Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Hoạt động diệt ấu trùng của các chiết xuất từ thực vật thủy chưng cất đối với muỗi nhà, Culex pipiens, một véc tơ virus Tây Nile
Tóm tắt
Hoạt động diệt ấu trùng của các chiết xuất từ Chrysanthemum coronarium L., Hypericum scabrum L., Pistacia terebinthus L. subsp. palaestina (Boiss.) Engler, và Vitex agnus castus L. đã được nghiên cứu đối với véc tơ Tây Nile, Culex pipiens L. (Diptera: Culicidae). Năng suất và xác định các tinh dầu chính từ mỗi quá trình chưng cất được thực hiện bằng phân tích GC-MS. Thành phần tinh dầu chính của từng loài thực vật như sau: α-pinene đối với P. terebinthus palaestina và H. scabrum (45,3% và 42,3%, tương ứng), trans-β-caryophyllene đối với V. agnus castus (22,1%), và borneol đối với C. coronarium (20,9%). Một loạt nồng độ chưng cất từ những cây này (từ 1 ppm đến 500 ppm, tùy thuộc vào loài thực vật) đã được đánh giá đối với ấu trùng C. pipiens giai đoạn muộn thứ ba đến đầu giai đoạn thứ tư tại các thời điểm 1, 6 và 24 giờ sau điều trị. Nhìn chung, tỷ lệ tử vong của ấu trùng với nước được điều trị bằng chưng cất tăng lên khi nồng độ và thời gian tiếp xúc tăng lên. H. scabrum và P. terebinthus palaestina là hiệu quả nhất đối với ấu trùng muỗi và cả hai đều đạt 100% tỷ lệ tử vong tại 250 ppm sau 24 giờ tiếp xúc liên tục so với các loài thực vật khác. Độc tính của các chưng cất đối với ấu trùng ở 24 giờ (LC50 từ độc nhất đến ít độc hơn) như sau: P. terebinthus palaestina (59,2 ppm) > H. scabrum (82,2 ppm) > V. agnus castus (83,3 ppm) > C. coronarium (311,2 ppm). Tuy nhiên, khi so sánh các giá trị LC90, thứ hạng độc tính tương đối đã thay đổi như sau: H. scabrum (185,9 ppm) > V. agnus castus (220,7 ppm) > P. terebinthus palaestina (260,7 ppm) > C. coronarium (496,3 ppm). Các chiết xuất từ thực vật bản địa của Thổ Nhĩ Kỳ tiếp tục cung cấp một nguồn phong phú các tác nhân sinh học có hoạt tính có thể được áp dụng để chống lại các loài sâu bọ gây hại cho con người và động vật.
Từ khóa
#diệt ấu trùng #chiết xuất thực vật #Culex pipiens #virus Tây Nile #tinh dầuTài liệu tham khảo
Abbott WS (1925) A method for computing the effectiveness of an insecticide. J Econ Entomol 18:265–267
Akiner MM, Simsek FM, Caglar SS (2009) Insecticide resistance of Culex pipiens (Diptera: Culicidae) in Turkey. J Pestic Sci 34:259–264
Alvarez-Castellanos PP, Bishop CD, Pascual-Villalobos MJ (2001) Antifungal activity of the essential oil of flowerheads garland chrysanthemum (Chrysanthemum coronarium) against agricultural pathogens. Phytochemistry 57:99–102
Cetin H, Yanikoglu A (2004) Mosquito (Diptera: Culicidae) species, their breeding sites and some biological aspects of dominant species Culex pipiens, Linnaeus in Antalya. Turkish J Entomol Res Soc 28:283–294
Cetin H, Yanikoglu A (2006) A study of the larvicidal activity of Origanum (Labiatae) species from southwest Turkey. J Vector Ecol 31:118–122
Cheng SS, Chua MT, Chang EH, Huang CG, Chen WJ, Chang ST (2009) Variations in insecticidal activity and chemical compositions of leaf essential oils from Cryptomeria japonica at different ages. Biores Tech 100:465–470
Curtis CF, Pasteur N (1981) Organophosphate resistance in vector populations of the complex of Culex pipiens L. (Diptera: Culicidae). Bull Entomol Res 71:153–161
Elango G, Rahuman AA, Bagavan A, Kamaraj C, Zahir AA, Venkatesan C (2009) Laboratory study on larvicidal activity of indigenous plant extracts against Anopheles subpictus and Culex tritaeniorhynchus. Parasitol Res 104:1381–1388
Finney DJ (1971) Probit analysis, 3rd edn. Cambridge University Press, London, p 333
Hamer GL, Kitron UD, Brawn JD, Loss SR, Ruiz MO, Goldberg TL, Walker ED (2008) Culex pipiens (Diptera: Culicidae): a bridge vector of West Nile virus to humans. J Med Entomol 45(1):125–128
Kannathasan K, Senthilkumar A, Chandrasekaran M, Venkatesalu V (2007) Differential larvicidal efficacy of four species of Vitex against Culex quinquefasciatus larvae. Parasitol Res 101:1721–1723
Miresmailli S, Bradbury R, Isman MB (2006) Comparative toxicity of Rosmarinus officinalis L. essential oil and blends of its major constituents against Tetranychus urticae Koch (Acari: Tetranychidae) on two different host plants. Pest Manag Sci 62:366–371
Paul A, Harrington LC, Zhang L, Scott JG (2005) Insecticide resistance in Culex pipiens from New York. J Am Mosq Control Assoc 21:305–309
Ramsdale CD, Alten B, Caglar SS, Ozer N (2001) A revised, annotated checklist of the mosquitoes (Diptera, Culicidae) of Turkey. J Europ Mosq Control Assoc 9:18–28
Rawani A, Ghosh A, Chandra G (2010) Mosquito larvicidal activities of Solanum nigrum L. leaf extract against Culex quinquefasciatus Say. Parasitol Res 107:1235–1240
Shonouda ML, Osman S, Salama O, Ayoub A (2008) Insecticidal effect of Chrysanthemum coronarium L. flowers on the pest Spodoptera littoralis Boisd. and its parasitoid Microplitis rufiventris Kok. with identifying the chemical composition. J Appl Sci 8:1859–1866
SPSS (1999) SPSS for Windows, version 9.01. Chicago, IL, USA
Tandon S, Mittal AK, Pant AK (2008) Insect growth regulatory activity of Vitex trifolia and Vitex agnus-castus essential oils against Spilosoma obliqua. Fitot 79:283–286
Turell MJK, Dohm DJ, Sardelis MR, Guinn MLO, Andreadis TG, Blow JA (2005) An update on the potential of North American mosquitoes (Diptera: Culicidae) to transmit West Nile virus. J Med Entomol 42:57–62
Yang SD, Zhao TY, Lı CY, Lan YN, Egashıra K (2008) Antifeeding and insecticidal activities of extracts from seven wild herbs against diamondback moth (Plutella xylostella). J Fac Agric Kyushu Univ 53:143–148
WHO (1996) Report of the WHO in formal consultation on the evaluation on the and testing of insecticides CTD/WHO PES/IC/96.1, p69