Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Sự ức chế Penicillium digitatum trong ống nghiệm và trong trái cam sau thu hoạch bằng một phân đoạn protein đậu nành chủ yếu chứa β-conglycinin
Tóm tắt
Các hoạt động kháng nấm tiềm năng của một phân đoạn protein đậu nành chủ yếu chứa β-conglycinin và glycinin đối với nấm gây bệnh Penicillium digitatum, cả trong ống nghiệm và tại chỗ (trong trái cam sau thu hoạch), đã được đánh giá và so sánh với thuốc diệt nấm rhizolax. Phương pháp nuôi cấy vi sinh vật truyền thống được sử dụng để đánh giá các hoạt động kháng nấm trong ống nghiệm của phân đoạn chứa β-conglycinin hoặc glycinin. Các thay đổi khả năng xảy ra trong hình thái học và thành phần tế bào của nấm sợi được điều trị bằng glycinin và phân đoạn protein đậu nành chứa β-conglycinin đã được xem xét thêm bằng kính hiển vi điện tử quét. Kết quả thu được cho thấy phân đoạn protein đậu nành chứa β-conglycinin ức chế đáng kể sự phát triển trong ống nghiệm của P. digitatum ở một dải nồng độ rộng (50–3.000 mg/L). Nó cũng có thể hoàn toàn ngăn chặn sự nảy mầm của bào tử P. digitatum ở nồng độ 2.000 mg/L. MIC và MFC của β-conglycinin đối với P. digitatum lần lượt là 50 và 1.900 mg/L. Phân đoạn protein đậu nành chứa β-conglycinin đã hoàn toàn ngăn chặn sự phát triển của nấm xanh trên trái cây ở nồng độ 250 mg/L trong 7 ngày sau khi nhiễm nấm, và tỷ lệ và mức độ bệnh vẫn ở mức tối thiểu sau 21 ngày (tức là 22 và 25%, tương ứng). Hình ảnh SEM cho thấy hoạt động kháng nấm rõ ràng của β-conglycinin đối với P. digitatum. β-conglycinin đã gây ra sự biến dạng và chết của nấm sợi và ức chế sự phát triển của conidiophore và conidia. Những kết quả này cho thấy phân đoạn protein đậu nành chứa β-conglycinin có thể được sử dụng như một tác nhân diệt nấm hiệu quả và thân thiện với môi trường chống lại các nhiễm trùng nấm sau thu hoạch.
Từ khóa
#kháng nấm #β-conglycinin #Penicillium digitatum #protein đậu nành #nấm gây bệnh #diệt nấmTài liệu tham khảo
Aloui H, Licciardello F, Khwaldia K, Hamdi M, Restuccia C (2015) Physical properties and antifungal activity of bioactive films containing Wickerhamomyces anomalus killer yeast and their application for preservation of oranges and control of postharvest green mould caused by Penicilliumdigitatum. Int J Food Microbiol 200:22–30
Askarne L, Talibi I, Boubaker H, Boudyach EH, Msanda F, Saadi B, Serghini MA, Ait Ben Aoumar A (2012) In vitro and in vivo antifungal activity of several Moroccan plants against Penicillium italicum, the causal agent of citrus blue mould. Crop Prot 40:53–58
Attaway JA (1994) Citrus juice flavonoids with anticarcinogenic and antitumor properties. Food phytochemicals for cancer prevention I. Maple, York, pp 240–248
Bink A, Pellens K, Cammue BPA, Thevissen K (2011) Anti-biofilm strategies: how to eradicate Candida biofilms? Open Mycol J 5:29–38
Brewer CF, Miceli MC, Baum LG (2002) Clusters, bundles, arrays and lattices: novel mechanisms for lectin–saccharide-mediated cellular interactions. Current Opin Struct Biol 12:616–623
Castillo S, Pérez-Alfonso CO, Martínez-Romero D, Guillén F, Serrano M, Valero D (2014) The essential oils thymol and carvacrol applied in the packing lines avoid lemon spoilage and maintain quality during storage. Food Control 35:132–136
Chobert JM, Touati A, Bertrand-Harb C, Dalgalarrondo M, Nicolas MG, Haertlé T (1991) In vitro proteolysis and functional properties reductively alkylated β-casein derivatives. J Dairy Res 58:285–298
Deepak AV, Thippeswamy G, Shivakameshwari MN, limath BP (2003) Isolation and characterization of a 29-kDa glycoprotein with antifungal activity from bulbs of Urginea indica. Biochem Biophys Res Commun 311:735–742
Droby S, Wisniewski ME, Cohen L, Weiss B, Touitou D, Eilam Y, Chalutz E (1997) Influence of CaCl2 on Penicillium digitatum grapefruit peel tissue and biocontrol activity of Pichia guilliermondii. Phytopathol 87:310–315
Droby S, Eick A, Macarisin D, Cohen L, Rafaela G, Stange R, Mccolum G, Dudai N, Nasser A, Wisiniewski M, Shapira R (2008) Role of citrus volatiles in host recognition, germination and growth of Penicillium digitatum and Penicillium italicum. Postharvest Biol Technol 49(3):386–396
DuBois M, Gilles K, Hamilton J, Rebers P, Smith F (1956) Colorimetric method for determination of sugars and related substances. Anal Chem 28(3):350–356
Elad Y, Yunis H, Katan T (1992) Multiple fungicide resistance to benzimidazoles, dicarboximides and diethofencarb in field isolates of Botrytis cinerea in Israel. Plant Pathol 41:41–46
Fan F, Tao NG, Jia L, He XL (2014) Use of citral incorporated in postharvest wax of citrus fruit as a botanical fungicide against Penicillium digitatum. Postharvest Biol Technol 90:52–55
Janisiewicz WJ, Korsten L (2002) Biological control of postharvest diseases of fruit. Annu Rev Phytopathol 40:411–441
Johnson EA, Brekke J (1983) Functional properties of acylated pea protein isolates. J Food Sci 48:722–725
Kimura Y, Ohno A, Takagi S (1997) Structural analysis of N-glycans of storage glycoproteins in soybean (Glycine max. L) seed. Biosci Biotechnol Biochem 61(11):1866–1871
Kramer RP, Hindorf H, Jha HC, Kallage J, Zilliken F (1984) Antifungal activity of soybean and chickpea isoflavones and their reduced derivatives. Phytochem 3l:2203–2205
Laemmli UK (1970) Cleavage of structural proteins during properties of acidic subunits of soyabean 11S globulin. Agric Biol Chem 39:945–951
Masood A, Saeed S, Iqbal N (2010) Methodology for the evaluation of symptoms severity of mango sudden death syndrome in Pakistan. Pak J Bot 42:1289–1299
Moscoso-Ramírez PA, Montesinos-Herrero C, Palou L (2013) Control of citrus postharvest Penicillium moulds with sodium ethylparaben. Crop Prot 46:44–51
Nagano T, Hirotsuka M, Mori H, Kohyama K, Nishinari K (1992) Dynamic viscoelastic study on the gelation of 7S globulin from soybeans. J Agric Food Chem 40:941–944
Osman A, Mahgoub S, Sitohy M (2013) Preservative action of 11S (glycinin) and 7S (β-conglycinin) soy globulin on bovine raw milk stored either at 4 or 25 °C. J Dairy Res 80:174–183
Osman A, El-Didamony G, Sitohy M, Khalifa M, Enan G (2016) Soybean glycinin basic subunit inhibits methicillin resistant vancomycin intermediate Staphylococcus aureus (MRSA-VISA) in vitro. Int J Appl Res Nat Product 9:17–26
Seo A, Morr CV (1984) Improved high performance liquid chromatographic analysis of phenolic acids and isoflavonoids from soybean protein products. J Agric Food Chem 32:530–533
Singleton VL, Rossi JAJ (1965) Colorimetric of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents. Am J Enol Vitic 16:144–158
Sitohy M, Doheim M, Badr H (2007) Isolation and characterization of a lectin with antifungal activity from Egyptian Pisum sativum seeds. Food Chem 104:971–979
Sitohy M, Mahgoub S, Osman A (2012) In vitro and in situ antimicrobial action and mechanism of glycinin and its basic subunit. Int J Food Microbiol 154:19–29
Sitohy M, Mahgoub S, Osman A, El-Masry R, Al-Gaby A (2013) Extent and mode of action of cationic legume proteins against Listeria monocytogenes and Salmonella enteritidis. Probiotics Antimicrob Proteins 5:195–205
Smilanick JL, Mansour MF, Gabler FM, Goodwine WR (2006) The effectiveness of pyrimethanil to inhibit germination of Penicillium digitatum and to control citrus green mould after harvest. Postharvest Biol Technol 42(1):75–85
Sukorini H, Sangchote S, Khewkhom N (2013) Control of postharvest green mold of citrus fruit with yeasts, medicinal plants, and their combination. Postharvest Biol Technol 79:24–31
Talibi I, Askarne L, Boubaker H, Boudyach EH, Msanda F, Saadi B, Ait Ben Oumar A (2012) Antifungal activity of some Moroccan plants against Geotrichum candidum, the causal agent of postharvest citrus sour rot. Crop Protec 35:41–46
Tao N, Fan F, Jia L, Zhang M (2014) Octanal incorporated in postharvest wax of Satsuma mandarin fruit as a botanical fungicide against Penicillium digitatum. Food Control 45:56–61
Torres RC, Nunes JS, Garcia M, Abadias I, Vinas T, Manso M, Olmo Usall J (2007) Application of Pantoea agglomerans CPA-2 in combination with heated sodium bicarbonate solutions to control the major postharvest diseases affecting citrus fruit at several Mediterranean locations. Eur J Plant Pathol 118:73–83
Tripathi P, Dubey NK (2004) Exploitation of natural products as an alternative strategy to control postharvest fungal rotting of fruit and vegetables. Postharvest Biol Technol 32(3):235–245
Tyagi AK, Malik A (2011a) Antimicrobial potential and chemical composition of Eucalyptus globulus oil in liquid and vapor phase against food spoilage microorganisms. Food Chem 126(1):228–235
Tyagi AK, Malik A (2011b) Antimicrobial potential and chemical composition of Mentha piperita oil in liquid and vapor phase against food spoiling microorganisms. Food Control 22(11):1707–1714
Widmer WW, Montanari AM (1996) The potential for citrus phytochemicals in hypernutritious foods. In: Finley JW, Armstrong DJ, Nagy S, Robinson SF (eds) Hypernutritious foods. Agscience, Auburndale, pp 75–89
Yahyazadeh M, Zare R, Omidbaigi R, Faghih-Nasiri M, Abbasi M (2009) Control of Penicillium decay on citrus fruit using essential oil vapors of thyme or clove inside polyethylene and nano-clay polyethylene films. J Hortic Sci Biotechnol 84(4):403–409
Yamunarani K, Jaganathan R, Bhaskaran R, Govindaraju P, Velazhahan R (2005) In vitro antifungal activity of a 29-kDa glycoprotein purified from the galls of Quercus infectoria. Acta Phytopathol Entomol Hungarica 40:43–54
Yildiz F, Kinay P, Yildiz M, Sen F, Karacali I (2005) Effects of preharvest applications of CaCl2, 2,4-D and benomyl and postharvest hot water, yeast and fungicide treatments on development of decay on Satsuma mandarins. J Phytopathol 153:94–98
Zamani M, Sharifi Tehrani A, Ahmadzadeh M, Hosseininaveh V, Mostofy Y (2009) Control of Penicillium digitatum on orange fruit combining Pantoea agglomerans with hot sodium bicarbonate dipping. J Plant Pathol 91(2):437–442
