Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Sản xuất nitric oxide tại mũi và phế quản và ảnh hưởng của nó đến việc cung cấp oxy ở ngựa trong quá trình gây mê tĩnh mạch hoàn toàn
Tóm tắt
Nghiên cứu hiện tại nhằm mục đích điều tra tác động của việc nội khí quản đối với nồng độ NO nội sinh ở mũi và khí quản, trao đổi khí và oxy hóa ở ngựa trải qua quá trình gây mê tổng quát. Ở nhiều loài, một phần lớn sản xuất nitric oxide (NO) sinh lý xảy ra ở vùng mũi họng. NO hít vào hoạt động như một chất giãn mạch phổi và điều chỉnh quá trình tưới máu phổi, trong khi nội khí quản bỏ qua vùng mũi họng. Sáu con ngựa được phân bổ ngẫu nhiên vào hai nhóm điều trị là “đã nội khí quản” (INT) hoặc “chưa nội khí quản” (nINT). Ngựa được tiền mê bằng dexmedetomidine (5 μg/kg IV). Gây mê được thực hiện bằng 2.5 mg/kg ketamine và 0.05 mg/kg diazepam IV, và duy trì bằng cách truyền ba thuốc (100 mg/kg/h guaifenesin, 4 mg/kg/h ketamine, 7 μg/kg/h dexmedetomidine). Những con ngựa đã thở tự nhiên không khí xung quanh. Nhịp tim, lưu lượng tim, huyết áp động mạch, huyết áp động mạch phổi và tỷ lệ hô hấp được ghi lại trong suốt 100 phút gây mê. Mẫu máu động mạch, tĩnh mạch và máu tĩnh mạch hỗn hợp được lấy mỗi 10 phút và phân tích để xác định áp suất riêng phần của oxy (PO2) và carbon dioxide (PCO2), độ bão hòa oxy và hàm lượng hemoglobin. Các chỉ số oxy hóa chuẩn được tính toán. Nồng độ NO nội sinh tại mũi và khí quản được xác định bằng phương pháp hóa phát quang. Các biến số tim mạch, tỷ lệ hô hấp, PO2, PCO2, độ bão hòa oxy, hàm lượng hemoglobin, CaO2, O2ER, P(a-ET)CO2 và Qs/Qt không có sự khác biệt đáng kể giữa hai nhóm điều trị. P(A-a)O2 cao hơn có ý nghĩa thống kê ở nhóm INT (6.1 ± 0.3 kPa) so với nhóm nINT (4.9 ± 0.1 kPa) (p = 0.045). Nồng độ NO nội sinh tại mũi (8.0 ± 6.2 ppb) và khí quản (13.0 ± 6.3 ppb) có sự khác biệt đáng kể ở nhóm INT (p = 0.036), nhưng không ở nhóm nINT (mũi: 16.9 ± 9.0 ppb; khí quản: 18.5 ± 9.5 ppb) (p = 0.215). Việc nội khí quản làm giảm nồng độ NO nội sinh tại mũi và khí quản. Tác động lên quá trình trao đổi khí phổi và oxy hóa là rất nhỏ ở ngựa thở không khí xung quanh.
Từ khóa
#nitric oxide #nội khí quản #ngựa #gây mê tổng quát #trao đổi khí #oxy hóaTài liệu tham khảo
Dugdale AHA, Obhrai J, Cripps PJ. Twenty years later: a single-centre, repeat retrospective analysis of equine perioperative mortality and investigation of recovery quality. Vet Anaesth Analg. 2016;43:171–8.
Hubbell JAE, Muir WW. Oxygenation, oxygen delivery and anaesthesia in the horse. Equine Vet J. 2015;47:25–35.
McGoldrick TME, Bowen IM, Clarke KW. Sudden cardiac arrest in an anaesthetised horse associated with low venous oxygen tensions. Vet Rec. 1998;142:610–11.
McKay JS, Kelly DF, Senior M, Jones RS, Forest TW, De Lahunta A, et al. Postanaesthetic cerebral necrosis in five horses. Vet Rec. 2002;150:70–4.
Serteyn D, Pincemail J, Deby C, Philippart C, Lamy M. Equine postanesthetic mypositis: an ischaemic reperfusion phenomenon. J Vet Anaesth. 1991;18:319–22.
Costa-Farré C, Prades M, Ribera T, Valero O, Taurà P. Does intraoperative low arterial partial pressure of oxygen increase the risk of surgical site infection following emergency exploratory laparotomy in horses? Vet J. 2014;200:175–80.
Nyman G, Funquist B, Kvart C, Frostell C, Tokics L, Strandberg A, et al. Atelectasis causes gas exchange impairment in the anaesthetised horse. Equine Vet J. 1990;22:317–24.
Nyman G, Hedenstierna G. Ventilation-perfusion relationships in the anaesthetised horse. Equine Vet J. 1989;21:274–81.
Day TK, Gaynor JS, Muir WW, Bednarski RM, Mason DE. Blood gas values during intermittent positive pressure ventilation and spontaneous ventilation in 160 anesthetized horses positioned in lateral or dorsal recumbency. Vet Surg. 1995;24:266–76.
Robertson SA, Bailey JE. Aerosolized salbutamol (albuterol) improves PaO2 in hypoxaemic anaesthetized horses – a prospective clinical trial in 81 horses. Vet Anaesth Analg. 2002;29:212–18.
Wiklund M, Kellgren M, Wulcan S, Grubb T, Nyman G. Effects of pulsed inhaled nitric oxide on arterial oxygenation during mechanical ventilation in anaesthetised horses undergoing elective arthroscopy or emergency colic surgery. Equine Vet J. 2020;52:76–82.
Ignarro LJ, Buga GM, Wood KS, Byrns RE, Chaudhuri G. Endothelium-derived relaxing factor produced and released from artery and vein is nitric oxide. Proc Natl Acad Sci. 1987;84:9265–69.
Palmer RMJ, Ferrige AG, Moncada S. Nitric oxide release accounts for the biological activity of endothelium-derived relaxing factor. Nature. 1987;327:524–6.
Grubb TL, Högman M, Edner A, Frendin JHM, Heinonen E, Malavasi LM, et al. Physiologic responses and plasma endothelin-1 concentrations associated with abrupt cessation of nitric oxide inhalation in isoflurane-anesthetized horses. Am J Vet Res. 2008;69:423–30.
Grubb TL, Edner A, Frendin JHM, Funkquist P, Rydén A, Nyman GC. Oxygenation and plasma endothelin-1 concentrations in healthy horses recovering from isoflurane anaesthesia administered with or without pulse-delivered inhaled nitric oxide. Vet Anaesth Analg. 2013;40:9–18.
Gustafsson LE, Leone AM, Persson MG, Wiklund NP, Moncada S. Endogenous nitric oxide is present in the exhaled air of rabbits, guinea pigs and humans. Biochem Biophys Res Commun. 1991;181:852–7.
Schedin U. Endogenous nitric oxide in the upper airways of different animal species. Acta Anaesthesiol Scand. 1997;41:161–62.
Gerlach H, Rossaint R, Pappert D, Knorr M, Falke KJ. Autoinhalation of nitric oxide after endogenous synthesis in nasopharynx. Lancet. 1994;343:518–19.
Schedin U, Norman M, Gustafsson LE, Herin P, Frostell C. Endogenous nitric oxide in the upper Airways of Healthy Newborn Infants. Pediatr Res. 1996;40:148–51.
Jorres RA. Modelling the production of nitric oxide within the human airways. Eur Respir J. 2000;16:555–60.
Persson MG, Wiklund NP, Gustafsson LE. Endogenous nitric oxide in single exhalations and the change during exercise. Am Rev Respir Dis. 1993;148:1210–14.
Djupesland PG, Chatkin JM, Qian W, Cole P, Zamel N, McClean P, et al. Aerodynamic influences on nasal nitric oxide output measurements. Acta Otolaryngol. 1999;119:479–85.
Haight JSJ, Djupesland PG, Qjan W, Chatkin JM, Furlott H, Irish J, et al. Does nasal nitric oxide come from the sinuses? J Otolaryngol. 1999;28:197–204.
Mills PC, Marlin DJ, Scott CM, Smith NC. Nitric oxide and exercise in the horse. J Physiol. 1996;495:863–74.
Hubbell JAE, Aarnes TK, Lerche P, Bednarski RM. Evaluation of a midazolam-ketamine-xylazine infusion for total intravenous anesthesia in horses. Am J Vet Res. 2012;73:470–75.
Hopster K, Müller C, Hopster-Iversen C, Stahl J, Rohn K, Kästner S. Effects of dexmedetomidine and xylazine on cardiovascular function during total intravenous anaesthesia with midazolam and ketamine and recovery quality and duration in horses. Vet Anaesth Analg. 2014;41:25–35.
Shirai M, Tsuchimochi H, Nagai H, Gray E, Pearson JT, Sonobe T, et al. Pulmonary vascular tone is dependent on the central modulation of sympathetic nerve activity following chronic intermittent hypoxia. Basic Res Cardiol. 2014;109:432.
Haskins SC. Monitoring Anesthetized Patients. In: Grimm KA, Lamont LA, Tranquilli WJ, Greene SA, Robertson SA, editors. Veterinary anesthesia and analgesia: the fifth edition of Lumb and Jones. John Wiley & Sons, Inc.; 2015. p. 86–113.
Haymerle A, Knauer F, Walzer C. Two methods to adapt the human haemoglobin–oxygen dissociation algorithm to the blood of white rhinoceros (Ceratotherium simum) and to determine the accuracy of pulse oximetry. Vet Anaesth Analg. 2016;43:566–70.
Siggaard-Andersen O, Wimberley PD, Fogh-Andersen N, Gøthgen IH. Measured and derived quantities with modern ph and blood gas equipment: calculation algorithms with 54 equations. Scand J Clin Lab Invest. 1988;48:7–15.
Hedenstierna G, Nyman G, Kvart C, Funkquist B. Ventilation-perfusion relationships in the standing horse: an inert gas elimination study. Equine Vet J. 1987;19:514–19.
Benumof JL, Wahrenbrock EA. Local effects of anesthetics on regional hypoxic pulmonary vasoconstriction. Anesthesiology. 1975;43:525–32.
Ambrisko TD, Kabes R, Moens Y. Influence of drugs on the response characteristics of the LiDCO sensor: an in vitro study †. Br J Anaesth. 2013;110:305–10.
Hopster K, Ambrisko TD, Stahl J, Schramel JP, Kästner SBR. Influence of xylazine on the function of the LiDCO sensor in isoflurane anaesthetized horses. Vet Anaesth Analg. 2015;42:142–49.
Clark-Price SC, Posner LP, Gleed RD. Recovery of horses from general anesthesia in a darkened or illuminated recovery stall. Vet Anaesth Analg. 2008;35:473–79.
Schwarzwald CC, Bonagura JD, Muir WW, The Cardiovascular System. In: Muir WW, JAE H, editors. Equine Anesthesia - Monitoring and Emergency Therapy: 2. St. Louis: Saunders Elsevier; 2009. p. 37–100.
Linton RA, Young LE, Marlin DJ, Blissitt KJ, Brearley JC, Jonas MM, et al. Cardiac output measured by lithium dilution, thermodilution, and transesophageal doppler echocardiography in anesthetized horses. Am J Vet Res. 2000;61:731–37.
Berggren SM. The oxygen deficit of arterial blood caused by non-ventilated parts of the lung. Acta Physiol Scand. 1942;4:1–92.