Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Nuôi cấy mô Heracleum candicans Wall: Một loại dược liệu hiếm
Tóm tắt
Một quy trình nuôi cấy mô đã được phát triển để nhân giống Heracleum candicans Wall. thông qua sự phát triển của chồi nách. Tỷ lệ phát triển chồi tối đa đạt được trên môi trường Murashige và Skoog bổ sung 0,5 mg (2,2 µM) 6-benzyladenine mỗi lít và 0,1 mg (0,4 µM) axit 1-naphthaleneacetic mỗi lít. Các chồi tái sinh được ra rễ trên môi trường MS bổ sung 1 mg (4,9 µM) axit indole-3-butyric mỗi lít. Cây hoàn chỉnh được chuyển sang đất và tất cả các cây này đều có hình thái và cấu trúc tế bào giống hệt như cây mẹ.
Từ khóa
#Heracleum candicans #nuôi cấy mô #phát triển chồi #sinh học tế bào #dược liệu hiếmTài liệu tham khảo
Agretious, T. K.; Martin, K. P.; Hariharan, M. In vitro clonal multiplication of Alpinia calcarata Rosc. Phytomorphology 46:133–138; 1996.
Arrebola, M. L.; Socorro, O.; Verpoorte, R. Micropropagation of Isoplexis canariensis (L.) G. Don. Plant Cell Tissue Organ Cult. 49:117–119; 1997.
Arumugam, N.; Bhojwani, S. S. Somatic embryogenesis in tissue cultures of Podophyllum hexandrum. Can. J. Bot. 68:487–491; 1990.
Barna, K. S.; Wakhlu, A. K. Modified single node culture method—a new micropropagation method for chickpea. In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant 31:150–152; 1995.
Du Manoir, J.; Desmarest, P.; Saussay, R. In vitro propagation of Fennel (Foeniculum vulgare Miller). Sci. Hortic. (Amst.) 27:15–19; 1985.
Duncan, D. B. Multiple range and multiple F-tests. Biometrics 11:1–42; 1955.
Harikrishnan, K. N.; Hariharan, M. Direct shoot regeneration from nodal explants of Plumbago rosea Linn.—a medicinal plant. Phytomorphology 46:53–58; 1996.
Hosoki, T.; Katahira, S. Micropropagation of Verbena tenera by node culture. Plant Cell Tissue Organ Cult. 36:373–375; 1994.
Kaul, M. K. Himalayan Heracleu Linn. (Hogweed)—a review. Publications & Information Directorate, RRL (Council of Scientific and Industrial Research) Jammu, India; 1989:1–18.
Kaul, M. K.; Bhat, B. K.; Atal, C. K. Heracleum candicans Wall.—a potential source of xanthotoxin. In: Atal, C. K.; Kapur, B. M., ed. Cultivation and utilization of medicinal plants. Publications & Information Directorate RRL (Council of Scientific and Industrial Research) Jammu, India; 1982:316–320.
Kaveriappa, K. M.; Phillips, L. M.; Trigiano, R. N. Micropropagation of flowering dogwood (Cornus florida) from seedlings. Plant Cell Rep. 16:485–489; 1997.
Koroch, A. R.; Juliani, H. R., Jr.; Juliani, H. R.; Trippi, V. S. Micropropagation and acclimatization of Hedeoma multiflorum. Plant Cell Tissue Organ Cult. 48:213–217; 1997.
Lucchesini, M.; Mensuali-Sodi, A.; Vitagliano, C. Micropropagation of Tamarix gallica from nodal explants of mature trees. Plant Cell Tissue Organ Cult. 35:195–197; 1993.
Murashige, T.; Skoog, F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Physiol. Plant. 15:473–497; 1962.
Satyavati, G. V.; Gupta, A. K. Medicinal plants of India. Indian Council of Medicinal Research, ed. New Delhi; 1987:18–22.
Singh, M. N.; Misra, A. K.; Bhatnagar, S. P. In vitro production of plants from cotyledon explants of Cucumis melo L. and their successful transfer to field. Phytomorphology 46:395–402; 1996.
Sharma, N.; Chandel, K. P. S.; Paul, A. In vitro propagation of Gentiana kurro— an indigenous threatened plant of medicinal importance. Plant Cell Tissue Organ Cult. 34:307–309; 1993.
Sharma, A. K.; Sharma, A. Chromosome techniques. London: Butterworths; 1980:91–139.
Snedecor, G. W.; Cochran, W. G. Statistical methods. New Delhi, Bombay, Calcultta: Oxford and IBH Publishing Co. Pvt. Ltd. 1968:258–338.
Sulaiman, I. M. Regeneration of plantlets through organogenesis in the Himalayan yellow poppy, Meconopsis paniculata. Plant Cell Tissue Organ Cult. 36:377–380; 1994.
Vandemoortele, J. L.; Billard, J. P.; Boucaud, J.; Gaspar, T. Micropropagation of parsley through axillary shoot proliferation. Plant Cell Tissue Organ Cult. 44:25–30; 1996.