Tác Động Của Cây Tầm Gửi Đồng Ruộng (Cuscuta campestris Yunk.) Đến Huỳnh Quang Chloroform Và Hàm Lượng Chloroform Của Cây Tàu Hủ Và Cây Củ Cải Đường

Pleiades Publishing Ltd - Tập 65 - Trang 726-731 - 2018
M. Saric-Krsmanovic1, D. Bozic2, Lj. Radivojevic1, J. Gajic Umiljendic1, S. Vrbnicanin2
1Institute of Pesticides and Environmental Protection, Belgrade, Serbia
2Faculty of Agriculture, University of Belgrade, Belgrade, Serbia

Tóm tắt

Tác động của cây tầm gửi đồng ruộng (Cuscuta campestris Yunk.) đến huỳnh quang chloroform và hàm lượng chloroform của cây tàu hủ (Medicago sativa L.) và cây củ cải đường (Beta vulgaris L.) đã được khảo sát trong điều kiện kiểm soát. Nhiều tham số của huỳnh quang chloroform đã được đo đạc trên cây tàu hủ và cây củ cải đường bị nhiễm khuẩn và không bị nhiễm khuẩn trong suốt thời gian 20 ngày, bắt đầu từ ngày nhiễm khuẩn. Hàm lượng chloroform (tổng, tương đối và tỷ lệ giữa chloroform a và b) được xác định vào các thời điểm 1, 7, 14 và 20 ngày sau khi nhiễm (DAI). Cây tầm gửi đồng ruộng được phát hiện là ảnh hưởng đến cả hàm lượng chloroform tổng và tương đối trong cây tàu hủ và cây củ cải đường bị nhiễm khuẩn, gây ra sự giảm đáng kể trong hàm lượng chloroform của cả hai cây ký chủ. Cây ký sinh này cũng ảnh hưởng đến một số tham số của huỳnh quang chloroform (Fo, Fv/Fm, ΦPSII, Fv và IF), cho thấy rằng những tham số này có thể được coi là những chỉ số nhạy cảm về tác động mà cây tầm gửi đồng ruộng gây ra cho các cây ký chủ.

Từ khóa

#cây tầm gửi #huỳnh quang chloroform #hàm lượng chloroform #cây tàu hủ #cây củ cải đường

Tài liệu tham khảo

Stefanovic, S., Kuzmina, M., and Costea, M., Delimitation of major lineages within Cuscuta subgenus Grammica (Convolvulaceae) using plastid and nuclear DNA sequences, Am. J. Bot., 2007, vol. 94, pp. 568–589. Press, M.C. and Phoenix, G.K., Impacts of parasitic plants on natural communities, New Phytol., 2005, vol. 166, pp. 737–751. Losner-Goshen, D., Portnoy, V.H., Mayer, A.M., and Joel, D.M., Pectolytic activity by the haustorium of the parasitic plant Orobanche L. (Orobanchaceae) in host roots, Ann. Bot., 1998, vol. 81, pp. 319–326. Hibberd, J.M. and Jeschke, W.D., Solute flux into parasitic plants, J. Exp. Bot., 2001, vol. 52, pp. 2043–2049. Koskela, T., Salonen, V., and Mutikainen, P., Interaction of a host plant and its holoparasite: effects of previous selection by the parasite, J. Evol. Biol., 2001, vol. 14, pp. 910–917. Duraes, F.O.M., Gama, E.E.G., Magalhaes, P.C., Mariel, I.E., Casela, C.R., Oliveira, A.C., Luchiari Junior, A., and Shanahan, J.F., The usefulness of chlorophyll fluorescence in screening for disease resistance, water stress tolerance, aluminum toxicity tolerance, and N use efficiency in maize, Proc. 7th Eastern and Southern Africa Regional Maize Conference, Nairobi, Kenya, February 11–15, 2001, Mexico, 2002, pp. 356–360. Fracheboud, Y., Haldimann, P., Leipner, J., and Stamp, P., Chlorophyll fluorescence as a selection tool for cold tolerance of photosynthesis in maize (Zea mays L.), J. Exp. Bot., 1999, vol. 50, pp. 1533–1540. Moradi, F. and Ismail, A.M., Responses of photosynthesis, chlorophyll fluorescence and ROS-scavenging systems to salt stress during seedling and reproductive stages in rice, Ann. Bot., 2007, vol. 99, pp. 1161–1173. Pavlovic, D., Vrbnicanin, S., Bozic, D., and Fischer, J.A., Morphophysiological traits and atrazine sensitivity in Chenopodium album L., Pest. Manag. Sci., 2008, vol. 64, pp. 101–107. Mandal, K., Saravanan, R., Maiti, S., and Kothari, I.L., Effect of downy mildew disease on photosynthesis and chlorophyll fluorescence in Plantago ovata Forsk, J. Plant Dis. Protect., 2009, vol. 116, pp. 164–168. Lichtenthaler, H.K., In vivo chlorophyll fluorescence as a tool for stress detection in plants, in Applications of Chlorophyll Fluorescence, Lichtenthaler, H.K., Ed., Dordrecht: Kluwer, 1988, pp. 129–142. LeBlanc, M., Kim, G., and Westwood, J.H., RNA trafficking in parasitic plant systems, Front. Plant Sci., 2012, vol. 3: 203. Werner, M., Uehlein, N., Proksch, P., and Kaldenhoff, R., Characterization of two tomato aquaporins and expression during the incompatible interaction of tomato with the plant parasite Cuscuta reflexa, Planta, 2001, vol. 213, pp. 550–555. Richardson, A.D., Duigan, S.P., and Berlyn, G.P., An evaluation of non-invasive methods to estimate foliar chlorophyll content, New Phytol., 2002, vol. 153, pp. 185–194. Wellburn, A.R., The spectral determination of chlorophylls a and b, as well as total carotenoids, using various solvents with spectrophotometers of different resolution, J. Plant Physiol., 1994, vol. 144, pp. 307–313. Vrbničanin, S., Sarić-Krsmanović, M., and Božić, D., The effect of field dodder (Cuscuta campestris Yunck.) on morphological and fluorescence parameters of giant ragweed (Ambrosia trifida L.), Pestic. Phytomed. (Belgrade), 2013, vol. 28, no. 1, pp. 57–62 Furuhashi, T., Kojima, M., Sakakibara, H., Fukushima, A., Hirai, M.Y., and Furuhashi, K., Morphological and plant hormonal changes during parasitization by Cuscuta japonica on Momordican charantia, J. Plant Interact., 2014, vol. 9, pp. 220–232. Jeschke, W.D. and Hilpert, A., Sink-stimulated photosynthesis and sink-dependent increase in nitrate uptake: nitrogen and carbon relations of the parasitic association Cuscuta reflexa–Ricinus communis, Plant Cell Environ., 1997, vol. 20, pp. 47–56. Jeschke, W.D., Baig, A., and Hilpert, A., Sink-stimulated photosynthesis, increased transpiration and increased demand-dependent stimulation of nitrate uptake: nitrogen and carbon relations in the parasitic association Cuscuta reflexa–Coleus blumei, J. Exp. Bot., 1997, vol. 48, pp. 915–925. Klem, K., Špundova, M., Hrabalova, H., Nauš, J., Vanova, M., Masojidek, J., and Tomek, P., Comparison of chlorophyll fluorescence and wholeplant bioassays of isoproturon, Weed Res., 2002, vol. 42, pp. 335–341. Abbaspoor, M., Teicher, H.B., and Streibig, J.C., The effect of root-absorbed PSII inhibitors on Kautsky curve parameters in sugar beet, Weed Res., 2006, vol. 46, pp. 226–235. Van der Kooij, T.A., Krupinska, K., and Krause, K., Tocochromanol content and composition in different species of the parasitic flowering plant genus Cuscuta, J. Plant Physiol., 2005, vol. 162, pp. 777–781. Green, B.R. and Durnford, D.G., The chlorophyll–carotenoid proteins of oxygenic photosynthesis, Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol., 1996, vol. 47, pp. 685–714. Fathoulla, C.N. and Duhoky, M.M.S., Biological and anatomical study of different Cuscuta species, J. Dohuk. Univ., 2008, vol. 11, pp. 22–39.