Ảnh hưởng của Axit Humic và Một Số Điều Chỉnh Sinh Trưởng Chính Đến Củ Cải Đường (Beta vulgaris L.) Dưới Điều Kiện Stress Hạn: Hệ Thống Phòng Thủ Chống Oxy Hóa, Các Đặc Điểm Quang Hợp và Năng Suất Đường

Sugar Tech - Tập 22 - Trang 765-772 - 2020
Shahram Khodadadi1, Mohammad Ali Chegini2, Afshin Soltani3, Hossein Ajam Norouzi1, Saeed Sadeghzadeh Hemayati2
1Department of Agriculture, Gorgan Branch, Islamic Azad University, Gorgan, Iran
2Sugar Beet Seed Institute, Agricultural Research, Education and Extension Organization (AREEO), Karaj, Iran
3Department of Agronomy, Gorgan University of Agricultural Sciences and Natural Resources, Gorgan, Iran

Tóm tắt

Để đánh giá tác động của axit humic và ba chất điều chỉnh tăng trưởng tiềm năng như axit salixilic (SA), axit gibberellic (GA3) và axit ascorbic (AsA) trên củ cải đường dưới điều kiện stress hạn, một thí nghiệm thực địa được thực hiện theo thiết kế khối hoàn toàn ngẫu nhiên với phương pháp phân chia ô. Các ô chính bao gồm ba chế độ tưới nước: tưới đủ nước, 60% khả năng giữ ẩm (stress nước nhẹ) và 45% khả năng giữ ẩm (stress nước nặng). Việc phun foliar axit humic, SA, GA3 và AsA được phân bổ vào các ô phụ. Cả hai chế độ stress hạn đều gây ra sự suy giảm về sản lượng rễ, hàm lượng đường, hàm lượng chất diệp lục, hàm lượng nước tương đối và chỉ số diện tích lá. Ngược lại, stress hạn dẫn đến sự gia tăng đáng kể hoạt động của superoxide dismutase, peroxidase và catalase cũng như mức độ của proline, glycine betaine, malondialdehyde và hydrogen peroxide trong cây củ cải đường. Tuy nhiên, việc phun foliar axit humic, SA, GA3 và AsA đã làm tăng hợp lý các hoạt động/các mức độ của các chất chống oxy hóa enzym và không enzym cũng như các oxy hóa hữu cơ cần thiết. Các phát hiện hiện tại cho thấy việc áp dụng axit humic từ bên ngoài là hiệu quả trong việc điều chỉnh cây đường thích ứng tốt trong các vùng dễ bị hạn.

Từ khóa

#Axit humic #Cải đường #Stress hạn #Chất điều chỉnh tăng trưởng #Chất chống oxy hóa

Tài liệu tham khảo

Ashraf, M., and M. Foolad. 2007. Roles of glycine betaine and proline in improving plant abiotic stress resistance. Journal of Environmental and Experimental Botany 59(2): 206–216. Ashraf, M., and P.J. Harris. 2013. Photosynthesis under stressful environments: An overview. Photosynthetica 51(2): 163–190. Bahrami, M., M. Honarvar, K. Ansari, and B. Jamshidi. 2020. Measurement of quality parameters of sugar beet juices using near-infrared spectroscopy and chemometrics. Journal of Food Engineering 271: 109775. Bates, L.S., R.P. Waldren, and I.D. Teare. 1973. Rapid determination of free proline for water-stress studies. Plant and Soil 39(1): 205–207. Chance, B., and A. Maehly. 1955. Assay of catalases and peroxidases. Methods in Enzymology 2: 764–775. Chavoushi, M., F. Najafi, A. Salimi, and S. Angaji. 2020. Effect of salicylic acid and sodium nitroprusside on growth parameters, photosynthetic pigments and secondary metabolites of safflower under drought stress. Scientia Horticulturae 259: 108823. Dotto, L., and V. Silva. 2017. Beet seed priming with growth regulators. Semina: Ciências Agrárias 38(4): 1785–1798. El-All, A., and B. Makhlouf. 2017. Response of sugar beet to continuous deficit Irrigation and foliar application of some micronutrients under sandy soil conditions. Journal of Soil Sciences and Agricultural Engineering 8(12): 749–760. El-Gamal, I., M. Abd El Aal, S. El Desouky, Z. Khedr, and K. Abo Shady. 2016. Effect of some growth substances on growth, chemical compositions and root yield productivity of sugar beet (Beta vulgaris L.) plant. Journal Middle East Journal of Agriculture Research 5: 171–185. Farooq, M., S. Basra, A. Wahid, N. Ahmad, and B. Saleem. 2009. Improving the drought tolerance in rice (Oryza sativa L.) by exogenous application of salicylic acid. Journal of Agronomy and Crop Science 195(4): 237–246. Ghaffari, H., M. Tadayon, M. Nadeem, J. Razmjoo, and M. Cheema. 2020. Foliage applications of jasmonic acid modulate the antioxidant defense under water deficit growth in sugar beet. Spanish Journal of Agricultural Research 17(4): 1–12. Giannopolitis, C., and S. Ries. 1977. Superoxide dismutases: I. Occurrence in higher plants. Plant Physiology 59(2): 309–314. Grieve, C., and S. Grattan. 1983. Rapid assay for determination of water soluble quaternary ammonium compounds. Plant and Soil 70(2): 303–307. Havir, E., and N. McHale. 1987. Biochemical and developmental characterization of multiple forms of catalase in tobacco leaves. Plant Physiology 84(2): 450–455. Hoffmann, C. 2010. Sucrose accumulation in sugar beet under drought stress. Journal of Agronomy and Crop Science 196(4): 243–252. Khan, A., and N. Chaudhry. 2006. GA3 improves flower yield in some cucurbits treated with lead and mercury. Journal of African Journal of Biotechnology 5(2): 149–153. Li, G., H. Wu, Y. Sun, and S. Zhang. 2013. Response of chlorophyll fluorescence parameters to drought stress in sugar beet seedlings. Russian Journal of Plant Physiology 60(3): 337–342. Moharramnejad, S., A. Azam, J. Panahandeh, Z. Dehghanian, and M. Ashraf. 2019a. Effect of methyl jasmonate and salicylic acid on in vitro growth, stevioside production, and oxidative defense system in Stevia rebaudiana. Sugar Tech 21(6): 1031–1038. Moharramnejad, S., O. Sofalian, M. Valizadeh, A. Asghari, M. Shiri, and M. Ashraf. 2019b. Response of maize to field drought stress: Oxidative defense system, osmolytes’ accumulation and photosynthetic pigments. Pakistan Journal of Botany 51(3): 799–807. Mubarak, M., M. Zahir, S. Ahmad, and A. Wakeel. 2016. Sugar beet yield and industrial sugar contents improved by potassium fertilization under scarce and adequate moisture conditions. Journal of Integrative Agriculture 15(11): 2620–2626. Rassam, G., A. Dadkhah, A. Yazdi, and M. Dashti. 2015. Impact of humic acid on yield and quality of sugar beet (Beta vulgaris L.) grown on calcareous soil. Notulae Scientia Biologicae 7(3): 367–371. Shaki, F., H. Ebrahimzadeh Maboud, and V. Niknam. 2019. Effects of salicylic acid on hormonal cross talk, fatty acids profile, and ions homeostasis from salt-stressed safflower. Journal of Plant Interactions 14(1): 340–346. Sharma, A., B. Shahzad, V. Kumar, S.K. Kohli, G.P.S. Sidhu, A.S. Bali, N. Handa, D. Kapoor, R. Bhardwaj, and B. Zheng. 2019. Phytohormones regulate accumulation of osmolytes under abiotic stress. Biomolecules 9(7): 1–36. Wei, L., B. Lv, X. Li, M. Wang, H. Ma, H. Yang, R. Yang, Z. Piao, Z. Wang, and J. Lou. 2017. Priming of rice (Oryza sativa L.) seedlings with abscisic acid enhances seedling survival, plant growth, and grain yield in saline-alkaline paddy fields. Journal of Field Crops Research 203: 86–93. Zhang, L., M. Gao, L. Zhang, B. Li, M. Han, A. Alva, and M. Ashraf. 2013. Role of exogenous glycinebetaine and humic acid in mitigating drought stress-induced adverse effects in Malus robusta seedlings. Turkish Journal of Botany 37(5): 920–929. Zhu, J. 2016. Abiotic stress signaling and responses in plants. Cell 167(2): 313–324.