Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Ảnh hưởng của dạng than hoạt tính đến sự hình thành gọi mô phôi trong cây dừa (Cocos nucifera)
Tóm tắt
Sự phát triển của các quy trình nhân giống vi mô cho cây dừa Cocos nucifera diễn ra chậm chóng. Than hoạt tính được đưa vào môi trường nuôi cấy của mỗi quy trình, chủ yếu nhằm ngăn ngừa việc đổi màu mô. Quy trình sản xuất than có thể ảnh hưởng đến các đặc tính của các thương hiệu khác nhau. Trong nghiên cứu này, tám loại than hoạt tính đã được đánh giá về tác động của chúng đến mức độ 2,4-dichlorophenoxyacetic acid tự do, pH, độ dẫn điện và độ thẩm thấu của môi trường nuôi cấy cũng như tần suất hình thành gọi mô phôi. Hơn nữa, ảnh hưởng của kích thước hạt của loại than tối ưu đến sự phát triển của gọi mô phôi cũng được nghiên cứu. Loại than có ảnh hưởng đáng kể đến các thuộc tính của môi trường nuôi cấy (Y3). Mức 2,4-D tự do cao nhất trong môi trường chứa Reactivos y Productos Químicos Finos và pH thấp nhất trong môi trường chứa MERCK. Loại than cũng ảnh hưởng đến việc hình thành gọi mô phôi, trong đó, môi trường rửa axit cho nuôi cấy tế bào và mô thực vật, DARCO, và môi trường chứa Dược điển Hoa Kỳ thúc đẩy khoảng 60% gọi mô phôi, nhưng với các nồng độ 2,4-D tối ưu khác nhau. Hồ sơ kích thước hạt khác nhau giữa tất cả các loại than, mặc dù phần hạt nhỏ (<38 μm) dồi dào trong tất cả các loại. Việc sử dụng các phần hạt nhỏ tạo ra tần suất gọi mô phôi cao hơn (70%) so với các phần hạt lớn hoặc toàn bộ than.
Từ khóa
#than hoạt tính #mô phôi #cây dừa #Cocos nucifera #nhân giống vi mô #axit 2 #4-DTài liệu tham khảo
Berthon J-Y, Boyer N, Gaspar T (1991) Uptake, distribution and metabolism of 2,4-dichlorophenoyacetic acid in shoots of juvenile and mature clones of Sequoiadendron giganteum in relation to rooting in vitro. Plant Physiol Biochem 29(4):355–362
Blake J (1990) Coconut (Cocos nucifera L.): micropropagation. In: Bajaj YPS (ed) Biotechnology in agriculture and forestry Legumes and Oilseed Crops I, vol 10. Springer, Berlin, pp 538–554
Carlberg I, Glimelius K, Eriksson T (1983) Improved culture ability of potato protoplasts by use of activated charcoal. Plant Cell Rep 2:223–225
Chan JL, Sáenz L, Talavera C, Hornung R, Robert M, Oropeza C (1998) Regeneration of coconut (Cocos nucifera L.) from plumule explants through somatic embryogenesis. Plant Cell Rep 17:515–521
Chee PP, Tricoli DM (1988) Somatic embryogenesis and plant regeneration from cell suspension cultures of Cucumis sativus L. Plant Cell Rep 7:274–277
Dumas E, Monteuuis O (1995) In vitro rooting of micropropagated shoots from juvenile and mature Pinus pinaster explants: influence of activated charcoal. Plant Cell Tiss Org Cult 40:231–235
Ebert A, Taylor HF (1990) Assessment of the changes of 2, 4-dichlorophenoxyacetic acid concentrations in plant tissue culture media in the presence of activated charcoal. Plant Cell Tiss Org Cult 20:165–172
Ebert A, Taylor F, Blake J (1993) Changes of 6-benzylaminopurine and 2, 4-dichlorophenoxyacetic acid concentrations in plant tissue culture media in the presence of activated charcoal. Plant Cell Tiss Org Cult 33:157–162
Eeuwens CJ (1976) Mineral requirements for growth and callus initiation of tissue explants excised from mature coconut palms (Cocos nucifera) and date (Phoenix dactylifera) palms cultured in vitro. Physiol Plant 42:173–178
Gaspar T, Kevers C, Penel C, Greppin H, Reid DM, Thorpe TA (1996) Plant hormones and plant growth regulators in plant tissue culture. In vitro Cell Dev Biol-Plant 32:272–289
Hornung R (1995) Micropropagation of Cocos nucifera L from plumular tissue excised from mature zygotic embryos. Plant Rech Dev 2:38–41
Mensuali-Sodi A, Panizza M, Serra G, Tognoni F (1993) Involvement of activated charcoal in the modulation of abiotic and biotic ethylene levels in tissue cultures. Sci Hort 54:49–57
Mohamed-Yasseen Y (2001) Influence of agar and activated charcoal on uptake of gibberellin and plant morphogenesis in vitro. In vitro Cell Dev Biol-Plant 37:204–205
Oropeza C, Rillo E, Hocher V, Verdeil J-L (2005) Coconut micropropagation. In: Batugal P, Rao RV, Oliver J (eds) Coconut Genetic Resources. International Plant Genetic Resources Institute–Regional Office for Asia, the Pacific and Oceania (IPGRI-APO). Serdang, Selangor, pp 334–348
Pan MJ, van Staden J (1998) The use of charcoal in in vitro culture-a review. Plant Growth Regul 26:155–163
Perera PIP, Hocher V, Verdeil JL, Doulbeau S, Yakandawala DMD, Weerakoon LK (2007) Unfertilized ovary: a novel explant for coconut (Cocos nucifera L.) somatic embryogenesis. Plant Cell Rep 26:21–28
Perera PIP, Yakandawala DMD, Hocher V, Verdeil J-L, Weerakoon LK (2009) Effect of growth regulators on microspore embryogenesis in coconut anthers. Plant Cell Tiss Org Cult 96:171–180
Pérez-Nuñez MT, Chan JL, Sáenz L, González T, Verdeil JL, Oropeza C (2006) Improved somatic embryogenesis from Cocos nucifera (L.) plumule explants. In Vitro Cell Dev Biol-Plant 42:37–43
Sáenz L, Chan JL, Souza R, Hornung R, Rillo E, Verdeil J-L, Oropeza C (1999) Somatic embryogenesis and regeneration in coconut from plumular explants. In: Oropeza C, Verdeil J-L, Ashburner GR, Cardeña R, Santamaría J (eds) Current Advances in Coconut Biotechnology. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, pp 309–319
Sáenz L, Azpeitia A, Chuc-Armendariz B, Chan JL, Verdeil J-L, Hocher V, Oropeza C (2006) Morphological and histological changes during somatic embryo formation from coconut plumule explants. In Vitro Cell Dev Biol-Plant 42:19–25
Tisserat B (1979) Propagation of date palm (Phoenix dactylifera L.) in vitro. J Exp Bot 30:1275–1283
Van Winkle SC, Pullman GS (2003) The combined impact of pH and activated carbon on the elemental composition of a liquid conifer embryogenic tissue initiation medium. Plant Cell Rep 22:303–311
Van Winkle SC, Johnson S, Pullman GS (2003) The impact of Gelrite and activated carbon on the elemental composition of two conifer embryogenic tissue initiation media. Plant Cell Rep 21:1175–1182
Verdeil J-L, Buffard-Morel J (1995) Somatic embryogenesis in coconut (Cocos nucifera L.). In: Bajaj YPS (ed) Biotechnology in agriculture and forestry somatic embryogenesis and synthetic seed I, vol 30. Springer, Berlin, pp 299–317
Weatherhead MA, Burdon L, Henshaw GG (1978) Some effects of activated charcoal as an additive to plant tissue culture media Z. Pflanzenphysiol 89:141–147