Phần lớn tế bào T-lymphocyte TcRβ+ nằm ở tuyến ức và ruột giữa của cá xương, Dicentrarchus labrax (L.)

Springer Science and Business Media LLC - Tập 329 - Trang 479-489 - 2007
Nicla Romano1,2, Francesca Rossi1, Luigi Abelli3, Elisabetta Caccia1, Rita Piergentili1, Lucia Mastrolia1, Elisa Randelli1, Francesco Buonocore1
1Department of Environmental Sciences, Tuscia University, Viterbo, Italy
2Dipartimento di Scienze Ambientali, Blocco D, Università della Tuscia, Viterbo, Italy
3Department of Biology and Evolution, Section of Comparative Anatomy, University of Ferrara, Ferrara, Italy

Tóm tắt

Phân tích phản ứng chuỗi polymerase theo thời gian thực (PCR) và sự lai tại chỗ đã được thực hiện để điều tra sự xuất hiện và phân bố của các tế bào T-lymphocyte biểu hiện TcRβ trong ruột và các mô lympho của cá xương, Dicentrarchus labrax (cá chẽm). Kỹ thuật nhuộm miễn dịch với kháng thể đơn dòng DLT15 (đánh dấu pan-T-cell) đã được thực hiện để so sánh tế bào học, phân bố và số lượng tế bào T và các tế bào TcRβ+ trong các cơ quan lympho mẫu khác nhau. Kết quả PCR thời gian thực cho thấy biểu hiện TcRβ cao nhất ở tuyến ức, với mức độ cao cũng được phát hiện ở ruột. Tại tuyến ức, các quần thể tế bào DLT15+ và TcRβ+ tập trung chủ yếu ở vỏ tuyến, còn các tế bào TcRβ+ có độ phản ứng cao ở ranh giới giữa vỏ và tủy, cho thấy vai trò chuyên biệt của khu vực này trong sự chọn lọc tế bào thymocyte. Mật độ tế bào T DLT15+ gia tăng từ ruột trước đến ruột sau, trong khi các lymphocyte TcRβ+ nhiều hơn ở ruột giữa so với các đoạn khác. Nghiên cứu này cho thấy sự tồn tại của tủy và vỏ trong tuyến ức của cá tương tự như ở động vật có vú. Sự tập trung của các tế bào TcRβ+ trong ruột giữa của cá chẽm cũng cho thấy vai trò đặc biệt của đoạn ruột này trong miễn dịch tế bào đặc hiệu kháng nguyên. Số lượng lớn tế bào T TcRβ-/DLT15+ trong ruột sau có thể được quy cho phân đoạn kiểu hình TcRγδ.

Từ khóa

#T-cells #TcRβ+ lymphocytes #Dicentrarchus labrax #Immunohistochemistry #Thymus #Intestinal immunity

Tài liệu tham khảo

Abelli L, Picchietti S, Romano N, Mastrolia L, Scapigliati G (1996) Immunocytochemical detection of thymocyte antigenic determinants in developing lymphoid organs of sea bass Dicentrarchus labrax (L.). Fish Shellfish Immunol 6:493–505 Abelli L, Picchietti S, Romano N, Mastrolia L, Scapigliati G (1997) Immunohistochemistry of gut-associated lymphoid tissue of the sea bass Dicentrarchus labrax (L.). Fish Shellfish Immunol 7:235–245 Abelli L, Baldassini MR, Meschini R, Mastrolia L (1998) Apoptosis of thymocytes in developing sea bass Dicentrarchus labrax (L.). Fish Shellfish Immunol 8:13–24 Altschul SF, Gish W, Miller W, Myers E, Lipman DJ (1990) Best local alignment search tool. J Mol Biol 215:403–410 Aviles-Trigueros M, Quesada JA (1995) Presence of interdigitate cells in thymus of the sea bass Dicentrarchus labrax L. (Teleost). J Morphol 224:199–203 Bernard D, Six A, Rigottier-Gois L, Messiaen S, Chilmonczyk S, Quillet E, Boudinot P, Benmansour A (2006) Phenotypic and functional similarity of gut intraepithelial and systemic T cells in a teleost fish. J Immunol 176:3942–3949 Danilova N, Hohman VS, Sacher F, Ota T, Willett CE, Steiner LA (2004) T cells and the thymus in developing zebrafish. Dev Comp Immunol 28:755–767 Ellis AE (1977) Ontogeny of the immune response in Salmo salar. Histogenesis of the lymphoid organs and appearance of membrane immunoglobulin and mixed leucocyte reactivity. In: Solomon JB, Horton JD (eds) Developmental immunobiology. Elsevier/North Holland Biomedical, Amsterdam, pp 225–231 Fisher U, Dijkstra JM, Köllner B, Kiryu I, Koppang EO, Hordovic I, Sawamoto Y, Ototake M (2005) The ontogeny of MHC class I expression in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish Shellfish Immunol 18:49–60 Goldrath AW, Bevan MJ (1999) Selecting and maintaining a diverse T-cell repertoire. Nature 402:255–261 Huttenhuis HBT, Romano N, Oosterhoud CN van, Taverne-Thiele AJ, Mastrolia L, Van Muiswinkel WB, Rombout JHWH (2005) The ontogeny of mucosal immune cells in common carp (Cyprinus carpio L.). Anat Embryol 211:19–29 Kurosawa Y, Hashimoto K (1997) How did primordial T cell receptor and MHC molecules function initially? Immunol Cell Biol 75:193–196 Lefrançois L, Puddington L (1995) Extrathymic intestinal T-cell development: “virtual reality”? Immunol Today 16:16–21 Lovy J, Wright GM, Speare DJ (2006) Morphological presentation of a dendritic-like cell within the gills of chinook salmon infected with Loma salmonae. Dev Comp Immunol 30:259–263 McMillan ND, Secombes C (1997) Isolation of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) intestinal intraepithelial lymphocytes (IEL) and measurement of their cytotoxic activity. Fish Shellfish Immunol 7:527–541 Miracle AL, Anderson MK, Litman RT, Walsh CJ, Luer CA, Rothenberg EV, Litman GW (2001) Complex expression patterns of lymphocyte-specific genes during the development of cartilaginous fish implicate unique lymphoid tissues in generating an immune repertoire. Int Immunol 13:567–580 Nam Bo-H, Hirono I, Aoki T (2003) The four TcR genes of teleost fish: the cDNA and genomic DNA analysis of Japanese flounder (Paralichtys olivaceus) TcR α-, β-, γ-, and δ-chains. J Immunol 170:3081–3090 Parham P (2000) The immune system-current trends. Gardaland, New York London Pearson WR, Lipman DJ (1988) Improved tools for biological sequence comparision. Proc Natl Acad Sci USA 85:2444–2448 Picchietti S, Terribili FR, Mastrolia L, Scapigliati G, Abelli L (1997) Expression of lymphocyte antigenic determinants in developing gut-associated lymphoid tissue of the sea bass Dicentrarchus labrax (L.). Anat Embryol 196:457–463 Quiniou SM-A, Wilson M, Bengtèn E, Waldbieser GC, Clem LW, Miller NW (2005) MHC RFLP analyses in channel catfish full-sibling families: identification of the role of MHC molecules in spontaneous allogenic cytotoxic responses. Dev Comp Immunol 29:457–467 Ritter MA, Crispe IN (1992) The thymus. In: Rickwood D, Male D (eds) In focus. Oxford University Press, Oxford, pp 1–85 Romano N, Abelli L, Mastrolia L, Scapigliati G (1997a) Immunocytochemical detection and cytomorphology of lymphocyte subpopulations in a teleost fish Dicentrarchus labrax (L). Cell Tissue Res 289:163–171 Romano N, Baldassini MR, Terribili FR, Abelli L, Mastrolia L, Mazzini M (1997b) Histological observations on lymphoid organs of the Antarctic fish Trematomus bernacchii (Teleostei: Nototheniidae). Polar Biol 18:358–362 Romano N, Picchietti S, Taverne-Thiele JJ, Abelli L, Mastrolia L, Verburg-van Kemenade BML, Rombout JHWM (1998) Distribution of macrophages during fish development: an immunohistochemical study in carp (Cyprinus carpio,(L.). Anat Embryol 198:31–41 Romano N, Fanelli M, Del Papa GM, Scapigliati G, Mastrolia L (1999a) Histological and cytologycal studies on the developing thymus of sharpsnout seabream, Diplodus puntazzo. J Anat 194:39–50 Romano N, Taverne-Thiele, JJ, Fanelli M, Baldassini MR, Abelli L, Mastrolia L, Van Muiswinkel WB, Rombout JHMW (1999b) Ontogeny of the thymus in a teleost, Cyprinus carpio L.: developing thymocytes in the epithelial microenvironment. Dev Comp Immunol 23:123–137 Romano N, Baldassini MR, Buonocore F, Picchietti S, Mastrolia L, Abelli L (2005) In vivo allograft rejection in a bony fish Dicentrarchus labrax (L.): characterisation of effector lymphocytes. Cell Tissue Res 321:353–363 Rombout JH, Taverne-Thiele AJ, Villena MI (1993) The gut-associated lymphoid tissue (GALT) of carp (Cyprinus carpio L.): an immunocytochemical analysis. Dev Comp Immunol 17:55–66 Rumfelt LL, McKinney EC, Taylor E, Flajmik MF (2002) The development of primary and secondary lymphoid tissues in nurse shark Ginglymostoma cirratum: B-cell zones precede dendritic cell immigration and T-cell zone formation during ontogeny of the spleen. Scand J Immunol 56:130–148 Scapigliati G, Mazzini M, Mastrolia L, Romano N, Abelli L (1995) Production and characterization of a monoclonal antibody against the thymocytes of the sea bass Dicentrarchus labrax (L.) (Teleostea, Percicthydae). Fish Shellfish Immunology 5:393–405 Scapigliati G, Romano N, Picchietti S, Mazzini M, Mastrolia L, Scalia D, Abelli L (1996) Monoclonal antibodies against sea bass Dicentrarchus labrax (L) immunoglobulins: immunolocalisation of immunoglobulin-bearing cells and applicability in immunoassays. Fish Shellfish Immunol 6:383–401 Scapigliati G, Romano N, Abelli L (1999) Monoclonal antibodies in teleost fish immunology: identification, ontogeny and activity of T- and B-lymphocytes. Aquaculture 172:3–28 Scapigliati G, Romano N, Abelli L, Meloni S, Ficca AG, Buonocore F, Secombes CJ (2000) Immunopurification of T-cells from sea bass Dicentrarchus labrax (L.). Fish Shellfish Immunol 10:329–341 Sprent J, Webb R (1995) Intrathymic and extrathymic clonal deletion of T cells. Curr Opin Immunol 7:196–205 Stet RJ, Kruiswijk CP, Dixon B (2003) Major histocompatibility lineages and immune gene function in teleost fishes: the road not taken. Crit Rev Immunol 23:441–471 Vallejo AN, Miller NW, Clem LW (1992) Antigen processing and presentation in teleost immune responses. Annu Rev Fish Dis 2:73–89 Van Muiswinkel WB (1995) The piscine immune system: innate and acquired immunity. In: Woo PTK (ed) Fish disease and disorders, vol 1. Protozoan and metazoan infections. CAB International, Wallingford, pp 729–750 Wermenstam NE, Pilstrom L (2001) T-cell antigen receptors in Atlantic cod (Gadus morhua L.): structure, organisation and expression of TCR α and β genes. Dev Comp Immunol 25:117–135 Zapata A, Chibà A, Varas A (1996) Cells and tissues of the immune system of fish. In: Iwama Q, Nakanishi T (eds) The fish immune system: organism, pathogen and environment. Academic Press, San Diego, pp 1–62