Tác động của các tác nhân cytoxic lên sự cấy ghép khối u trong khoang bụng sau phẫu thuật nội soi

Diseases of the Colon & Rectum - Tập 42 - Trang 10-15 - 1999
Susan J. Neuhaus1, David I. Watson1, Tanya Ellis2, Allan M. Rofe3, Glyn G. Jamieson2
1From The Royal Adelaide Centre for Endoscopic Surgery, Royal Adelaide Hospital, Australia
2University of Adelaide Department of Surgery, Royal Adelaide Hospital, Australia
3Institute of Medical and Veterinary Science, Adelaide

Tóm tắt

MỤC ĐÍCH: Các nghiên cứu thực nghiệm gần đây cho thấy rằng phẫu thuật nội soi cho các khối u ác tính ở ổ bụng có thể liên quan đến việc tăng cường sự cấy ghép khối u. Nghiên cứu này điều tra ảnh hưởng của các tác nhân cytoxic (được tiêm vào trong khoang bụng hoặc tiêm bắp) đối với sự cấy ghép của huyền phù tế bào khối u sau phẫu thuật nội soi trong một mô hình thực nghiệm. PHƯƠNG PHÁP: Ba mươi ba con chuột Dark Agouti đã được phẫu thuật nội soi với bơm khí CO2 và tiêm huyền phù tế bào khối u vào khoang bụng. Các chuột được phân bổ ngẫu nhiên vào một trong các nhóm nghiên cứu sau (9 con chuột trong nhóm đối chứng, 6 con chuột trong tất cả các nhóm còn lại): 1) nhóm đối chứng (không tiêm vào trong khoang bụng); 2) dung dịch muối sinh lý (0.9 phần trăm) tiêm vào trong khoang bụng; 3) povidone-iodine (Betadine® pha với dung dịch muối sinh lý tỷ lệ 1:10) tiêm vào trong khoang bụng; 4) methotrexate tiêm vào trong khoang bụng (2 liều 0.125 mg/kg trọng lượng cơ thể trong dung dịch muối sinh lý, cách nhau 24 giờ); 5) tiêm bắp 2 liều 0.125 mg/kg trọng lượng cơ thể cách nhau 24 giờ (không có tác nhân nào trong khoang bụng). Các con chuột đã bị giết 7 ngày sau thủ thuật, và khoang bụng và vị trí cổng được kiểm tra sự hiện diện của khối u. KẾT QUẢ: Một sự giảm đáng kể trong sự cấy ghép khối u và di căn tại vị trí cổng đã được quan sát thấy ở tất cả các nhóm điều trị (povidone-iodine và methotrexate tiêm bắp và tiêm vào trong khoang bụng). KẾT LUẬN: Nghiên cứu này gợi ý rằng sự cấy ghép khối u sau phẫu thuật nội soi và di căn tại vị trí cổng có thể được ngăn ngừa bằng cách tiêm vào trong khoang bụng hoặc tiêm hệ thống các tác nhân cytoxic. Cần có thêm các nghiên cứu để xác định xem những phát hiện này có thể được áp dụng vào thực tiễn lâm sàng hay không.

Từ khóa


Tài liệu tham khảo

Nduka CC, Monson JR, Menzies Gow N, Darzi A. Abdominal wall metastases following laparoscopy. Br J Surg 1994;81:648–52. Wibbenmeyer LA, Wade TP, Chen RC, Meyer RC, Turgeon RP, Andrus CH. Laparoscopic cholecystectomy can disseminate in situ carcinoma of the gallbladder. J Am Coll Surg 1995;181:504–10. Martinez J, Targarona EM, Balague C, Pera M, Trias M. Port site metastasis. An unresolved problem in laparoscopic surgery. A review. Int Surg 1995;80:315–21. Mathew G, Watson DI, Rofe AM, Baigrie CF, Ellis T, Jamieson GG. Wound metastases following laparoscopic and open surgery for abdominal cancer in a rat model. Br J Surg 1996;83:1087–90. Champault G, Lauroy J, Rizk N, Boutelier P. Neoplastic colonization of trocar paths. Should laparoscopic surgery be stopped for digestive cancers? [letter]. Presse Med 1994;23:1313. Wexner SD, Cohen SM, Ulrich A, Reissman P. Laparoscopic colorectal surgery—are we being honest with our patients? Dis Colon Rectum 1995;38:723–7. Hewett PJ, Thomas WM, King G, Eaton M. Intraperitoneal cell movement during abdominal carbon dioxide insufflation and laparoscopy: an in vivo model. Dis Colon Rectum 1996;39:S62–6. Thomas WM, Eaton MC, Hewett PJ. A proposed model for the movement of cells within the abdominal cavity during CO2 insufflation and laparoscopy. Aust N Z J Surg 1996;66:105–6. Watson DI, Mathew G, Ellis T, Baigrie CF, Rofe AM, Jamieson GG. Gasless laparoscopy may reduce the risk of port-site metastases following laparoscopic tumour surgery. Arch Surg 1997;132:166–8. Allardyce R, Morreau P, Bagshaw P. Tumor cell distribution following laparoscopic colectomy in a porcine model. Dis Colon Rectum 1996;39:S47–52. Whelan RL, Sellers GJ, Allendorf JD, et al. Trocar site recurrence is unlikely to result from aerosolization of tumor cells. Dis Colon Rectum 1996;39:S7–13. Jacquet P, Sugarbaker PH. Wound recurrence after laparoscopic colectomy for cancer. New rationale for intraoperative intraperitoneal chemotherapy [Editorial]. Surg Endosc 1996;10:295–6. Sugarbaker PH, Cunliffe WJ, Belliveau J, et al. Rationale for integrating early postoperative intraperitoneal chemotherapy into the surgical treatment of gastrointestinal cancer. Semin Oncol 1989;16:83–97. Neuhaus SJ, Watson DI, Ellis T, et al. Wound metastasis following different insufflation gases. Surgery 1998;123:579–83. Mathew G, Watson DI, Rofe AM, Ellis T, Jamieson GG. Adverse impact of pneumoperitoneum on intraperitoneal implantation and growth of tumour cell suspension in an experimental model. Aust N Z J Surg 1977;67:289–92. Allendorf JD, Bessler M, Kayton ML, et al. Increased tumor establishment and growth after laparotomy vs laparoscopy in a murine model. Arch Surg 1995;130:649–53. Allendorf JD, Bessler M, Kayton ML, Whelan RL, Treat MR, Nowygrod R. Tumor growth after laparotomy or laparoscopy. A preliminary study. Surg Endosc 1995;9:49–52. Bouvy ND, Marquet RL, Jeekel H, Bonjer HJ. Impact of gas(less) laparoscopy and laparotomy on peritoneal tumor growth and abdominal wall metastases. Ann Surg 1996;224:694–700. Bouvy ND, Marquet RL, Jeekel H, Bonjer HJ. Gasless laparoscopy versus CO2 pneumoperitoneum in relation to the development of abdominal wall metastases [abstract]. Surg Endosc 1996;10:181. Jacobi CA, Sabat R, Bohm B, Zieren HU, Volk HD, Muller JM. Pneumoperitoneum with carbon dioxide stimulates growth of malignant colonic cells. Surgery 1997;121:72–8. Neuhaus SJ, Watson DI, Ellis T, Dodd T, Rofe AM, Jamieson GG. Efficacy of cytotoxic agents for the prevention of port site metastases. Arch Surg 1998;133:762–6. Rofe AM, Bourgeois CS, Washington JM, Philcox JC, Coyle P. Metabolic consequences of methotrexate therapy in tumour-bearing rats. Immunol Cell Biol 1994;72:43–8. Eggermont AM, Steller EP, Marquet RL, Jeekel J, Sugarbaker PH. Local regional promotion of tumor growth after abdominal surgery is dominant over immunotherapy with interleukin-2 and lymphokine activated killer cells. Cancer Detect Prev 1988;12:421–9. Cirocco WC, Schwartzman A, Golub RW. Abdominal wall recurrence after laparoscopic colectomy for colon cancer. Surgery 1994;116:842–6. Jacobi CA, Keller H, Monig S, Said S. Implantation metastasis of unsuspected gallbladder carcinoma after laparoscopy. Surg Endosc 1995;9:351–2. Cotlar AM, Mueller CR, Pettit JW, Schmidt ER, Villar HV. Case report and literature review. Trocar site seeding of inapparent gallbladder carcinoma during laparoscopic cholecystectomy. J Laparoendosc Surg 1996;6:35–45. Fortner JGL. Implantation of gastric cancer in abdominal wounds. Ann Surg 1960;152:789–94. Jacquet P, Stuart OA, Dalton R, Chang D, Sugarbaker PH. Effect of intraperitoneal chemotherapy and fibrinolytic therapy on tumor implantation in wound sites. J Surg Oncol 1996;62:128–34. Wade TP, Comitalo JB, Andrus CH, Goodwin MN Jr, Kaminski DL. Laparoscopic cancer surgery. Lessons from gallbladder cancer. Surg Endosc 1994;8:698–701. Fisher B, Gunduz N, Saffer EA. Influence of the interval between primary tumor removal and chemotherapy on kinetics and growth of metastases. Cancer Res 1983;43:1488–92. Segna RA, Dottino PR, Jennings TS, Cohen CJ. Feasibility of intraoperative administration of chemotherapy for gynecologic malignancies: assessment of acute postoperative morbidity. Gynecol Oncol 1993;48:227–31. Markman M. Intraperitoneal antineoplastic agents for tumors principally confined to the peritoneal cavity. Cancer Treat Rev 1986;13:219–42. Docherty JG, McGregorm JR, Purdie CA, Galloway DJ, O'Dwyer PJ. Efficacy of tumoricidal agents in vitro and in vivo. Br J Surg 1995;82:1050–2. Umpleby HC, Williamson RC. The efficacy of agents employed to prevent anastomotic recurrence in colorectal carcinoma. Ann R Coll Surg Engl 1984;66:192–4.