Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Kỹ thuật khuếch đại isothermal theo vòng như một phương pháp đáng tin cậy để phát hiện nhiễm Toxocara canis ở chó cảnh
Tóm tắt
Việc giữ chó nhiễm bệnh làm thú cưng dẫn đến các yếu tố nguy cơ lây truyền tiềm tàng cho các nhiễm trùng giun đũa như nhiễm Toxocara. Việc thiếu khả năng xác định chính xác trứng Toxocara canis ở những chú chó bị nhiễm chưa được tẩy giun là mối quan tâm của các nhà nghiên cứu. Trong nghiên cứu này, các chủ chó đã được yêu cầu điền vào bảng hỏi về thú cưng của họ và thái độ của họ đối với chế độ tẩy giun. Một trăm mẫu phân đã được thu thập từ chó cảnh (miền Tây Bắc Iran) và sau đó được xác định bằng kỹ thuật nổi ZnSo4, PCR và thử nghiệm khuếch đại isothermal theo vòng (LAMP). DNA từ trứng T. canis thu được đã được chiết xuất và khuếch đại bằng LAMP và PCR. Hơn nữa, các amplicon ITS2 đã được giải trình tự để đánh giá phân tích phát sinh loài. Chín phần trăm, 5% và 11% của các nhiễm T. canis được xác định bằng kính hiển vi, PCR và LAMP, tương ứng. Kết quả cho thấy LAMP nhạy 10 lần (10−10 đến 10−13 g/μl) so với PCR (10−10 đến 10−12 g/μl). Giá trị kappa giữa LAMP và PCR chỉ ra sự đồng thuận nhẹ (0.463). Hệ số kappa giữa LAMP và kỹ thuật nổi chỉ ra sự đồng ý mạnh mẽ (0.667). Tỷ lệ nhiễm cao nhất (n = 11) được phát hiện ở những chú chó cảnh chưa được tẩy giun, đặc biệt là những chó dưới 3 tháng tuổi (P < 0.05). Không có chú chó nhiễm nào có lịch sử đi dạo và hành vi ở trong chuồng tại nơi công cộng. Thử nghiệm LAMP có thể được coi là một kỹ thuật đơn giản, nhanh chóng và có độ nhạy cao để phát hiện tải lượng thấp của trứng T. canis ở những chú chó cảnh bị nhiễm. Đề xuất rằng nhận thức của người nuôi chó là không đủ để thực hiện lịch trình tẩy giun thường xuyên. Thêm vào đó, các nhà hoạch định chính sách khu vực nên xem xét lại một cách rộng rãi các hướng dẫn điều trị thuốc kháng giun.
Từ khóa
#Toxocara canis #LAMP #phát hiện nhiễm trùng #chó cưng #tẩy giunTài liệu tham khảo
Becker A-C, Rohen M, Epe C, Schnieder T (2012) Prevalence of endoparasites in stray and fostered dogs and cats in Northern Germany. Parasitol Res 111:849–857
Borecka A, Gawor J (2008) Modification of gDNA extraction from soil for PCR designed for the routine examination of soil samples contaminated with Toxocara spp. eggs. J Helminthol 82:119–122
Claerebout E, Casaert S, Dalemans A-C, De Wilde N, Levecke B, Vercruysse J, Geurden T (2009) Giardia and other intestinal parasites in different dog populations in Northern Belgium. Vet Parasitol 161:41–46
Daryani A, Sharif M, Amouei A, Gholami S (2009) Prevalence of Toxocara canis in stray dogs, northern Iran. Pak J Biol Sci 12(14):1031–1035
Deplazes P, van Knapen F, Schweiger A, Overgaauw PA (2011) Role of pet dogs and cats in the transmission of helminthic zoonoses in Europe, with a focus on echinococcosis and toxocarosis. Vet Parasitol 182:41–53
Despommier D (2003) Toxocariasis: clinical aspects, epidemiology, medical ecology, and molecular aspects. Clin Microbiol Rev 16:265–272
Durant J-F, Irenge LM, Fogt-Wyrwas R, Dumont C, Doucet J-P, Mignon B, Losson B, Gala J-L (2012) Duplex quantitative real-time PCR assay for the detection and discrimination of the eggs of Toxocara canis and Toxocara cati (Nematoda, Ascaridoidea) in soil and fecal samples. Parasit Vectors 5:1
Fallah M, Azimi A, Taherkhani H (2007) Seroprevalence of toxocariasis in children aged 1-9 years in western Islamic Republic of Iran, 2003. East Mediterr Health J 13:1073–1077
Glickman LT, Shofer FS (1987) Zoonotic visceral and ocular larva migrans. Vet Clin N Am Small Anim Pract 17:39–53
Jacobs DE, Zhu X, Gasser RB, Chilton NB (1997) PCR-based methods for identification of potentially zoonotic ascaridoid parasites of the dog, fox and cat. Acta Trop 68:191–200
Lee AC, Schantz PM, Kazacos KR, Montgomery SP, Bowman DD (2010) Epidemiologic and zoonotic aspects of ascarid infections in dogs and cats. Trends Parasitol 26:155–161
Liang S-Y, Chan Y-H, Hsia K-T, Lee J-L, Kuo M-C, Hwa K-Y, Chan C-W, Chiang T-Y, Chen J-S, Wu F-T (2009) Development of loop-mediated isothermal amplification assay for detection of Entamoeba histolytica. J Clin Microbiol 47:1892–1895
Macuhova K, Kumagai T, Akao N, Ohta N (2010) Loop-mediated isothermal amplification assay for detection and discrimination of Toxocara canis and Toxocara cati eggs directly from sand samples. J Parasitol 96:1224–1227
Momeni T, Mahami-Oskouei M, Fallah E, Safaiyan A, Mahami-Oskouei L (2016) Latent and asymptomatic Toxocara infection among young population in Northwest Iran: the necessity of informing people as a potential health risk. Scientifica 2016
Moreira D (1998) Efficient removal of PCR inhibitors using agarose-embedded DNA preparations. Nucleic Acids Res 26:3309–3310
Nijsse R, Mughini-Gras L, Wagenaar J, Ploeger H (2014) Coprophagy in dogs interferes in the diagnosis of parasitic infections by faecal examination. Vet Parasitol 204:304–309
Nkouawa A, Sako Y, Nakao M, Nakaya K, Ito A (2009) Loop-mediated isothermal amplification method for differentiation and rapid detection of Taenia species. J Clin Microbiol 47:168–174
Overgaauw PA, van Zutphen L, Hoek D, Yaya FO, Roelfsema J, Pinelli E, van Knapen F, Kortbeek LM (2009) Zoonotic parasites in fecal samples and fur from dogs and cats in The Netherlands. Vet Parasitol 163:115–122
Ozlati M, Spotin A, Shahbazi A, Mahami-Oskouei M, Hazratian T, Adibpor M, Ahmadpour E, Dolatkhah A, Khoshakhlagh P (2016) Genetic variability and discrimination of low doses of Toxocara spp. from public areas soil inferred by loop-mediated isothermal amplification assay as a field-friendly molecular tool. Vet World 9(12):1471–1477
Sotiriadou I, Karanis P (2008) Evaluation of loop-mediated isothermal amplification for detection of toxoplasma gondii in water samples and comparative findings by polymerase chain reaction and immunofluorescence test (IFT). Diagn Microbiol Infect Dis 62:357–365
Spotin A, Gholami S, Nasab AN, Fallah E, Oskouei MM, Semnani V, Shariatzadeh SA, Shahbazi A (2015) Designing and conducting in silico analysis for identifying of Echinococcus spp. with discrimination of novel haplotypes: an approach to better understanding of parasite taxonomic. Parasitol Res 114:1503–1509