Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Liệu pháp Hormone làm thay đổi thành phần vi sinh vật âm đạo ở chuột cái đã cắt buồng trứng
Tóm tắt
Mục đích của nghiên cứu hiện tại là đánh giá những thay đổi có thể xảy ra trong hệ vi khuẩn đường sinh dục khi thiếu hormone buồng trứng. Vai trò của liệu pháp thay thế hormone cũng được đánh giá. Để thực hiện mục tiêu này, nhiều loại vi khuẩn đã được xác định từ hệ vi sinh vật âm đạo của chuột cái cắt buồng trứng và chuột cái phẫu thuật giả, theo tiêu chí trong sách hướng dẫn của Bergey. Dữ liệu từ nghiên cứu này cho thấy có những khác biệt đáng kể trong hệ vi sinh vật âm đạo giữa chuột cái đã cắt buồng trứng và chuột cái bình thường có chu kỳ. Việc cắt buồng trứng liên quan đến tải lượng vi khuẩn tổng thể thấp hơn, có thể chủ yếu do sự vắng mặt của Lactobacillus. Vi khuẩn kị khí cũng đã vắng mặt. Streptococcus và Enterococcus cũng không được ưu tiên trong môi trường thiếu hormone buồng trứng. Ngược lại, C. perfringens, Bacteroides, S. epidermidis và S. aureus được phát hiện với số lượng cao ở chuột cái đã cắt buồng trứng. Về tác động của liệu pháp thay thế hormone lên hệ vi sinh vật âm đạo, chỉ có estradiol (EE2) khôi phục mức Lactobacillus ở chuột cái đã cắt buồng trứng, trong khi tất cả các phác đồ hormone được sử dụng đưa Streptococcus, Clostridium lec (−), và C. perfringens, cả hình thức bào tử và sinh dưỡng, gần với những gì được phát hiện ở chuột cái bình thường có chu kỳ. Kết luận, hormone buồng trứng dường như là những yếu tố điều tiết ủng hộ sự tồn tại của nhiều loại vi khuẩn, là thành viên của hệ vi sinh vật đường sinh dục bình thường. Mặt khác, việc cắt buồng trứng làm thay đổi hồ sơ vi sinh vật âm đạo, và liệu pháp thay thế hormone chủ yếu dựa vào các phác đồ có chứa EE2 có thể làm giảm bớt sự rối loạn này.
Từ khóa
Tài liệu tham khảo
Krieg JC, Holt JG (eds) (1974) Bergey’s manual of systematic bacteriology, vol. I. Williams and Wilkins, Baltimore, MD
Bezirtzoglou E (1997) The intestinal microflora during the first weeks of life. Anaerobe 3:173–177
Bezirtzoglou E, Norin E, Midtvedt T (1995) Influence of roxithromycin on the fecal tryptic activity. Mikrookol Ther 23:102–106
Bezirtzoglou E, Romond C (1988) Vaginal flora at term (Abstract). In.: Program and abstracts of the 88th Annual Meeting of the American Society for Microbiology, Miami Beach, Florida. American Society for Microbiology, Washington, DC
Bezirtzoglou E, Romond C (1990) Rapid identification and enumeration of C. perfringens in the human faecal flora. Microb Ecol Health Dis 3:159–163
Bezirtzoglou E, Romond MB, Romond C (1989) Modulation of C. perfringens, intestinal colonization in infants delivered by caesarian section. Infection 17(4):232–235
Boriello SP (1986) Microbial flora of the gastrointestinal tract. In: Hill MJ (ed) Microbial metabolism in the digestive tract. CRC, Boca Raton, pp 2–19
Cruikshank R, Sharman A (1934) The biology of the vaginal in the human subject. J Obstet Gynaecol Br Emp 41(190):208–216
Devillard E, Burton JP, Hammond JA, Lam D, Reid G (2004) Novel insight into the vaginal microflora in postmenopausal women under hormone replacement therapy as analyzed by PCR-denaturing gradient gel electrophoresis. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 117(1):76–81
Fahey JV, Rosoll RM, Wira CR (2005) Sex hormone regulation of anti/bacterial activity in rat uterine secretions and apical release of anti-bacterial factor(s) by uterine epithelial cells in culture. J Steroid Biochem Mol Biol 93:59–66
Finegold SM, Sutter VL, Mathisen GE (1983) Normal indigenous intestinal flora. In: Hentges DJ (ed) Human intestinal flora in health and disease. Academic, London, pp 3–31
Florez AB, Mayo B (2006) Microbial diversity and succession during the manufacture and ripening of traditional Spanish blue-veined Cabrales cheese, as determined by PCR-DGGE. Int J Food Microbiol 110:165–171
Fredricks DN, Fiedler TL, Marrazzo JM (2005) Molecular identification of bacteria associated with bacterial vaginosis. N Engl J Med 353(18):1899–1911
Galask RP, Larsen B, Ohm MJ (1976) Vaginal flora and its role in disease entities. Clin Obstet Gynecol 19(1):61–81
Galask RP, Larsen B (1981) Identifying and treating genital tract infections in post menopausal women. Geriatrics 36(3):69–77
Goldstein I, Alexander JL (2005) Practical aspects in the management of vaginal atrophy and sexual dysfunction in perimenopausal and postmenopausal women. Sex Med Suppl 3:154–165
Gregoire AT, Kanail O, Kedger WJ (1971) The glycogen content of the human vaginal epithelial tissue. Fertil Steril 22:64–68
Harmsen HJM, Eifferich P, Schut F, Welling GW (1999) A 16S rRNA-targeted probe for detection of Lactobacilli and Enterococci in faeces samples by fluorescent in situ hybridization. Microbiol Ecol Health Dis 11:3–12
Haye K, Ault K (2006) The microbial ecology of the vagina and its relationship to post hysterectomy infection. Emory University Dept, Resident Research Day, May 12.
Heinemann C, Reid G (2005) Vaginal microbial diversity among postmenopausal women with and without hormone replacement therapy. Can J Microbiol 51(9):777–781
Hentges DJ, Maier BR, Burton GC, Elynn MA, Tsutakawa RK (1977) Effect of high-beef diet on the fecal bacterial flora of humans. Cancer Res 7:568–571
Hyo-Jin A, Hyun-Joon L, Forney LJ (2006) System for determining the relative fitness of multiple bacterial populations without using selective markers. Appl Environ Microbiol 72(11):7383–7385
Kleessen B, Bezirtzoglou E, Matto J (2000) Culture-based knowledge on biodiversity development and stability of human gastrointestinal microflora. Microb Ecol Health Dis S2:53–63
Konstandi M, Voidarou C, Papadaki E, Tsiotsias A, Kotsovolou O, Evangelou E, Bezirtzoglou E (2006) Stress modifies the vaginal flora in cyclic female rats. Microb Ecol Health Dis 18:161–169
Larsen B, Markovetz AJ, Galask RP (1976) The bacterial flora of the female rat genital tract. Proc Soc Exp Biol Med 151:571–574
Larsen B, Markovetz AJ, Galask RP (1976) Quantitative alterations in the genital microflora of female rats in relation to the estrous cycle. J Infect Dis 134(5):486–489
Larsen B, Markovetz AJ, Galask RP (1977) Role of estrogen in controlling the genital microflora of female rats. Appl Environ Microbiol 34(5):534–540
Larsen B, Markovetz AJ, Galask RP (1977) Scanning electron microscopy of vaginal colonization. Appl Environ Microbiol 33(2):470–476
Larsen B, Markovetz AJ, Galask RP (1977) Relationship of vaginal cytology to alterations of the vaginal microflora of rats during the estrous cycle. Appl Environ Microbiol 33(3):556–562
Larsen B, Markovetz AJ, Galask RP (1977) Spatial relationship of the vaginal microflora to the vaginal epithelium of female rats: scanning electron microscopy. Appl Environ Microbiol 34(1):80–87
Larsen B, Markovetz AJ, Galask RP (1978) Spatial relationship of the genital microflora to the vaginal epithelium of female rats: transmission electron microscopy. Appl Environ Microb 35(2):444–449
Larsen B, Galask RP (1980) Vaginal microbial flora. Practical and theoretical relevance. Obstet Gynecol 55(5):s100–s115
Larsen B, Galask RP (1982) Vaginal microbial flora: composition and influences of host physiology. Ann Intern Med 96:926–930
Larsen B (1985) Normal genital microflora. In: Keith LG, Bergen GS, Edelman D (eds) Common infections. MTP, Lancaster, England, pp 3–31
Larsen B (1990) Ecological interactions in genital tract infections. Int J Feto-Matern Med 3(4):229–235
Larsen B (1993) Vaginal flora in health and disease. Clin Obstet Gynecol 36(1):107–121
Larsen B, Monif GRG (2001) Understanding the bacterial flora of the female genital tract. Clin Infect Dis 32:e69–e77
Laughton N (1948) The vaginal bacterial flora and ovarian dysfunction. J Obstet Gynaecol Br Emp 55:608–612
Marrrazzo JM (2006) A persistent(ly) enigmatic ecological mystery: bacterial vaginosis. J Infect Dis 193:1475–1477
Neary MP, Allen J, Okubadejo OA, Payne DJH (1973) Preoperative vaginal bacteria and postoperative infections in gynaecological patients. Lancet 2:1291–1295
Nelson GM, George SE (1995) Comparison of media for selection and enumeration of mouse faecal flora populations. J Microbiol Methods 22:293–300
Nguyen Van JC, Kitzis MD, Ly A, Chalfine A, Carlet J, Ben Ali A, Goldstein F (2006) Detection of nasal colonization methicillin-resistant Staphylococcus aureus: a prospective study comparing real-time genic amplification assay vs selective chromogenic media. Pathol Biol 54:285–292
Pompei LM, Carvalho FM, Ortiz SC, Motta MC, Cruz RJ, Melo NR (2005) Morphometric evaluation of effects of two sex steroids on mammary gland of female rats. Maturitas 51(4):370–379
Robinson D, Cardozo LD (2003) The role of estrogens in female lower urinary tract dysfunction. Urology 62(4 Suppl 1):45–51
Roy S, Suheeta R, Vega-Lopez S, Luz Fernandez M (2000) Gender and hormonal status affect the hypolipidemic mechanisms of dietary soluble fibber in Guinea pigs. J Nutr 130:600–607
Savage DC, Blumershine RVH (1974) Surface-surface associations in microbial communities populating epithelial habitats in the murine gastrointestinal ecosystem: scanning electron microscopy. Infect Immun 10:240–250
Schuenck RP, Lourenco MCS, Iorio NLP, Ferreira ALP, Nouer SA, Santos KRN (2006) Improved and rapid detection of methicillin-resistant Staphylococcus aureus nasal carriage using selective broth and multiplex. PCR 157:971–975
Thadepalli H, Gorbach SL, Keith L (1973) Anaerobic infectious of the female genital tract. Am J Obstet Gynevol 117:1034–1040
Trussell RE, Mac Daugal RF (1940) Vaginal acidity in late pregnancy and its relation to the vaginal flora. Am J Obstet Gynecol 39:77–81
Van der Vies J (1987) Pharmacological studies with (7 alpha, 17 alpha)-17-hydroxy-7-methyl-19-norpregn-5(10)-en-20-yn-3-one (Org OD 14). Maturitas 1:15–24
Von Wintzingerode F, Gobel UB, Stackebrandt E (1997) Determination of microbial diversity in environmental strains: pitfalls of PCR-based rRNA analysis. FEMS Microbiol Rev 21:213–229
Zarrow MX (1964) In: Zarrow MX, Yochim JM, McCarthy JL (eds) Experimental endocrinology. A sourcebook of basic techniques. Academic, New York, p 194, 308