động mạnh nhất của MO. Tăng cảm giác đau (hyperalgesia), thông qua thí nghiệm cắt đuôi và thời gian ngâm tay vào nước nóng, và nhạy cảm cơ học (mechanical-allodynia), bằng cách sử dụng filamen von-Frey, đã được đánh giá trước và sau 8 tuần tiêm alloxan qua đường phúc mạc (180 mg/kg). Nồng độ catalase và insulin trong huyết thanh, trọng lượng cơ thể và nồng độ glucose trong máu (BGL), độ ức chế alpha-glucosidase, peroxid hóa lipid và hemoglobin glycat (HbA1c) đã được đo để đánh giá cả bệnh tiểu đường do alloxan gây ra và chứng đau thần kinh tiểu đường (DPN). Beta-sitosterol (BSL) đã được chứng minh là hợp chất hoạt động mạnh nhất của MO. Việc sử dụng MO (40, 60 và 80 mg/kg) hoặc BSL (18, 25 và 35 mg/kg) đã làm giảm đáng kể hyperalgesia và đau nhạy cảm (P⩽0.05), so với tramadol (10 mg/kg) hoạt động như một nhóm đối chứng tích cực, ở những con vật được điều trị bằng alloxan (n=7 cho mỗi nhóm). Hơn nữa, MO và BSL đã cải thiện sự tiết insulin, catalase chống oxy hóa trong cơ thể, peroxid hóa lipid, nồng độ BGL cấp tính và bán cấp tính, và điều chỉnh mức alpha-glucosidase và HbA1c. Các tiềm năng gây tiết insulin, ức chế alpha-glucosidase, hạ glucose và chống oxy hóa quan sát được có thể chịu trách nhiệm cho cơ chế giảm đau và bảo vệ thần kinh của MO và BSL. MO và BSL đã thể hiện khả năng kiểm soát đường huyết tốt và những đặc tính bảo vệ thần kinh mạnh mẽ, điều này có thể tạo thành các hợp chất tiềm năng cho các phân tích tiếp theo.
Từ khóa
#Moringa oleifera #đau thần kinh tiểu đường #beta-sitosterol #hoạt chất sinh học #điều chế phytotherapeuticTài liệu tham khảo
Spadiene A, Savickiene N, Ivanauskas L, Jakstas V, Skesters A, Silova A, Rodovicius H. Antioxidant effects of Camellia sinensis L. extract in patients with type 2 diabetes. J Food Drug Analysis 2014;22:505–511.
WHO. Global guideline for type 2 diabetes. Diabetes Res Clin Pract 2014;104:1–52.
Elosta A, Ghous T, Ahmed N. Natural products as antiglycation agents: possible therapeutic potential for diabetic complications. Curr Diabetes Rev 2012;8:92–108.
Coskun O, Kanter M, Korkmaz A, Oter S. Quercetin, a fl avonoid antioxidant, prevents and protects streptozotocininduced oxidative stress and beta-cell damage in rat pancreas. Pharmacol Res 2005;51:117–123.
Boulton AJ, Vinik AI, Arezzo JC, Bril V, Feldman EL, Freeman R, et al. Diabetic neuropathies: a statement by the American Diabetes Association. Diabetes Care 2005;28:956–962.
Adam SH, Giribabu N, Kassim N, Kumar KE, Brahmayya M, Arya A, et al. Protective effect of aqueous seed extract of Vitis Vinifera against oxidative stress, infl ammation and apoptosis in the pancreas of adult male rats with diabetes mellitus. Biomed Pharmacother 2016;81:439–452.
Raafat KM, Jassar H, Aboul-Ela M, El-Lakany A. Protective effects of Origanum majorana L. against neurodegeneration: fingerprinting, isolation and in vivo glycine receptors behavioral model. Int J Phytomed 2013;5:46–57.
Casoli T, Spazzafumo L, Di Stefano G, Conti F. Role of diffuse low-level heteroplasmy of mitochondrial DNA in Alzheimer’s disease neurodegeneration. Front Aging Neurosci 2015;7:142.
Raafat K, Aboul-Ela M, El-Lakany A. Alloxan-induced diabetic thermal hyperalgesia, prophylaxis and phytotherapeutic effects of Rheum ribes L. in mouse model. Arch Pharm Res 2014:1–10.
Zhou J, Du X, Long M, Zhang Z, Zhou S, Zhou J, et al. Neuroprotective effect of berberine is mediated by MAPK signaling pathway in experimental diabetic neuropathy in rats. Eur J Pharmacol 2016;774:87–94.
da Costa AV, Calábria LK, Furtado FB, de Gouveia NM, Oliveira RJdS, de Oliveira VN, et al. Neuroprotective effects of Pouteria ramiflora (Mart.) Radlk (Sapotaceae) extract on the brains of rats with streptozotocin-induced diabetes. Metabol Brain Dis 2013;28:411–419.
Kandhare AD, Raygude KS, Ghosh P, Ghule AE, Bodhankar SL. Neuroprotective effect of naringin by modulation of endogenous biomarkers in streptozotocin induced painful diabetic neuropathy. Fitoterapia 2012;83:650–659.
Shanmugam KR, Mallikarjuna K, Kesireddy N, Sathyavelu Reddy K. Neuroprotective effect of ginger on anti-oxidant enzymes in streptozotocin-induced diabetic rats. Food Chem Toxicol 2011;49:893–897.
Zhu D, Wang L, Zhou Q, Yan S, Li Z, Sheng J, Zhang W. (+)-Catechin ameliorates diabetic nephropathy by trapping methylglyoxal in type 2 diabetic mice. Mol Nutr Food Res 2014;58:2249–2260.
Raafat K, Wurglics M, Schubert-Zsilavecz M. Prunella vulgaris L. active components and their hypoglycemic and antinociceptive effects in alloxan-induced diabetic mice. Biomed Pharmacother 2016;84:1008–1018.
Jaiswal D, Rai PK, Mehta S, Chatterji S, Shukla S, Rai DK, et al. Role of Moringa oleifera in regulation of diabetes-induced oxidative stress. Asian Pac J Trop Med 2013;6:426–432.
Chuang PH, Lee CW, Chou JY, Murugan M, Shieh BJ, Chen HM. Anti-fungal activity of crude extracts and essential oil of Moringa oleifera Lam. Bioresour Technol 2007;98:232–236.
Biswas S, Chowdhury A, Das J, Roy A, Zahid M. Pharmacological potentials of Moringa oleifera Lam.: a review. Int J Pharm Sci Res 2012;3:305–310.
Tie J, Jiang M, Li H, Zhang S, Zhang X. A comparison between Moringa oleifera seed presscake extract and polyaluminum chloride in the removal of direct black 19 from synthetic wastewater. Industr Crops Prod 2015;74:530–534.
Duong S, Strobel N, Buddhadasa S, Stockham K, Auldist M, Wales B, et al. Rapid measurement of phytosterols in fortified food using gas chromatography with flame ionization detection. Food Chem 2016;211:570–576.
Jimenez-Suarez V, Nieto-Camacho A, Jimenez-Estrada M, Alvarado Sanchez B. Anti-infl ammatory, free radical scavenging and alpha-glucosidase inhibitory activities of Hamelia patens and its chemical constituents. Pharm Biol 2016:1–9.
Pandey A, Negi PS. Traditional uses, phytochemistry and pharmacological properties of Neolamarckia cadamba: a review. J Ethnopharmacol 2016;181:118–135.
Saeidnia S, Ara L, Hajimehdipoor H, Read RW, Arshadi S, Nikan M. Chemical constituents of Swertia longifolia Boiss. with alpha-amylase inhibitory activity. Res Pharm Sci 2016;11:23–32.
Raafat K, Breitinger U, Mahran L, Ayoub N, Breitinger H-G. Synergistic inhibition of glycinergic transmission in vitro and in vivo by flavonoids and strychnine. Toxicol Sci 2010;118:171–182.
Kwon YI, Apostolidis E, Shetty K. In vitro studies of eggplant (Solanum melongena) phenolics as inhibitors of key enzymes relevant for type 2 diabetes and hypertension. Bioresour Technol 2008;99:2981–2988.
Sarmento B, Ribeiro A, Veiga F, Ferreira D. Development and validation of a rapid reversed-phase HPLC method for the determination of insulin from nanoparticulate systems. Biomed Chromatogr 2006;20:898–903.
Sullivan KA, Hayes JM, Wiggin TD, Backus C, Su Oh S, Lentz SI, et al. Mouse models of diabetic neuropathy. Neurobiol Dis 2007;28:276–285.
Ulugol A, Oltulu C, Gunduz O, Citak C, Carrara R, Shaqaqi MR, et al. 5-HT7 receptor activation attenuates thermal hyperalgesia in streptozocin-induced diabetic mice. Pharmacol Biochem Behav 2012;102:344–348.
Fox A, Gentry C, Patel S, Kesingland A, Bevan S. Comparative activity of the anti-convulsants oxcarbazepine, carbamazepine, lamotrigine and gabapentin in a model of neuropathic pain in the rat and guinea-pig. Pain 2003;105:355–362.
Yasmineh WG, Kaur TP, Blazar BR, Theologides A. Serum catalase as marker of graft-vs-host disease in allogeneic bone marrow transplant recipients: pilot study. Clin Chem 1995;41:1574–1580.
Ohkawa H, Ohishi N, Yagi K. Assay for lipid peroxides in animal tissues by thiobarbituric acid reaction. Anal Biochem 1979;95:351–358.
Raafat K, El-Lakany A. Acute and subchronic in-vivo effects of Ferula hermonis L. and Sambucus nigra L. and their potential active isolates in a diabetic mouse model of neuropathic pain. BMC Complement Altern Med 2015;15:257.
Chandiran IS, Jayaveera KN, Karimulla S. Preliminary phytochemical and preclinical toxicity studies of Grewia serrulata DC. Drug Invent Today 2013;5:267–274.
Diallo A, Eklu-Gadegbeku K, Amegbor K, Agbonon A, Aklikokou K, Creppy E, et al. In vivo and in vitro toxicological evaluation of the hydroalcoholic leaf extract of Ageratum conyzoides L. (Asteraceae). J Ethnopharmacol 2014;155:1214–1218.
World Health Organization. WHO guidelines for assessing quality of herbal medicines with reference to contaminants and residues. Geneva: World Health Organization; 2007.
da Silva AR, Moreira Lda R, Brum Eda S, de Freitas ML, Boligon AA, Athayde ML, et al. Biochemical and hematological effects of acute and sub-acute administration to ethyl acetate fraction from the stem bark Scutia buxifolia Reissek in mice. J Ethnopharmacol 2014;153:908–916.
Obrosova IG. Diabetic painful and insensate neuropathy: pathogenesis and potential treatments. Neurotherapeutics 2009;6:638–647.
Abo KA, Fred-Jaiyesimi AA, Jaiyesimi AE. Ethnobotanical studies of medicinal plants used in the management of diabetes mellitus in South Western Nigeria. J Ethnopharmacol 2008;115:67–71.
Shim YJ, Doo HK, Ahn SY, Kim YS, Seong JK, Park IS, et al. Inhibitory effect of aqueous extract from the gall of Rhus chinensis on alpha-glucosidase activity and postprandial blood glucose. J Ethnopharmacol 2003;85:283–287.
Ranilla LG, Kwon YI, Apostolidis E, Shetty K. Phenolic compounds, antioxidant activity and in vitro inhibitory potential against key enzymes relevant for hyperglycemia and hypertension of commonly used medicinal plants, herbs and spices in Latin America. Bioresour Technol 2010;101:4676–4689.
Torrance GW. Utility approach to measuring health-related quality of life. J Chronic Dis 1987;40:593–603.
Gore M, Brandenburg NA, Dukes E, Hoffman DL, Tai KS, Stacey B. Pain sev. Pain sev. Pain sev. Pain severity in diabetic peripheral neuropathy is associated with patient functioning, symptom levels of anxiety and depression, and sleep. J Pain Symptom Manage 2005;30:374–385.
Wolford ST, Schroer RA, Gohs FX, Gallo PP, Brodeck M, Falk HB, Ruhren R. Referenc. Referenc. Referenc. Reference range data base for serum chemistry and hematology values in laboratory animals. J Toxicol Environ Health 1986;18:161–188.
