Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Điều biến nhiễm virus ở thực vật bằng guanosine ngoại sinh
Tóm tắt
Để đánh giá vai trò của purine trong các phương pháp điều trị virus ở thực vật, ribavirin (RB) và tiazofurin (TZ) đã được áp dụng kết hợp với guanosine (GS) hoặc adenosine (AS) trên các mẫu mô thực vật nho hoặc thuốc lá nhiễm virus liên quan đến cuốn lá nho 3 (GLRaV-3) và virus đậu cucurbit (CMV), tương ứng. Sử dụng kỹ thuật điện hóa vi mô (vận chuyển electron xuyên màng plasma, t-PMET), kiểm nghiệm in vivo của nicotinamide adenine dinucleotide (NADH) tự do cũng đã được thực hiện để ước lượng sự ức chế enzym inosine monophosphate dehydrogenase do thuốc gây ra. Hiệu quả kháng virus của TZ, được đánh giá bằng mẫu mô không virus hoặc số lượng virus, đã bị GS cản trở một cách đáng kể ở cả hai loài, trong khi AS không gây cản trở đối với các thuốc này. GS, nhưng không phải AS, đã làm giảm nhẹ hiệu quả kháng virus của RB. Liên quan đến các thử nghiệm NADH, sự ức chế t-PMET do RB và TZ gây ra là phụ thuộc vào liều lượng và sự can thiệp của các thuốc vào quá trình chuyển đổi NAD+/NADH đã được xác nhận bởi hàm lượng NADH. Các phát hiện chỉ ra rằng GS ngoại sinh lên đến 0.50 mM đã bổ sung nguồn GS bị cạn kiệt bởi thuốc, thể hiện tác động kháng virus trái ngược. Ở các liều lượng cao hơn của GS, tác động kháng virus của TZ đã hoàn toàn bị ức chế và GS ngoại sinh đã gây ra một phản hồi làm giảm hoạt động t-PMET. Sự đảo ngược này chỉ xảy ra một phần với RB, gợi ý rằng việc giảm nguồn GS đã góp phần vào hoạt động kháng virus của RB, nhưng nó không phải là nguyên nhân duy nhất của hiệu quả kháng virus.
Từ khóa
#virus #thực vật #ribavirin #tiazofurin #guanosine #adenosine #kháng virusTài liệu tham khảo
Allison AC, Eugui EM (2000) Mycophenolate mofetil and its mechanisms of action. Immunopharmacology 47:85–118
Bertolini E, Olmos A, López MM, Cambra M (2003) Multiplex nested reverse transcription-polymerase chain reaction in a single tube for sensitive and simultaneous detection of four RNA viruses and Pseudomonas savastanoi pv. savastanoi in olive trees. Phytopathology 93:286–292
Cabaleiro C, Couceiro C, Pereira S, Cid M, Barrasa M, Segura A (2008) Spatial analysis of epidemics of Grapevine leafroll associated virus-3. Eur J Plant Pathol 121:121–130
Del Principe D, Avigliano L, Savini I, Catani MV (2011) Trans-plasma membrane electron transport in mammals: functional significance in health and disease. Antioxid Redox Sign 14:2289–2318
Feng JL, Che SN, Tang XS, Ding XF, Du ZY, Chen JS (2006) Quantitative determination of cucumber mosaic virus genome RNAs in virions by real-time reverse transcription-polymerase chain reaction. Acta Bioch Bioph Sin 38:669–676
Franchetti P, Capellacci L, Grifantini M (1996) IMP dehydrogenase as a target of antitumor and antiviral chemotherapy. Il Farmaco 51:457–469
Glesne DA, Collart FR, Huberman E (1991) Regulation of IMP dehydrogenase gene expression by its end products, guanine nucleotides. Mol Cell Biol 11:5417–5425
Guazzelli L, D’Andrea F, Giorgelli F, Catelani G, Panattoni A, Luvisi A (2015) Synthesis of PAMAM dendrimers loaded with mycophenolic acid to be studied as new potential immunosuppressants. J Chem 2015. doi:10.1155/2015/263072
Guta IC, Buciumeanu EC, Gheorghe RN, Teodorescu A (2010) Solutions to eliminate grapevine leafroll associated virus serotype 1 + 3 from V. vinifera L. cv. Ranai Magaraci. Rom Biotech Lett 15:72–78
Luvisi A, Rinaldelli E, Panattoni A, Triolo E (2012) Membrane transport of antiviral drugs in plants: an electrophysiological study in grapevine explants infected by Grapevine leafroll associated virus 1. Acta Physiol Plant 34:2115–2123
MacKenzie DJ, McLean MA, Mukerji S, Green M (1997) Improved RNA extraction from woody plants for the detection of viral pathogens by reverse transcription-polymerase chain Reaction. Plant Dis 81:222–226
Markland W, McQuaid TJ, Jain J, Kwong AD (2000) Broadspectrum antiviral activity of the IMP dehydrogenase inhibitor VX-497: a comparison with ribavirin and demonstration of antiviral additivity with alpha interferon. Antimicrob Agents Chemother 44:859–866
Mitsuhashi S, Takenaka J, Iwamori K, Nakajima N, Ubukat M (2010) Structure–activity relationships for inhibition of inosine monophosphate dehydrogenase and differentiation induction of K562 cells among the mycophenolic acid derivatives. Bioorgan Med Chem 18:8106–8111
Murashige T, Skoog F (1962) A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol Plant 15:473–497
Nascimento LC, Pio Ribeiro G, Willadino L, Andrade GP (2003) Stock indexing and Potato Virus Y elimination from potato plants cultivated in vitro. Sci Agric 60:525–530
Nouri K, Yazdanparast R, Sarafnejad A (2011) Guanosine supplementation reduces the antiproliferative and apoptotic effects of the IMPDH inhibitor gnidilatimonoein in K562 cells. Cell Biol Int 35:1001–1008
Panattoni A, D’Anna F, Triolo E (2007) Antiviral activity of tiazofurin and mycophenolic acid against Grapevine Leafroll associated Virus 3 in Vitis vinifera explants. Antivir Res 73:206–211
Panattoni A, Luvisi A, Triolo E (2013a) Elimination of viruses in plants: twenty years of progress. Span J Agric Res 11:173–188
Panattoni A, Rinaldelli E, Triolo E, Luvisi A (2013b) In vivo inhibition of trans-plasma membrane electron transport by antiviral drugs in grapevine. J Membr Biol 246:513–518
Panattoni A, Luvisi A, Fuselli S, D’Andrea F, Giorgelli F, Guazzelli L, Catelani G, Triolo E (2014) Antiviral activity of mycophenolic acid derivatives in plants. Acta Virol 58:99–102
Petrelli R, Vita P, Torquati I, Felczak K, Wilson DJ, Franchetti P, Cappellacci L (2013) Novel inhibitors of Inosine monophosphate dehydrogenase in patent literature of the last decade. Recent Pat Anti-Cancer 8:1–23
Quoirin M, Lepoivre P (1977) Etude de millieux adaptes aux cultures in vitro de prunus. Acta Hortic 78:437–442
Rinaldelli E, Panattoni A, Luvisi A, Triolo E (2012) Effect of mycophenolic acid on trans-plasma membrane electron transport and electric potential in virus-infected plant tissue. Plant Physiol Bioch 60:137–140
Sepúlveda CS, García CC, Fascio ML, D’Accorso NB, Docampo Palacios ML, Pellón RF, Damonte EB (2012) Inhibition of Junin virus RNA synthesis by an antiviral acridone derivative. Antivir Res 9:16–22
Skiada FG, Maliogka VI, Katis NI, Eleftheriou EP (2013) Elimination of Grapevine rupestris stem pitting-associated virus (GRSPaV) from two Vitis vinifera cultivars by in vitro chemotherapy. Eur J Plant Pathol 135:407–414
Takhampunya R, Ubol S, Houng HS, Cameron CE, Padmanabhan R (2006) Inhibition of dengue virus replication by mycophenolic acid and ribavirin. J Gen Virol 87:1947–1952
Taylor AR, Chow RH (2001) A microelectrochemical technique to measure transplasma membrane electron transport in plant tissue and cells in vivo. Plant Cell Environ 24:749–754
Tsai CW, Daugherty MP, Almeida RPP (2013) Seasonal dynamics and virus translocation of Grapevine leafroll-associated virus 3 in grapevine cultivars. Plant Pathol 61:977–985
Turturo C, Saldarelli P, Yafeng D, Digiaro M, Minafra A, Savino V, Martelli GP (2005) Genetic variability and population structure of grapevine leafroll–associated virus 3 isolates. J Gen Virol 86:217–224
Velasco L, Bota J, Montero R, Cretazzo E (2014) Differences of three Ampeloviruses’ multiplication in plant may explain their incidences in vineyards. Plant Dis 98:395–400