Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Hình thái và tổng hợp lactose trong văn hóa mô của các thùy vú lấy từ chuột mang sữa
Tóm tắt
Các tế bào biểu mô tuyến vú từ những con chuột mang sữa tổng hợp và tiết ra lactose trong môi trường nuôi cấy và giữ lại nhiều đặc điểm của hình thái in vivo nếu các tuyến vú chỉ được phân tách một phần thành các thùy, thay vì hoàn toàn tách thành từng tế bào đơn lẻ. Sau 5 ngày nuôi cấy, sự tổng hợp lactose bởi các thùy nuôi trên gel collagen nổi cao gấp 10 đến 20 lần so với các nuôi cấy tế bào đơn trên gel collagen nổi. Hơn nữa, các thùy vú trong nuôi cấy vẫn giữ được độ nhạy với các hormone tạo sữa; sự tổng hợp lactose bởi các thùy phụ thuộc vào sự tồn tại liên tục của insulin và hoặc hydrocortisone hoặc prolactin. Ngoài ra, bên trong các thùy, sự tiếp xúc ban đầu của các tế bào biểu mô thành phần vẫn được giữ lại, và các tế bào có hình dạng lập phương với nhiều vi nhung mao và các giọt mỡ. Ngược lại, các thùy trên các gel gắn kết bị phẳng hóa và mất đi hình thái bài tiết. Những kết quả này chỉ ra rằng hình dạng của các tế bào, sự hiện diện của hormone tạo sữa, và sự duy trì các tiếp xúc giữa các tế bào biểu mô:biểu mô là cần thiết cho việc duy trì sự phân hóa của các tế bào biểu mô tuyến vú trong nuôi cấy.
Từ khóa
#biểu mô tuyến vú #tổng hợp lactose #hormone tạo sữa #nuôi cấy tế bào #hình thái tế bàoTài liệu tham khảo
Emerman, J. T.; Burwen, S. J.; Pitelka, D. R. Substrate properties influencing ultrastructural differentiation of mammary epithelial cells in culture. Tissue Cell 11: 109–119; 1979.
Burwen, S. J.; Pitelka, D. R. Secretory function of lactating mouse mammary epithelial cells cultured on collagen gels. Exp. Cell. Res. 126: 249–262; 1980.
Emerman, J. T.; Bartley, J. C.; Bissell, M. J. Glucose metabolite patterns as markers of functional differentiation in freshly isolated and cultured mouse mammary epithelial cells. Exp. Cell Res. 134: 241–250; 1981.
Forsyth, I. A.; Hayden, T. J. Comparative endocrinology of mammary growth and lactation. Symp. Zool. Soc. London 41: 135–163; 1977.
Guyette, W. A.; Matusik, R. J.; Rosen, J. M. Prolactin-mediated transcriptional and post-transcriptional control of casein gene expression. Cell 17: 1013–1023; 1979.
Ono, M.; Oka, T. The differential actions of cortisol on the accumulation of alpha-lactalbumin and casein in midpregnant mouse mammary gland in culture. Cell 19: 473–480; 1980.
Palmiter, R. D. Hormonal induction and regulation of lactose synthetase in mouse mammary gland. Biochem. J. 113: 409–417; 1969.
Rivera, E. M. Hormonal control of cellular events during lactogenesis: Some unresolved problems. Jasminovich, J. ed. Lactogenic hormones, fetal nutrition, and lactation. New York: John Wiley and Sons, Inc.; 1974: 279–295.
Topper, Y. J. Multiple hormone interactions in the development of mammary gland in vitro. Recent Prog. Horm. Res. 26: 287–308; 1970.
Ganguly, R.; Ganguly, N.; Mehta, N. M.; Banerjee, M. R. Absolute requirement of glucocorticoid for expression of the casein gene in the presence of prolactin. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 77: 6003–6006; 1980.
Ganguly, R.; Mehta, N. M.; Ganguly, N.; Banerjee, M. R. Glucocorticoid modulation of casein gene transcription in mouse mammary gland. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 76: 6466–6470; 1979.
Kraehenbuhl, J. P. Dispersed mammary gland epithelial cells. I. Isolation and separation procedures. J. Cell Biol. 72: 390–405; 1977.
Carrington, C. A.; Hosick, H. L.; Forsyth, I. A.; Dils, R. R. Novel multi-alveolar mammary epithelial structures which synthesize milk-specific fatty acids in response to prolactin. In Vitro 17: 363–368; 1981.
Puck, T. T.; Cierciura, S. J.; Robinson, A. Genetics of somatic mammalian cells. III. Long term cultivation of euploid cells from human and animal subjects. J. Exp. Med. 108: 945–956; 1958.
Wetzel, B.; Erickson, B. W.; Levis, W. R. The need for positive identification of leukocytes examined by scanning electron microscopy. Johari, O.; Corvin, I. eds. Scanning electron microscopy. Chicago: ITT Research Institute; 1973: 536–541.
Humphreys, W. J.; Spurlock, B. O.; Johnson, J. S. Critical point drying of ethanol infiltrated, cryofractured biological specimens for scanning electron microscopy. Johani, O.; Corvin, J. eds. Scanning electron microscopy. Chicago: IIT Research Institute; 1973: 276–282.
Foster, R. C. Lactose synthesis and secretion by mammary epithelial cells in vitro, a comparative study. Comp. Biochem. Physiol. 61A: 253–259; 1978.
Whistler, R. L.; Durso, D. F. Chromatographic separation of sugars on charcoal. J. Am. Chem. Soc. 72: 677–680; 1950.
Coffey, R. G.; Reithel, F. J. An enzymic determination of lactose. Anal. Biochem. 32: 229–232; 1969.
Hinegardner, R. T. An improved fluorometric assay for DNA. Anal. Biochem. 39: 197–201; 1971.
Bennett, D. C.; Armstrong, B. L.; Okada, S. M. Reconstitution of branching tubules from two cloned mammary cell types in culture. Dev. Biol. 87: 193–199; 1981.
Bennett, D. C. Morphogenesis of branching tubules in cultures of cloned mammary epithelial cells. Nature 285: 657–659; 1980.
Nemanic, M. K.; Pitelka, D. R. A scanning electron microscope study of the lactating mammary gland. J. Cell Biol. 48: 410–415; 1971.
Pitelka, D. R.; Hamamoto, S. T.; Duafala, J. G.; Nemanic, M. K. Cell contacts in the mouse mammary gland. I. Normal gland in postnatal development and the secretory cycle. J. Cell Biol. 56: 797–818; 1973.
Ono, M.; Perry, J. W.; Oka, T. Concentration dependent differential effects of cortisone on synthesis ofα-lactalbumin and of casein in cultured mouse mammary gland explants: Importance of prolactin concentration. In Vitro 17: 121–128; 1981.
Sakai, S.; Enami, J.; Nandi, S.; Banerjee, M. R. Prolactin receptor on dissociated mammary epithelial cells at different stages of development. Mol. Cell. Endocrinol. 12: 285–298; 1978.
Nicholas, K. R.; Topper, Y. J. Enhancement of alpha-lactalbumin-like activity in mammary explants from pregnant rats in the absence of exogenous prolactin. Biochem. Biophys. Res. Commun. 94: 1424–1431; 1980.
Palmiter, R. D.; Mulvihill, E. R.; Shephard, J. H.; McKnight, G. S. Steroid hormone regulation of ovalbumin and conalbumin gene transcription. J. Biol. Chem. 256: 7910–7916; 1981.
Emerman, J. T.; Enami, J.; Pitelka, D. R.; Nandi, S. Hormonal effects on intracellular and secreted casein in cultures of mouse mammary epithelial cells on floating collagen membranes. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 74: 4466–4470; 1977.