Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Những thay đổi ở niêm mạc do tổn thương ischemia-reperfusion trong một đoạn ruột jejunum được cấy ghép vào hầu họng
Tóm tắt
Các mô tiếp xúc với tình trạng thiếu máu và tái tưới máu phát triển phản ứng viêm. Chúng tôi đã điều tra những thay đổi hình thái và miễn dịch xảy ra trong niêm mạc của một đoạn ruột jejunum được cấy ghép vào hầu họng của một bệnh nhân trải qua phẫu thuật cắt hầu thanh quản vòng. Các mẫu sinh thiết ruột jejunum được thu thập trong quá trình cấy ghép (thiếu máu quy lạnh và ấm, tái tưới máu), trong 7 ngày sau phẫu thuật thông qua một đoạn jejunum được đưa ra ngoài để theo dõi vạt, và 45 ngày sau cấy ghép thông qua nội soi trên. Sự gia tăng của matrix metalloproteinase (MMP)-3 và MMP-12 đi kèm với sự gia tăng song song của các tế bào biểu mô ruột chết theo chương trình, và sự giảm đồng thời của tỷ lệ diện tích bề mặt trên thể tích và chiều cao của tế bào biểu mô ruột. Tăng sản tế bào nhầy được liên kết với sự biến mất của tế bào Paneth tại đáy của các hố tuyến. Các lymphocyte trong biểu mô CD8 dương tính ban đầu giảm, sau đó lại tăng lên tương ứng với đỉnh điểm của quá trình tế bào biểu mô ruột chết theo chương trình. Chúng tôi đã xác định được những thay đổi trong sự xâm nhập của lymphocyte, cấu trúc niêm mạc và tái tạo tế bào biểu mô, điều này có thể mở ra một cái nhìn về cơ chế thiếu máu-tái tưới máu ở ruột non ở người.
Từ khóa
#thiếu máu #tái tưới máu #niêm mạc #ruột jejunum #phẫu thuật #tổn thương mạng lưới #tế bào biểu mô #lymphocyteTài liệu tham khảo
Mazariegos GV (2009) Intestinal transplantation: current outcomes and opportunities. Curr Opin Organ Transplant 14:515–521
Pirenne J, Kawai M (2009) Intestinal transplantation: evolution in immunosuppression protocols. Curr Opin Organ Transplant 14:250–255
Bines JE (2009) Intestinal failure: a new era in clinical management. J Gastroenterol Hepatol 24:S86–S92
Mallick IH, Yang W, Winslet MC et al (2004) Ischemia–reperfusion injury of the intestine and protective strategies against injury. Dig Dis Sci 49:1359–1377
Boros P, Bromberg JS (2006) New cellular and molecular immune pathways in ischemia/reperfusion injury. Am J Transplant 6:652–658
Carden DL, Granger DN et al (2000) Pathophysiology of ischaemia–reperfusion injury. J Pathol 190:255–266
Gourdin MJ, Bree B, De Kock M (2009) The impact of ischaemia–reperfusion on the blood vessel. Eur J Anaesthesiol 26:537–547
Ikeda H et al (1998) Apoptosis is a major mode of cell death caused by ischaemia and ischaemia/reperfusion injury to the rat intestinal epithelium. Gut 42:530–537
Morini S, Elias G, Brown M et al (2010) Chronic morpho-functional damage as a consequence of transient ischemia/reperfusion injury of the small bowel. Histol Histopathol 25:277–286
Chen Y, Lui VC, Rooijen NV et al (2004) Depletion of intestinal resident macrophages prevents ischaemia reperfusion injury in gut. Gut 53:1772–1780
Osman M, Russell J, Granger DN (2009) Lymphocyte-derived interferon-gamma mediates ischemia–reperfusion-induced leukocyte and platelet adhesion in intestinal microcirculation. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol 296:G659–G663
Giovanoli P, Frey M, Schmid S et al (1996) Free jejunum transfer for functional reconstruction after tumour resection in the oral cavity and the pharynx: changes in morphology and function. Microsurgery 17:535–544
Patel RS, Goldstein DP, Brown et al (2010) Circumferential pharyngeal reconstruction: history, critical analysis of techniques, and current therapeutic recommendations. Head Neck 32:109–120
Katsaros J, Banis JC, Acland RD et al (1985) Monitoring free vascularised jejunum grafts. Br J Plast Surg 38:220–222
Benazzo M, Occhini A, Rossi V et al (2002) Jejunum free flap in hypopharynx reconstruction: case series. BMC Cancer 10:2–13
Dunnill MS, Whitehead R (1972) A method for the quantitation of small intestinal biopsy specimens. J Clin Pathol 25:243–246
Corazza GR, Frazzoni M, Dixon MF et al (1985) Quantitative assessment of the mucosal architecture of jejunal biopsy specimens: a comparison between linear measurement, stereology, and computer aided microscopy. J Clin Pathol 38:765–770
Di Sabatino A, Miceli E, Dhaliwal W et al (2008) Distribution, proliferation and function of Paneth cells in uncomplicated and complicated adult celiac disease. Am J Clin Pathol 130:34–42
Di Sabatino A, Pender SL, Jackson CL et al (2007) Functional modulation of Crohn’s disease myofibroblasts by anti-TNF antibodies. Gastroenterology 133:137–149
Müller AR, Langrehr JM, Nalesnik M et al (1994) Mucosal glutaminase activity and histology as parameters of small bowel preservation injury. J Surg Res 56:207–215
Takeyoshi I, Zhang S, Nomoto M et al (2001) Mucosal damage and recovery of the intestine after prolonged preservation and transplantation in dogs. Transplantation 71:1–7
Grant D, Abu-Elmagd K, Reyes J et al (2005) Intestine transplant registry. 2003 report of the intestine transplant registry: a new era has dawned. Ann Surg 241:607–613
Mueller AR, Platz KP, Heckert C et al (1998) The extracellular matrix: an early target of preservation/reperfusion injury and acute rejection after small bowel transplantation. Transplantation 65:770–776
Robinson EK, Kelly DP, Mercer DW et al (2008) Differential effects of luminal arginine and glutamine on metalloproteinase production in the postischemic gut. JPEN J Parenter Enteral Nutr 32:433–438
Mueller AR, Nalesnik MA, Langrehr JM et al (1993) Evidence that small bowel preservation causes primarily basement membrane and endothelial rather than epithelial cell injury. Transplantation 56:1499–1504
Pender SL, MacDonald TT (2004) Matrix metalloproteinases and the gut—new roles for old enzymes. Curr Opin Pharmacol 4:546–550
Heuschkel RB, MacDonald TT, Monteleone G et al (2000) Imbalance of stromelysin-1 and TIMP-1 in the mucosal lesions of children with inflammatory bowel disease. Gut 47:57–62
Gordon JN, Pickard KM, Di Sabatino A et al (2008) Matrix metalloproteinase-3 production by gut IgG plasma cells in chronic inflammatory bowel disease. Inflamm Bowel Dis 14:195–203
Pender SL, Li CK, Di Sabatino A et al (2006) Role of macrophage metalloelastase in gut inflammation. Ann N Y Acad Sci 1072:386–388
Ciccocioppo R, Di Sabatino A, Parroni R et al (2001) Increased enterocyte apoptosis and Fas/FasL system in celiac disease. Am J Clin Pathol 115:494–503
Keren DF, Elliott HL, Brown GD et al (1975) Atrophy of villi with hypertrophy and hyperplasia of Paneth cells in isolated (Thiry-Vella) ileal loops in rabbit. Gastroenterology 68:83–93
Ikeda H, Yang CL, Tong J et al (2002) Rat small intestinal goblet cell kinetics in the process of restitution of surface epithelium subjected to ischemia–reperfusion injury. Dig Dis Sci 47:590–601
Ali R, Farrell T (2009) Thermotolerance-induced goblet cell activity confers protection in post-operative gut barrier dysfunction. Int J Surg 7:237–242
Schenk M, Mueller C (2008) The mucosal immune system at the gastrointestinal barrier. Best Pract Res Clin Gastroenterol 22:391–409
Creamer B, Pink IJ (1967) Paneth-cell deficiency. Lancet 1:304–306
Linfert D, Chowdhry T, Rabb H (2009) Lymphocytes and ischemia–reperfusion injury. Transplant Rev 23:1–10
Puglisi RN, Strande L, Santos M et al (1996) The effect of cyclosporine in gut ischemic injury: a computerized morphometric and enzymatic analysis. J Pediatr Surg 31:319–322
Soda Y, el-Assal ON, Yu L (1999) Suppressed endothelin-1 production by FK506 and cyclosporin A in ischemia/reperfusion of rat small intestine. Surgery 125:23–32
Fukatsu K, Sakamoto S, Hara E et al (2006) Gut ischemia–reperfusion affects gut mucosal immunity: a possible mechanism for infectious complications after severe surgical insults. Crit Care Med 34:182–187
Di Sabatino A, Ciccocioppo R, D'Alò S et al (2001) Intraepithelial and lamina propria lymphocytes show distinct patterns of apoptosis, whereas both the populations are active in Fas-based cytotoxicity in coeliac disease. Gut 49:380–386
Ciccocioppo R, D'Alò S, Di Sabatino A et al (2002) Mechanisms of villous atrophy in autoimmune enteropathy and coeliac disease. Clin Exp Immunol 128:88–93