Sinh con từ phôi nang phát triển từ noãn ghép trong chu kỳ chuyển phôi đông lạnh: báo cáo ca và tổng quan văn học

Li Fu1, Shaowei Chen1, Mingyong Wang1, Guiying Huang1, Fang Wang1, Yunzhu Lan1, Shuang Liu1, Xia Jiang1
1Department of Reproductive Medicine, The Affiliated Hospital of Southwest Medical University, Luzhou, China

Tóm tắt

Ý nghĩa của noãn ghép trong môi trường phòng thí nghiệm thụ tinh trong ống nghiệm (IVF) đã bị đặt câu hỏi do số liệu hạn chế có sẵn. Vấn đề này được thảo luận thông qua việc trình bày một ca noãn ghép quan sát được trong chương trình hỗ trợ sinh sản và bao gồm đánh giá tài liệu liên quan. Báo cáo này mô tả một ca mang thai lâm sàng thành công với sự ra đời của một em bé từ noãn ghép. Theo kiến thức của chúng tôi, đã chỉ có ba ca sinh sống thành công được báo cáo từ noãn ghép, nhưng đây là trường hợp đầu tiên có sự ra đời từ phôi nang phát triển từ noãn ghép đã được thụ tinh bằng phương pháp tiêm tinh trùng vào bào tương (ICSI) trong một chu kỳ chuyển phôi đông lạnh. Hơn nữa, nghiên cứu này báo cáo lần đầu tiên có sự ra đời từ noãn ghép mà không cần loại bỏ noãn chưa trưởng thành đã thoái hóa trước khi chuyển. Điều này chứng minh rằng noãn chưa trưởng thành đã thoái hóa không có ảnh hưởng bất lợi đến sự phát triển phôi và kết quả mang thai sau đó. Ngoài ra, chúng tôi đã xem xét tài liệu để đánh giá nguồn gốc, tỷ lệ mắc, độ an toàn và ý nghĩa của noãn ghép trong sức khỏe sinh sản. Chúng tôi cũng xác nhận các báo cáo trước đó cho thấy noãn trưởng thành từ các phức hợp noãn ghép có thể được thụ tinh bằng IVF tiêu chuẩn hoặc ICSI và dẫn đến sự phát triển của một phôi nang, mang thai tiếp theo và sinh sống.

Từ khóa

#noãn ghép; thụ tinh trong ống nghiệm; phôi nang; chuyển phôi đông lạnh; tiêm tinh trùng vào bào tương

Tài liệu tham khảo

Papadaki L. Binovular follicles in the adult human ovary. Fertil Steril. 1978;29(3):342–50. Gougeon A. Frequent occurrence of multiovular follicles and multinuclear oocytes in the adult human ovary. Fertil Steril. 1981;35(4):417–22. Dandekar PV, Martin MC, Glass RH. Polyovular follicles associated with human in vitro fertilization. Fertil Steril. 1988;49(3):483–6. Reynaud K, Halter S, Tahir Z, Thoumire S, Chebrout M, Chastant-Maillard S. Polyovular follicles. Gynecologie, obstetrique & fertilite. 2010;38(6):395–7. Ron-El R, Nachum H, Golan A, Herman A, Yigal S, Caspi E. Binovular human ovarian follicles associated with in vitro fertilization: incidence and outcome. Fertil Steril. 1990;54(5):869–72. Fishel S, Kaufman MH, Jackson P, Webster J, Faratian B. Recovery of two human oocytes surrounded by a single zona pellucida. Fertil Steril. 1989;52(2):325–7. Rosenbusch B, Hancke K. Conjoined human oocytes observed during assisted reproduction: description of three cases and review of the literature. Rom J Morphol Embryol. 2012;53(1):189–92. Veeck LL. An atlas of human gametes and conceptuses: an illustrated reference for assisted reproductive technology. Taylor & Francis; 1999. Magli MC, Jones GM, Lundin K, van den Abbeel E. Atlas of human embryology: from oocytes to preimplantation embryos. Preface. Human reproduction (Oxford, England). 2012;27 Suppl 1:i1. Magdi Y. Dizygotic twin from conjoined oocytes: a case report. J Assist Reprod Genet. 2020;37(6):1367–70. Zeilmaker GH, Alberda AT, van Gent I. Fertilization and cleavage of oocytes from a binovular human ovarian follicle: a possible cause of dizygotic twinning and chimerism. Fertil Steril. 1983;40(6):841–3. Ben-Rafael Z, Mastroianni L Jr, Kopf GS. In vitro fertilization and cleavage of a single egg from a binovular follicle containing two individual eggs surrounded by a single zona pellucida. Fertil Steril. 1987;47(4):707–9. Tanaka A NH, Kumasawa K, Tsutsui T, Kimura TJJoG. A case report of conjoined oocytes with independent zona pellucida from polycystic ovary syndrome. Obstetrics. 2016;4(45):25–9. Turkalj B, Kotanidis L, Nikolettos N. Binovular complexes after ovarian stimulation. A report of four cases Hippokratia. 2013;17(2):169–70. Cummins L, Koch J, Kilani S. Live birth resulting from a conjoined oocyte confirmed as euploid using array CGH: a case report. Reprod Biomed Online. 2016;32(1):62–5. Yano K, Hashida N, Kubo T, Ohashi I, Koizumi A, Kageura R, et al. Repeated collection of conjoined oocytes from a patient with polycystic ovary syndrome, resulting in one successful live birth from frozen thawed blastocyst transfer: a case report. J Assist Reprod Genet. 2017;34(11):1547–52. Coban O, Serdarogullari M, Pervaiz R, Soykok A, Bankeroglu H. Fertilization and development of oocytes with separated and conjoined zona pellucida recovered from polyovular follicles: description of two cases and a literature review. Zygote (Cambridge, England). 2021;29(4):282–5. Safran A, Reubinoff BE, Porat-Katz A, Werner M, Friedler S, Lewin A. Intracytoplasmic sperm injection allows fertilization and development of a chromosomally balanced embryo from a binovular zona pellucida. Human reproduction (Oxford, England). 1998;13(9):2575–8. Vicdan K, Işik AZ, Dağli HG, Kaba A, Kişnişçi H. Fertilization and development of a blastocyst-stage embryo after selective intracytoplasmic sperm injection of a mature oocyte from a binovular zona pellucida: a case report. J Assist Reprod Genet. 1999;16(7):355–7. Kousehlar M, Allgayer G, Daufratshofer C, Haseitl M, Felberbaum R. An egg with double yolk: the phenomenon of binovular zona pellucida. Gynäkologische Endokrinologie. 2009;7(3):190. Jiao G, Wang J, Chen L, Shan Y, Xing H, Liu X. Fertilization and development of conjoined human oocyte from a binovular follicle containing two individual oocytes surrounded by a zona pellucida. research square. 2021; https://doi.org/10.21203/rs.3.rs-646284/v1. Hartshorne GM, Blayney M, Dyson H, Elder K. In vitro fertilization and development of one of two human oocytes with fused zonae pellucidae: case report. Fertil Steril. 1990;54(5):947–9. Gardner DK, Lane M, Stevens J, Schlenker T, Schoolcraft WB. Blastocyst score affects implantation and pregnancy outcome: towards a single blastocyst transfer. Fertil Steril. 2000;73(6):1155–8. Hartman CG. Polynuclear ova and polyovular follicles in the opossum and other mammals, with special reference to the problem of fecundity. American Journal of Anatomy. 1926;37(1):1–51. Telfer E, Gosden RG. A quantitative cytological study of polyovular follicles in mammalian ovaries with particular reference to the domestic bitch (Canis familiaris). J Reprod Fertil. 1987;81(1):137–47. Guillette LJ Jr, Moore BC. Environmental contaminants, fertility, and multioocytic follicles: a lesson from wildlife? Seminars in reproductive medicine. 2006;24(3):134–41. Sherrer C, Gerson B, Woodruff JD. The incidence and significance of polynuclear follicles. Am J Obstet Gynecol. 1977;128(1):6–12. Swain JE. Fused blastocysts as a consequence of group embryo culture: observations, complications, and potential solutions. F&S reports. 2021;2(1):133–5. Schiewe MC, Whitney JB, Anderson RE. Potential risk of monochorionic dizygotic twin blastocyst formation associated with early laser zona dissection of group cultured embryos. Fertil Steril. 2015;103(2):417–21. Rosenbusch B. The potential significance of binovular follicles and binucleate giant oocytes for the development of genetic abnormalities. J Genet. 2012;91(3):397–404. O’Neill GT, Kaufman MH. Ovulation and fertilization of primary and secondary oocytes in LT/Sv strain mice. Gamete Res. 1987;18(1):27–36. Hamilton WJ. Cleavage stages of the ova of the horse, with notes on ovulation. Journal of anatomy. 1945;79(Pt 3):127–30.3. Pearson AP, Enders RK. Ovulation, maturation and fertilization in the fox. Anat Rec. 1943;85(1):69–83. Van der Stricht O. Etude comparee des ovules des mammiferes aux differentes periodes de l’ovogenese, d’apres les travaux du Laboratoire d’Histologie et d’Embryologie de l’Universite de Gand. Paris Arch Biol. 1923;33:229–300. Al-Mufti W, Bomsel-Helmreich O, Christidès JP. Oocyte size and intrafollicular position in polyovular follicles in rabbits. J Reprod Fertil. 1988;82(1):15–25. Braden AW, Austin CR, David HA. The reaction of zona pellucida to sperm penetration. Aust J Biol Sci. 1954;7(3):391–409. Zeng M, Su S, Li L. The effect of laser-assisted hatching on pregnancy outcomes of cryopreserved-thawed embryo transfer: a meta-analysis of randomized controlled trials. Lasers Med Sci. 2018;33(3):655–66. Yin C, Li LJ, Ma S, Zhao H, Xu L, Li C, et al. Efficiency and safety of laser-assisted hatching on vitrified-warmed blastocyst transfer cycles: a prospective control trial. Lasers Med Sci. 2021. https://doi.org/10.1007/s10103-021-03453-4.