Cấy ghép màng ối không tế bào người để tái tạo phần dưới mũi: liệu pháp đầy hứa hẹn trong việc thúc đẩy lành vết thương

Oxford University Press (OUP) - Tập 6 - Trang 1-8 - 2018
Si-Liang Xue1, Kai Liu2, Ornella Parolini3,4, Yue Wang5, Li Deng6, Yong-Can Huang7,8
1Department of Dermatology and Venereology, West China Hospital, Sichuan University, Chengdu, China
2Chengdu Qingshan Likang Pharmaceutical Co., Ltd., Chengdu, People’s Republic of China
3Centro di Ricerca E. Menni, Fondazione Poliambulanza-Istituto Ospedaliero, Brescia, Italy
4Istituto di Anatomia Umana e Biologia Cellulare, Università Cattolica del Sacro Cuore Facoltà di Medicina e Chirurgia, Rome, Italy
5Department of Ultrasound, Peking University Shenzhen Hospital, Shenzhen, People’s Republic of China
6Laboratory of Stem Cell and Tissue Engineering, State Key Laboratory of Biotherapy, West China Hospital, Sichuan University, Chengdu, China
7Shenzhen Engineering Laboratory of Orthopaedic Regenerative Technologies, Orthopaedic Research Center, Peking University Shenzhen Hospital, Shenzhen, China
8Shenzhen Key Laboratory of Spine Surgery, Department of Spine Surgery, Peking University Shenzhen Hospital, Shenzhen, People’s Republic of China

Tóm tắt

Phần dưới của mũi là một trong những đơn vị thẩm mỹ quan trọng nhất của khuôn mặt, và các phương pháp tái tạo của nó vẫn là một thách thức lớn. Là một phương pháp thay thế để sửa chữa hoặc tái tạo mô mũi, các chiến lược dựa trên vật liệu sinh học đã được nghiên cứu rộng rãi. Mục tiêu của nghiên cứu này là xác định độ an toàn và hiệu quả của màng ối không tế bào người (HAAM) trong việc sửa chữa các khuyết tật độ dày đầy đủ ở phần dưới mũi ở người. Trong nghiên cứu này, 180 bệnh nhân đã trải qua phẫu thuật cắt bỏ các tổn thương da ở phần dưới mũi từ năm 2012 đến 2016 được đưa vào; trong số các bệnh nhân, 92 người nhận được điều trị bằng HAAM và băng Vaseline, trong khi 88 bệnh nhân còn lại chỉ nhận điều trị bằng băng Vaseline. Thời gian cầm máu và thời gian phẫu thuật được ghi nhận trong suốt ca phẫu thuật; sau phẫu thuật, thời gian đau biến mất, hình thành vảy và lành vết thương, cùng tỷ lệ lành vết thương được đo lường. Ngay sau khi cấy ghép HAAM, một sự giảm thời gian cầm máu và xuất hiện nhanh chóng của sự biến mất đau đã được quan sát. So với nhóm đối chứng, việc hình thành và tách vảy ở những bệnh nhân được cấy ghép HAAM diễn ra nhanh chóng hơn đáng kể sau phẫu thuật. Khi đường kính của tổn thương vượt quá 5 mm, việc cấy ghép HAAM có tác dụng thúc đẩy quá trình lành vết thương, mặc dù sự cải thiện này không thấy khi đường kính nhỏ hơn 5 mm. Bên cạnh đó, việc cấy ghép HAAM đã giảm đáng kể tình trạng chảy máu, nhiễm trùng vết thương và hình thành sẹo sau phẫu thuật. Liệu pháp hỗ trợ lành vết thương bằng HAAM là một phương pháp hứa hẹn cho việc tái tạo phần dưới mũi, dẫn đến quá trình lành vết thương nhanh chóng và ít biến chứng, do đó có tiềm năng đáng kể cho ứng dụng lâm sàng rộng rãi trong việc sửa chữa các vết thương da.

Từ khóa


Tài liệu tham khảo

McCluskey PD, Constantine FC, Thornton JF. Lower third nasal reconstruction: when is skin grafting an appropriate option? Plast Reconstr Surg. 2009;124(3):826–35. Zeikus PS, Maloney ME, Jellinek NJ. Advancement flap for the reconstruction of nasal ala and lateral nasal tip defects. J Am Acad Dermatol. 2006;55(6):1032–5. Jin HR, Jeong WJ. Reconstruction of nasal cutaneous defects in Asians. Auris Nasus Larynx. 2009;36(5):560–6. Boyce ST, Lalley AL. Tissue engineering of skin and regenerative medicine for wound care. Burns Trauma. 2018;6:4. Bi H, Jin Y. Current progress of skin tissue engineering: seed cells, bioscaffolds, and construction strategies. Burns Trauma. 2013;1(2):63–72. Dino BR, Eufemio G, De Villa M, Reysio-Cruz M, Jurado RA. The use of fetal membrane homografts in the local management of burns. J Philipp Med Assoc. 1965;41(12):Suppl:890–8. Colocho G, Graham WP 3rd, Greene AE, Matheson DW, Lynch D. Human amniotic membrane as a physiologic wound dressing. Arch Surg. 1974;109(3):370–3. Somerville PG. The possible use of amniotic membrane in chronic leg ulcers. Phlebologie. 1982;35(1):223–9. Mermet I, Pottier N, Sainthillier JM, Malugani C, Cairey-Remonnay S, Maddens S, Riethmuller D, Tiberghien P, Humbert P, Aubin F. Use of amniotic membrane transplantation in the treatment of venous leg ulcers. Wound Repair Regen. 2007;15(4):459–64. Rai M, Ramaraj PN, Sharma A. Use of amniotic membrane as dressing in cervical necrotizing fasciitis. J Oral Maxillofac Surg. 2011;69(4):1125–8. Lo V, Lara-Corrales I, Stuparich A, Pope E. Amniotic membrane grafting in patients with epidermolysis bullosa with chronic wounds. J Am Acad Dermatol. 2010;62(6):1038–44. Silini AR, Cargnoni A, Magatti M, Pianta S, Parolini O. The long path of human placenta, and its derivatives, in regenerative medicine. Front Bioeng Biotechnol. 2015;3:162. Bujang-Safawi E, Halim AS, Khoo TL, Dorai AA. Dried irradiated human amniotic membrane as a biological dressing for facial burns--a 7-year case series. Burns. 2010;36(6):876–82. Penny H, Rifkah M, Weaver A, Zaki P, Young A, Meloy G, et al. Dehydrated human amnion/chorion tissue in difficult-to-heal DFUs: a case series. J Wound Care. 2015;24(3):104;106–9;111. Zelen CM. An evaluation of dehydrated human amniotic membrane allografts in patients with DFUs. J Wound Care. 2013;22(7):347–8 350-341. Dennis DC, Turnock AR, Sutton C, Chastant B, Vanderlan WB. Utility of human amniotic membrane allograft in re-epithelialization of the nasal tip. J Surg Case Rep. 2016;2016(10):rjw174. Luo JC, Li XQ, Yang ZM. Preparation of human acellular amniotic membrane and its cytocompatibility and biocompatibility. Zhongguo Xiu Fu Chong Jian Wai Ke Za Zhi. 2004;18(2):108–11. Wilshaw SP, Kearney JN, Fisher J, Ingham E. Production of an acellular amniotic membrane matrix for use in tissue engineering. Tissue Eng. 2006;12(8):2117–29. Wilshaw SP, Kearney J, Fisher J, Ingham E. Biocompatibility and potential of acellular human amniotic membrane to support the attachment and proliferation of allogeneic cells. Tissue Eng Part A. 2008;14(4):463–72. Huang G, Ji S, Luo P, Liu H, Zhu S, Wang G, et al. Accelerated expansion of epidermal keratinocyte and improved dermal reconstruction achieved by engineered amniotic membrane. Cell Transplant. 2013;22(10):1831–44. Murphy SV, Skardal A, Song L, Sutton K, Haug R, Mack DL, et al. Solubilized amnion membrane hyaluronic acid hydrogel accelerates full-thickness wound healing. Stem Cells Transl Med. 2017;6(11):2020–32. Mahmoudi Rad M, Talebpour Amiri F, Mirhoseini M, Ghasemi M, Mirzaei M, Mosaffa N. Application of allogeneic fibroblast cultured on acellular amniotic membrane for full-thickness wound healing in rats. Wounds. 2016;28(1):14–9. Fan W, Yang Z, Luo J, Huang Y, Li X, Wang Z. A comparative study on acellular small intestinal submucosa and acellular amnion as dressings for traumatic skin defects. Zhongguo Xiu Fu Chong Jian Wai Ke Za Zhi. 2006;20(2):155–60. Eming SA, Martin P, Tomic-Canic M. Wound repair and regeneration: mechanisms, signaling, and translation. Sci Transl Med. 2014;6(265):265sr266. Litwiniuk M, Grzela T. Amniotic membrane: new concepts for an old dressing. Wound Repair Regen. 2014;22(4):451–6. Castellanos G, Bernabe-Garcia A, Moraleda JM, Nicolas FJ. Amniotic membrane application for the healing of chronic wounds and ulcers. Placenta. 2017;59:146–153. Lullove EJ. Use of a dehydrated amniotic membrane allograft in the treatment of lower extremity wounds: a retrospective cohort study. Wounds. 2017;29(11):346–351. Pianta S, Magatti M, Vertua E, Bonassi Signoroni P, Muradore I, Nuzzo AM, et al. Amniotic mesenchymal cells from pre-eclamptic placentae maintain immunomodulatory features as healthy controls. J Cell Mol Med. 2016;20(1):157–69. Magatti M, Vertua E, De Munari S, Caro M, Caruso M, Silini A, et al. Human amnion favours tissue repair by inducing the M1-to-M2 switch and enhancing M2 macrophage features. J Tissue Eng Regen Med. 2017;11(10):2895–911. Barrientos S, Stojadinovic O, Golinko MS, Brem H, Tomic-Canic M. Growth factors and cytokines in wound healing. Wound Repair Regen. 2008;16(5):585–601. Schultz GS, Wysocki A. Interactions between extracellular matrix and growth factors in wound healing. Wound Repair Regen. 2009;17(2):153–62. Tauzin H, Rolin G, Viennet C, Saas P, Humbert P, Muret P. A skin substitute based on human amniotic membrane. Cell Tissue Bank. 2014;15(2):257–65. Ruiz-Canada C, Bernabe-Garcia A, Liarte S, Insausti CL, Angosto D, Moraleda JM, et al. Amniotic membrane stimulates cell migration by modulating transforming growth factor-beta signaling. J Tissue Eng Regen Med. 2018;12(3):808–820. Guo X, Kaplunovsky A, Zaka R, Wang C, Rana H, Turner J, et al. Modulation of cell attachment, proliferation, and angiogenesis by decellularized, dehydrated human amniotic membrane in in vitro models. Wounds. 2017;29(1):28–38. Gholipourmalekabadi M, Sameni M, Radenkovic D, Mozafari M, Mossahebi-Mohammadi M, Seifalian A. Decellularized human amniotic membrane: how viable is it as a delivery system for human adipose tissue-derived stromal cells? Cell Prolif. 2016;49(1):115–21. Song M, Wang W, Ye Q, Bu S, Shen Z, Zhu Y. The repairing of full-thickness skin deficiency and its biological mechanism using decellularized human amniotic membrane as the wound dressing. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl. 2017;77:739–47. Pashuck ET, Stevens MM. Designing regenerative biomaterial therapies for the clinic. Sci Transl Med. 2012;4(160):160sr164. Pedde RD, Mirani B, Navaei A, Styan T, Wong S, Mehrali M, et al. Emerging biofabrication strategies for engineering complex tissue constructs. Adv Mater. 2017;29(19). Hodgkinson T, Bayat A. Dermal substitute-assisted healing: enhancing stem cell therapy with novel biomaterial design. Arch Dermatol Res. 2011;303(5):301–15. Guo X, Xia B, Lu XB, Zhang ZJ, Li Z, Li WL, et al. Grafting of mesenchymal stem cell-seeded small intestinal submucosa to repair the deep partial-thickness burns. Connect Tissue Res. 2016;57(5):388–97.
Thông tin
Thông tin xuất bản

Oxford University Press (OUP)

Tập 6

1-8

Thông tin tác giả