Xác định sự đa dạng vi sinh vật trong các quá trình loại bỏ dinh dưỡng từ nước thải bằng công nghệ sinh học phân tử

S.J. You1, C.L. Hsu2, C.F. Ouyang1
1Graduated Institute of Environmental Engineering, National Central University, Chungli, Taiwan
2Department of Safety, Health and Environmental Engineering, National Lien-Ho Institute of Technology, Miao-Li, Taiwan

Tóm tắt

Các cộng đồng vi sinh vật của ba mẫu bùn đã được xác định bằng cách sử dụng phương pháp kết hợp giữa clon hóa và Điện di Gel Gradient Bẻ cong (DGGE). Hai cộng đồng được lấy từ bùn hoạt tính và bộ phản ứng sinh học quay (RBC) của một hệ thống lai mới, mang tên TNCU-I, đây là một quá trình bioprocess kết hợp giữa bùn hoạt tính và RBC. Mẫu còn lại được lấy từ bể hiếu khí của một quy trình kị khí-khử nitrat-hiếu khí (A2O) điển hình. Acidovorax defluvii, Hydrogenophaga palleronii và Streptococcus suis là các loại vi khuẩn chủ yếu, tương ứng trong bùn hoạt tính TNCU-I, biofilm RBC TNCU-I và bùn hoạt tính A2O, với tỉ lệ phong phú là 13,2%, 18,7% và 16,5%. Các loại vi khuẩn chủ yếu khác và đặc điểm của chúng trong quá trình xử lý nước thải cũng được mô tả.

Từ khóa

#đa dạng vi sinh vật #nước thải #công nghệ sinh học phân tử #xử lý nước thải #bùn hoạt tính

Tài liệu tham khảo

Ahn J, Daidou T, Tsuneda S, Hirata A (2001) Selection and dominance mechanisms of denitrifying phosphate-accumulating organisms in biological phosphate removal process. Biotechnol. Lett. 23: 2005–2008.

American Public Health Association (1989) Standard Methods for the Examination ofWater and Wastewater, 17th edn. Washington D.C.: APHA.

Bond PL, Hugenholtz P, Keller J, Blackall LL (1995) Bacterial community structures of phosphate-removing and non-phosphate removing activated sludge from sequencing batch reactors. Appl. Environ. Microbiol. 61: 1910–1916.

Eikelboom D (2000) Process Control of Activated Sludge Plants by Microscopic Investigation, 1st edn. London: IWA Publishing, pp. 68–69.

Felske A, Engelen B, Nubel U, Backhaus H (1996) Direct ribosome isolation from soil to extract bacterial rRNA for community analysis. Appl. Environ. Microbiol. 62: 4162–4167.

Holt GJ, Krieg RN, Sneath HP, Staley TJ, Williams TS (1994) Bergey's Manual of Determinative Bacteriology, 9th edn. Maryland: Williams and Wilkins.

Kowalchuk GA, Stephen JR, de Boer W, Prosser JI, Embley TM, Woldendrop JW (1997) Analysis of ammonia-oxidizing bacteria of the β-subdivision of the class Proteobacteria in coastal sand dunes by denaturing gradient gel electrophoresis and sequencing of PCR-amplified 16S ribosomal DNA fragments. Appl. Environ. Microbiol. 63: 1489–1497.

Liu WT, Marsh TL, Cheng H, Forney LJ (1997) Characterization of microbial diversity by determining terminal restriction fragment length polymorphisms of genes encoding 16S rRNA. Appl. Environ. Microbiol. 63: 4516–4522.

Snaidr J, Amman R, Huber I, Ludwig W, Schleifer KH (1997) Phylogenetic analysis and in situ identification of bacteria in activated sludge. Appl. Environ. Microbiol. 63: 2844–2896.

You SJ, Ouyang CF, Lin SF, Chuang SH, Hsu CL (2001a) Anoxic biological phosphorus uptake/release with high/low intracellular polymer. J. Environ. Eng. ASCE 127: 838–843.

You SJ, Liu WT, Onuki M, Mino T, Satoh H, Matsuo T, Ouyang CF (2001b) Identification of predominant microbial populations in a non-phosphate removal anaerobic aerobic bioreactor fed with fermented products. In: Matsuo T, Hanaki K, Takizawa S, Satoh H, eds. Advances in Water and Wastewater Treatment Technology - Molecular Technology, Nutrient Removal, Sludge Reduction, and Environmental Health. New York: Elsevier Science, pp. 207–216.