Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Kích thích và phòng ngừa tổn thương tiền ung thư do chất gây ung thư gây ra trong nuôi cấy mô tuyến vú chuột
Tóm tắt
Các tuyến vú chuột phản ứng với hormone kích thích tăng trưởng trong nuôi cấy mô. Trong điều kiện có insulin, prolactin, aldosterone và hydrocortisone, các tuyến tiết ra sự phát triển mạnh mẽ trong vòng 10 ngày nuôi cấy, tái tạo các cấu trúc nang vú quan sát thấy trong thời kỳ mang thai. Tuy nhiên, việc ngừng cung cấp prolactin và steroid từ môi trường trong 14 ngày tiếp theo dẫn đến sự phân hủy của các cấu trúc nang, tương tự như hình thái tuyến vú quan sát thấy trong giai đoạn thoái hóa. Trong giai đoạn phát triển, nếu các tuyến tiếp xúc với 7, 12-dimethylbenz(a)anthracene (DMBA) trong 24 giờ và được nuôi cấy trong suốt 24 ngày, chúng phát triển các tổn thương tiền ung thư. Mô hình này có thể tái tạo cao và được sử dụng rộng rãi để đánh giá hiệu quả của các tác nhân phòng ngừa hóa học tiềm năng đối với các tổn thương vú do chất gây ung thư.
Từ khóa
#tuyến vú chuột #hormone kích thích tăng trưởng #tổn thương tiền ung thư #nuôi cấy mô #chất gây ung thư #phòng ngừa hóa họcTài liệu tham khảo
Nandi S (1958). Endocrine control of mammary gland development and function in the C3H/He crgl mouse. J Natl Cancer Inst 21: 1039–1063.
Rosen JM, Humphreys R, Krnack S, Juo P, Raught B (1994). The regulation of mammary gland development by hormones, growth factors and oncogenes. Prog Clin Biol Res 387: 95–111.
Ip MM, Darcey KM (1996). Three dimensional mammary primary culture model systems. J Mam Gland Biol and Neopl 1: 91–110.
Mehta RG, Banerjee MR (1975). Hormonal regulation of marcomolecular biosynthesis during lobulo-alveolar development of mouse mammary gland in organ culture. Acta Endocrinol 80: 501–517.
Banerjee MR, Antoniou M (1984). Serum free culture of the isolated whole mammary organ of the mouse: a model for study of differentiation and carcinogenesis. In: Barnes DW, Sirbasku A, Sato GH (eds), Methods for serum free culture of cells of the endocrine origin. New York: Alan R Liss, pp 143–149.
Ichinose RR, Nandi S (1966). Influence of hormones on lobulo-alveolar differentiation of mouse mammary gland in vitro. J Endocrinol 35: 331–340.
Ganguly R, Mehta NM, Ganguly N, Banerjee MR (1980). Glucocorticoid modulation of casein gene transcription in mouse mammary gland. Proc Natl Acad Sci (USA) 76: 6466–6470.
Tonelli QJ, Sorof S (1980). Epidermal growth factor requirement for development of cultured mammary gland. Nature 285: 250–252.
Lin FK, Banerjee MR, Cump LR (1976). Cell cycle related hormone carcinogen interaction during chemical carcinogen induction of nodule-like mammary lesions in organ culture. Cancer Res 36: 1607–1614.
Mehta RG, Liu J, Constantinou A, Thomas CF, Hawthorne M, You M, Gerhauser C, Pezzuto JM, Moon RC, Moriarty RM (1995). Cancer chemopreventive activity of brassinin, a phytoallexin from cabbage. Carcinogensis 16: 399–404.
Telang NT, Banerjee MR, Iyer AP, Kundu AB (1979). Neoplastic transformation of epithelial cells in whole mammary gland in vitro. Proc Natl Acad Sci (USA) 76: 5886–5890.
Mehta RG, Steele V, Kelloff GJ, Moon C (1991). Influence of thiols and inhibitors of prostaglandin biosynthesis on the carcinogen-induced development of mammary lesions in vitro. Anticancer Res 11: 587–592.
Dickens MS, Custer RF, Sorof S (1979). Retinoid prevents mammary gland transformation by carcinogen hydrocarbon in whole organ culture. Proc Natl Acad Sci (USA) 76: 5891–5895.
Hawthorne M, Singh M, Thompson HT, Steele V, Kelloff GJ, Mehta RG (1996). Induction of DMBA-induced mammary ductal lesions in organ culture: A model for human DCIS. Proc Am Assoc Cancer Res 37: 222.
Steele VE, Sharma S, Mehta RG, Elmore E, Redpath JL, Rudd C, Bahgeri D, Sigman CC, Kelloff GJ (1997). Use of in vitro assays to predict the efficacy of chemopreventive agents in whole animals. J Cell Biochem 26 (suppl): 23–46.
Gerhauser C, Woongchon M, Lee SK, Suh N, Luo Kosmeder J, Luyengi, Fong HS, Kinghorn AD, Moriarty RM, Constantinou A, Mehta RG, Moon RC, Pezzuto JM (1996). Rotenoids mediate potent cancer chemopreventive activity through transcriptional regulation of ornithine decarboxylase. Nature Medicine 1: 260–266.
Mehta RG, Hultin TA, Moon C (1988). Metabolism of N-[4-hydroxyphenyl] retinamide by mammary gland organ culture. Biochem J 256: 579–584.
Hultin TA, May CM, Moon RC (1986). N-[4-hydroxyphenyl] retinamide pharmacokinetics in female rats and mice. Drug Metab Disp 14: 714–717.
Mehta RG, Moon C, Hawthorne M, Formelli F, Costa A (1991). Distribution of fenretinide in the mammary gland of breast cancer patients. Eur J Cancer 27: 138–141.