Đặc điểm hình thái và phân tử của melanoma tổ chức trong người cao tuổi (melanoma lentiginous phát triển)

Ilaria Pennacchia1, Simone Garcovich2, Rita Gasbarra3, Alvaro Leone3, Vincenzo Arena1, Guido Massi1
1Department of Pathology, Catholic University Medical School, Rome, Italy
2Department of Dermatology, Catholic University Medical School, Rome, Italy
3Department of Pathology, Forlanini Hospital, Rome, Italy

Tóm tắt

Chúng tôi đã xác định một nhóm tổn thương sắc tố có mô hình kiến trúc rất giống với một u sắc tố giao điểm: các tế bào chủ yếu được nhóm lại thành các tổn thương rõ ràng, có kích thước và hình dạng tương tự nhau, và phân bố đều dọc theo giao điểm giữa thượng bì và chân bì. Trái ngược với những đặc điểm giống u sắc tố này, các khối u này thể hiện thêm những chi tiết không tương thích với chẩn đoán u sắc tố giao điểm. Những điều này bao gồm các khu vực phân bố lentiginous với sự lan rộng pagetoid tại chỗ của các tế bào sắc tố vượt qua giao điểm; sự bất thường tế bào rõ rệt, chẳng hạn như phì đại nhân, sự tối màu quá mức, dày màng nhân và với độ đa hình tế bào nhẹ. Hơn nữa, các tổn thương này chủ yếu phát triển trên làn da bị tổn thương nặng do ánh nắng của những bệnh nhân lớn tuổi. Sử dụng thử nghiệm lai phân tử huỳnh quang in situ (FISH) với bốn đầu dò nhắm vào RREB1, MYB, Cep6 và CCND1, chúng tôi đã phát hiện rằng bảy trong số tám trường hợp chính cho thấy những bất thường nhiễm sắc thể phù hợp với tiêu chí chẩn đoán FISH tiêu chuẩn hóa cho melanoma. Trái lại, năm u sắc tố giao điểm được sử dụng làm đối chứng đều cho kết quả âm tính trong bài kiểm tra này. Những phát hiện này nhấn mạnh tính hữu ích của việc tương quan các quan sát lâm sàng – bệnh lý với phân tích FISH để chẩn đoán đúng các khối u ác tính này, mà gần giống với một u sắc tố giao điểm.

Từ khóa

#melanoma #u sắc tố giao điểm #tổn thương sắc tố #phân tích FISH #bệnh lý da liễu

Tài liệu tham khảo

Zembowicz A, McCusker M, Chiarelli C et al (2001) Morphological analysis of nevoid melanoma, a study of 20 cases with a review of the literature. Am J Dermatopathol 23:167–175 Schmoeckel C, Castro CE, Braun-Falco O (1985) Nevoid malignant melanoma. Arch Dermatol Res 277:362–369 McNutt NS, Urmacher C, Halamian J et al (1985) Naevoid malignant melanoma: morphologic patterns and immunohistochemical reactivity. J Cutan Pathol 22:502–517 Blessing K, Evans AT, Al-Nafuss A (1983) Verrucous naevoid and keratotic melanoma: a clinicopathological study of 20 cases. Histopathology 23:455–458 Kossard S, Wilkinson B (1997) Small cell (naevoid) melanoma. A clinicopathologic study of 131 cases. Australas J Dermatol 38(Suppl):S54–S58 Kossard S, Wilkinson B (1995) Nucleolar organiser regions and image analysis nuclear morphometry of small cell naevoid melanoma. J Cutan Pathol 23:132–136 Blessing K, Grant JJH, Sanders DSA et al (2000) Small cell malignant melanoma, a variant of naevoid melanoma: clinicopathological features and histological differential diagnosis. J Clin Pathol 53:591–595 King R, Page RN, Googe PB et al (2005) Lentiginous melanoma: a histologic pattern of melanoma to be distinguished from lentiginous nevus. Mod Pathol 18:1397–1401 Kossard S (2002) Atypical lentiginous junctional naevi of the elderly and melanoma. Australas J Dermatol 43:93–101 Kossard S, Commens C, Symons M et al (1991) Lentinginous dysplastic naevi in the elderly: a potential precursor for malignant melanoma. Australas J Dermatol 32:27–37 Newman MD, Mirzabeigi M, Gerami P (2009) Chromosomal copy number changes supporting the classification of lentiginous junctional melanoma of the elderly as a subtype of melanoma. Mod Pathol 22:1258–1262 Gerami P, Mafee M, Lurtsbarapa T et al (2010) Sensitivity of fluorescence in situ hybridization for melanoma diagnosis using RREB1, MYB, Cep6, and 11q13 probes in melanomas. Arch Dermatol 146(3):273–278 Gaiser T, Kutzner H, Palmedo G et al (2010) Classifying ambiguous melanocytic lesions with FISH and correlation with clinical long-term follow-up. Mod Pathol 23:413–419 Gerami P, Zembowicz A (2011) Update on fluorescence in situ hybridization in melanoma. State of the Art. Arch Pathol Lab Med 135:830–837 Kim JC, Murphy GF (2000) Dysplastic melanocytic nevi and prognostically indeterminate nevomelanomatoid proliferations. Clin Lab Med 20:691–712 Sagebiel RW (1985) Histopathology of precursor melanocytic lesions. Am J Surg Pathol 9(Suppl):41–52 Skender-Kalnenas TM, English DR, Heenan PJ (1995) Benign melanocytic lesions: risk markers or precursors of cutaneous melanoma? J Am Acad Dermatol 33:1000–1007 Gerami P, Beilfuss B, Haghighat Z et al (2011) Fluorescence in situ hybridization as an ancillary method for the distinction of desmoplastic melanomas from sclerosing melanocytic nevi. J Cutan Pathol 38:329–334 Gammon B, Beilfuss B, Guitart J et al (2011) Fluorescence in situ hybridization for distinguishing cellular blue nevi from blue nevus-like melanoma. J Cutan Pathol 38:335–341 Pouryazdanparast P, Haghighat Z, Beilfuss BA et al (2011) Melanocytic nevi with an atypical epithelioid cell component: clinical, histopathologic, and fluorescence in situ hybridization findings. Am J Surg Pathol 35:1405–1412