Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Kết quả ICSI cho nam giới vô sinh bị thiểu tinh trùng nặng hoặc hoàn toàn
Tóm tắt
Thiểu tinh trùng nặng hoặc hoàn toàn là một hiện tượng hiếm gặp có thể dẫn đến vô sinh ở nam giới. Trong nghiên cứu này, chúng tôi khám phá xem các mức độ khác nhau của thiểu tinh trùng nặng hoặc hoàn toàn có thể ảnh hưởng đến kết quả tiêm tinh trùng vào bào tương (ICSI) và so sánh kết quả ICSI giữa việc sử dụng tinh trùng từ tinh hoàn và tinh trùng từ tinh dịch ở các cặp đôi có thiểu tinh trùng hoàn toàn. Chín mươi bảy cặp đôi bị thiểu tinh trùng nặng hoặc hoàn toàn đã trải qua ICSI từ tháng 1 năm 2014 đến tháng 12 năm 2018 đã được đưa vào nghiên cứu. Theo loại tinh trùng được sử dụng trong ICSI, bệnh nhân được phân loại thành bốn nhóm: nhóm tinh trùng tiến động từ tinh dịch (Nhóm Ep), nhóm tinh trùng không tiến động từ tinh dịch (Nhóm En), nhóm tinh trùng bất động từ tinh dịch (Nhóm Ei) và nhóm tinh trùng từ tinh hoàn (Nhóm TESE). Chúng tôi so sánh các đặc điểm cơ bản, hồ sơ hormone, các tham số tinh dịch, tỷ lệ thụ tinh bình thường, phôi chất lượng tốt vào ngày thứ 3, phôi được chuyển và kết quả ICSI của bốn nhóm. Tỷ lệ mang thai lâm sàng tăng đáng kể ở nhóm Ep (65.4%, P = 0.019) và nhóm TESE (63.6%, P = 0.035) so với nhóm Ei (23.1%). Tỷ lệ mang thai đang tiếp diễn ở nhóm Ei thấp hơn đáng kể so với nhóm Ep (23.1% so với 61.5%, P = 0.041). Hơn nữa, tỷ lệ mang thai hóa sinh, tỷ lệ mang thai đang tiếp diễn và tỷ lệ sinh sống thấp hơn nhiều ở nhóm Ei so với nhóm TESE (30.8% so với 63.6%, 23.1% so với 40.4% và 23.1% so với 40.4%, tương ứng). Ở các cặp đôi bị thiểu tinh trùng hoàn toàn, tinh trùng từ tinh hoàn nên được ưu tiên hơn tinh trùng từ tinh dịch để có kết quả ICSI tốt hơn. Với việc lựa chọn tinh trùng từ tinh hoàn phù hợp, mức độ thiểu tinh trùng nặng hoặc hoàn toàn có thể không ảnh hưởng đến kết quả ICSI. Các nghiên cứu trong tương lai với kích thước mẫu lớn hơn là cần thiết để xác thực những phát hiện này.
Từ khóa
#thiểu tinh trùng nặng #thiểu tinh trùng hoàn toàn #ICSI #tĩnh mạch sinh dục #vô sinh namTài liệu tham khảo
Agarwal A, Mulgund A, Hamada A, Chyatte MR. A unique view on male infertility around the globe. Reprod Biol Endocrinol. 2015;13:37. https://doi.org/10.1186/s12958-015-0032-1.
Krausz C, Riera-Escamilla A. Genetics of male infertility. Nat Rev Urol. 2018;15(6):369–84. https://doi.org/10.1038/s41585-018-0003-3.
Cooper TG, Noonan E, von Eckardstein S, Auger J, Baker HW, Behre HM, et al. World Health Organization reference values for human semen characteristics. Hum Reprod Update. 2010;16(3):231–45. https://doi.org/10.1093/humupd/dmp048.
Beauchamp PJ, Galle PC, Blasco L. Human sperm velocity and postinsemination cervical mucus test in the evaluation of the infertile couple. Arch Androl. 1984;13(2–3):107–12. https://doi.org/10.3109/01485018408987508.
Collodel G, Federico MG, Pascarelli NA, Geminiani M, Renieri T, Moretti E. A case of severe asthenozoospermia: a novel sperm tail defect of possible genetic origin identified by electron microscopy and immunocytochemistry. Fertil Steril. 2011;95(1):289.e11-6. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2010.05.029.
Moretti E, Geminiani M, Terzuoli G, Renieri T, Pascarelli N, Collodel G. Two cases of sperm immotility: a mosaic of flagellar alterations related to dysplasia of the fibrous sheath and abnormalities of head-neck attachment. Fertil Steril. 2011;95(5):1787.e19-23. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2010.11.027.
Lee R, Goldstein M, Ullery BW, Ehrlich J, Soares M, Razzano RA, et al. Value of serum antisperm antibodies in diagnosing obstructive azoospermia. J Urol. 2009;181(1):264–9. https://doi.org/10.1016/j.juro.2008.09.004.
Folgerø T, Bertheussen K, Lindal S, Torbergsen T, Oian P. Mitochondrial disease and reduced sperm motility. Hum Reprod. 1993;8(11):1863–8. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.humrep.a137950.
Jonsson MS, McCormick JR, Gillies CG, Gondos B. Kartagener’s syndrome with motile spermatozoa. N Engl J Med. 1982;307(18):1131–3. https://doi.org/10.1056/nejm198210283071807.
Li WN, Zhu L, Jia MM, Yin SL, Lu GX, Liu G. Missense mutation in DNAJB13 gene correlated with male fertility in asthenozoospermia. Andrology. 2020;8(2):299–306. https://doi.org/10.1111/andr.12685.
Lorès P, Coutton C, El Khouri E, Stouvenel L, Givelet M, Thomas L, et al. Homozygous missense mutation L673P in adenylate kinase 7 (AK7) leads to primary male infertility and multiple morphological anomalies of the flagella but not to primary ciliary dyskinesia. Hum Mol Genet. 2018;27(7):1196–211. https://doi.org/10.1093/hmg/ddy034.
Sharma R, Harlev A, Agarwal A, Esteves SC. Cigarette Smoking and Semen Quality: A New Meta-analysis Examining the Effect of the 2010 World Health Organization Laboratory Methods for the Examination of Human Semen. Eur Urol. 2016;70(4):635–45. https://doi.org/10.1016/j.eururo.2016.04.010.
Perry MJ. Effects of environmental and occupational pesticide exposure on human sperm: a systematic review. Hum Reprod Update. 2008;14(3):233–42. https://doi.org/10.1093/humupd/dmm039.
Jenardhanan P, Panneerselvam M, Mathur PP. Effect of environmental contaminants on spermatogenesis. Semin Cell Dev Biol. 2016;59:126–40. https://doi.org/10.1016/j.semcdb.2016.03.024.
Palermo G, Joris H, Devroey P, Van Steirteghem AC. Pregnancies after intracytoplasmic injection of single spermatozoon into an oocyte. Lancet. 1992;340(8810):17–8. doi:https://doi.org/10.1016/0140-6736(92)92425-f.
Kahraman S, Tasdemir M, Tasdemir I, Vicdan K, Ozgur S, Polat G, et al. Pregnancies achieved with testicular and ejaculated spermatozoa in combination with intracytoplasmic sperm injection in men with totally or initially immotile spermatozoa in the ejaculate. Hum Reprod. 1996;11(6):1343–6. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.humrep.a019384.
Nijs M, Vanderzwalmen P, Vandamme B, Segal-Bertin G, Lejeune B, Segal L, et al. Fertilizing ability of immotile spermatozoa after intracytoplasmic sperm injection. Hum Reprod. 1996;11(10):2180–5. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.humrep.a019073.
Shulman A, Feldman B, Madgar I, Levron J, Mashiach S, Dor J. In-vitro fertilization treatment for severe male factor: the fertilization potential of immotile spermatozoa obtained by testicular extraction. Hum Reprod. 1999;14(3):749–52. https://doi.org/10.1093/humrep/14.3.749.
Al-Malki AH, Alrabeeah K, Mondou E, Brochu-Lafontaine V, Phillips S, Zini A. Testicular sperm aspiration (TESA) for infertile couples with severe or complete asthenozoospermia. Andrology. 2017;5(2):226–31. https://doi.org/10.1111/andr.12317.
Sha Y, Liu W, Huang X, Li Y, Ji Z, Mei L, et al. EIF4G1 is a novel candidate gene associated with severe asthenozoospermia. Mol Genet Genomic Med. 2019;7(8):e807. https://doi.org/10.1002/mgg3.807.
Casper RF, Meriano JS, Jarvi KA, Cowan L, Lucato ML. The hypo-osmotic swelling test for selection of viable sperm for intracytoplasmic sperm injection in men with complete asthenozoospermia. Fertil Steril. 1996;65(5):972–6. https://doi.org/10.1016/s0015-0282(16)58271-5.
Wang XM, Sun LJ, Hao DY, Centre RM. Impact of SperMagic on motility of spermatozoon and pregnancy rate in human with severe oligoasthenospermia. Maternal and Child Health Care of China. 2014;29(01):92-4.
Zheng HL, Fengand LJ, Zheng HL, Fengand LJ. Induced motility of MESA/TESE spermatozoa is associated with increased fertilization and implantation rates in human. Reprod Fertil Dev. 2006;18:259. https://doi.org/10.1111/and.13056.
Gu YF, Zhou QW, Zhang SP, Lu CF, Gong F, Shi Y, et al. The clinical and neonatal outcomes after stimulation of immotile spermatozoa using SperMagic medium. Andrologia. 2018;50(7):e13056. https://doi.org/10.1111/and.13056.
Liu W, Gao X, Ma G, Yan L, Chen T, Li T, et al. Correlation of genetic results with testicular histology, hormones and sperm retrieval in nonobstructive azoospermia patients with testis biopsy. Andrologia. 2017;49(7). https://doi.org/10.1111/and.12705.
Lacassie Y. Measurement of testicular volume. Am J Med Genet. 1998;77(3):249.
Nieschlag E, Behre HM. Andrology. Male Reproductive Health and Dysfunction. Andrology: Male Reproductive Health and Dysfunction; 2001.
Quetelet LA. A treatise on man and the development of his faculties. 1842. Obes Res. 1994;2(1):72-85.
Dirami T, Rode B, Jollivet M, Da Silva N, Escalier D, Gaitch N, et al. Missense mutations in SLC26A8, encoding a sperm-specific activator of CFTR, are associated with human asthenozoospermia. Am J Hum Genet. 2013;92(5):760–6. https://doi.org/10.1016/j.ajhg.2013.03.016.
Katsumi M, Ishikawa H, Tanaka Y, Saito K, Kobori Y, Okada H, et al. Microhomology-mediated microduplication in the y chromosomal azoospermia factor a region in a male with mild asthenozoospermia. Cytogenet Genome Res. 2014;144(4):285–9. https://doi.org/10.1159/000377649.
Björndahl L. The usefulness and significance of assessing rapidly progressive spermatozoa. Asian J Androl. 2010;12(1):33–5. https://doi.org/10.1038/aja.2008.50.
Liu J, Nagy Z, Joris H, Tournaye H, Smitz J, Camus M, et al. Analysis of 76 total fertilization failure cycles out of 2732 intracytoplasmic sperm injection cycles. Hum Reprod. 1995;10(10):2630–6.
Ortega C, Verheyen G, Raick D, Camus M, Devroey P, Tournaye H. Absolute asthenozoospermia and ICSI: what are the options? Hum Reprod Update. 2011;17(5):684–92. https://doi.org/10.1093/humupd/dmr018.
Nagy ZP, Liu J, Joris H, Verheyen G, Tournaye H, Camus M, et al. The result of intracytoplasmic sperm injection is not related to any of the three basic sperm parameters. Hum Reprod. 1995;10(5):1123–9. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.humrep.a136104.